Введение. Артрит-энцефалит коз – хроническое вирусное заболевание, вызываемое лентивирусами семейства Retroviridae, относящимися к группе SRLV (лентивирусы мелкого рогатого скота). Заболевание характеризуется длительным бессимптомным вирусоносительством с последующим прогрессирующим поражением суставов, центральной нервной системы, легких и ткани молочных желез. Вирус может передаваться с молозивом и молоком, при прямом контакте, через оборудование и при совместном содержании здоровых и инфицированных животных. Диагностика заболевания основана на использовании иммунологических и молекулярно-биологических методов.
Цель обзора. Обобщение зарубежных методических подходов к профилактике артрита-энцефалита коз.
Материалы и методы. При написании обзора были использованы публикации в рецензируемых журналах, официальные зарубежные методические рекомендации, а также отчеты Продовольственной и сельскохозяйственной организации Объединенных Наций, Всемирной организации здравоохранения животных. Отбор источников производился в базах данных Web of Science, Scopus, Google Scholar, PubMed, Science Hub, КиберЛенинка и др.
Результаты. Анализ литературных источников показывает, что наиболее эффективные результаты по борьбе с данным заболеванием достигнуты в странах, где разработаны обязательные государственные программы, включающие комплекс профилактических, диагностических и административных мер (Норвегия, Швейцария). В странах с добровольным участием в программах оздоровления (Австралия, Новая Зеландия, Канада, Италия, Франция) при наличии практики стимулирующих механизмов и информационной поддержки также наблюдаются положительные результаты. В странах с отсутствием координированных программ (Турция, Бразилия, Иран, большинство африканских стран) уровень контроля за распространением заболевания остается низким, а серопревалентность – высокой.
Заключение. Наибольших успехов в борьбе с данным заболеванием удалось достичь в странах, где разработаны обязательные государственные программы по контролю и искоренению, включающие комплекс профилактических, диагностических и административных мер (Норвегия, Швейцария).

Введение. В 2024–2025 гг. произошла серия вспышек высокопатогенного гриппа птиц А(Н5N1) среди молочного скота. Подобное изменение круга хозяев вируса повышает глобальные риски для животноводства и общественного здравоохранения, что требует усиления систем эпизоотологического мониторинга и контроля.
Цель исследования. Анализ эпизоотологических характеристик инфекции молочного скота и других млекопитающих, вызванной вирусом гриппа птиц А(Н5N1) в 2024–2025 гг., а также обобщение принятых мер реагирования и рекомендаций международных организаций.
Материалы и методы. Применялись аналитические методы исследований с использованием баз данных PubMed, Scopus, Web of Science, Springer, Wiley Online Library и материалов международных организаций (FAO, EFSA, WOAH, OFFLU, CDC).
Результаты. Вспышки гриппа птиц A(H5N1), обусловленные вирусом клады 2.3.4.4b генотипов B3.13 и D1.1, среди молочного скота в 2024–2025 гг. произо­ шли в результате трех установленных независимых случаев передачи возбудителя из популяции дикой птицы. Инфекция была выявлена на 1078 фермах у крупного рогатого скота в 17 штатах США. Зафиксирована последующая передача вируса домашней птице, диким и домашним животным, включая кошек, и людям (70 человек), в основном работникам ферм и птицефабрик, а также обратная передача возбудителя от коров к птицам. Повсеместное быстрое распространение вируса связано с массовыми перемещениями скота и недостаточностью мер обеспечения биобезопасности. Рекомендовано проводить исследования на грипп А(Н5) при дифференциальной диагностике заболеваний крупного рогатого скота, свиней, домашних и диких животных.
Заключение. Эпизоотия гриппа птиц А(H5N1) среди крупного рогатого скота и передача инфекции другим млекопитающим демонстрирует серьезную угрозу для животноводства и общественного здоровья. В ответ на существующие риски необходимо усилить меры биобезопасности и надзор в эпидемиологически важных популяциях животных, учесть опыт других стран и наладить международное сотрудничество для изучения направлений эволюции вируса.

Введение. Лихорадка Западного Нила – зоонозное трансмиссивное заболевание, вызываемое флавивирусом, который чаще всего циркулирует в природе в энзоотическом цикле между комарами и птицами и вызывает случаи болезни у людей, лошадей и других млекопитающих. Стремительное расширение ареала возбудителя лихорадки Западного Нила, развитие вспышек с тяжелым течением болезни, отсутствие средств специфической профилактики послужили главными аргументами при отнесении его к группе потенциально опасных угроз глобальному здравоохранению. Тесная взаимосвязь между здоровьем людей, животных и экосистемой требует коммуникации и координации между соответствующими секторами. Принцип «Единое здоровье» – это интегрированный, объединяющий подход, направленный на оптимизацию здоровья людей, животных и экосистем, включающий в себя привлечение органов общественного здравоохранения, ветеринарии и охраны окружающей среды.
Цель исследования. Анализ основных эпизоотологических данных о распространении лихорадки Западного Нила на территории Российской Федерации.
Материалы и методы. Поиск источников литературы осуществлялся с использованием международных (PubMed, Springer, Google Scholar, CrossRef) и российских (РИНЦ, еLibrary, КиберЛенинка) баз научного цитирования. Отбор материала проводился по ключевым словам: лихорадка Западного Нила, единое здоровье, миграция птиц, беспозвоночные хозяева, меры контроля.
Результаты. В России вирус Западного Нила был впервые изолирован в 1963 г. в Астраханской области. В настоящее время присутствие возбудителя доказано в южных и центральных регионах европейской части страны, на юге Западной Сибири и Дальнего Востока. Отсутствие эпизоотологического мониторинга заболевания в отдельных регионах России и низкие объемы исследуемого материала в большинстве субъектов не позволяют дать объек­ тивную оценку эпизоотической ситуации, поэтому имеется необходимость в увеличении числа проводимых исследований. Показано, что основными переносчиками возбудителя на территории нашей страны являются комары родов Culex, Anopheles и Aedes, также в поддержании циркуляции вируса принимают участие иксодовые, аргасовые и гамазовые клещи. В обзоре описана роль птиц в передаче возбудителя, приводятся сведения о восприимчивости животных к инфекции, рассмотрены современные аспекты диагностики, профилактики лихорадки Западного Нила и меры борьбы.
Заключение. Надзор за лихорадкой Западного Нила является достаточно сложной задачей, поскольку циркуляция вируса происходит среди людей, членистоногих и птиц. Вакцинация является эффективным средством профилактики, однако иммунологические профилактические препараты против заболевания в России пока не разработаны. В связи с этим особое внимание должно уделяться взаимодействию между различными ведомствами, а также профилактическим мерам, направленным на снижение распространения вируса в окружающей среде.

Введение. В ветеринарии проблема возникновения и лечения респираторных инфекций актуальна в связи с высоким уровнем заболеваемости среди разных видов животных. У обезьян, содержащихся в условиях неволи, пневмонии, наряду с желудочно-кишечными заболеваниями, являются одной из главных причин гибели.

Цель исследования. Изучение заболеваемости обезьян пневмонией, анализ спектра легочной микрофлоры, изучение патоморфологических изменений в легочной ткани.

Материалы и методы. При изучении 1862 случаев гибели обезьян патоморфологические, микроскопические и бактериологические исследования
проводили по общепринятым методикам. Выявление возбудителей острых респираторных вирусных инфекций и антител к ним осуществляли
методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа при исследовании образцов легких и сывороток крови от 126 обезьян,
погибших с диагнозом «пневмония» в 2021–2024 гг.

Результаты. У 865 обезьян postmortem поставлен диагноз «пневмония» (46,5%). Гибель от пневмоний малышей первого месяца жизни приближается к 100%. У детенышей возрастом до одного года показатель смертности составляет 65,4%. Полученные данные свидетельствуют о высокой частоте заболевания в этих возрастных группах. Гибель обезьян от пневмоний регистрируется на протяжении всего года. На основании патолого-анатомических исследований установлено, что чаще возникает двусторонняя полисегментарная бронхопневмония, реже – долевая фибринозная пневмония с развитием воспалительного процесса в правом легком. При микроскопическом исследовании в просвете бронхов выявляются гнойные экссудаты и кокковая микрофлора. Среди бактерий, выделенных из ткани легких, наибольший процент составляют энтеробактерии (58,5%) и грамположительные кокки (36,6%). Спектр выделенных видов микроорганизмов разнообразный, но в большинстве случаев представлен кишечными бактериями: Escherichia coli (66,1%), Enterococcus spp. (27,5%), Proteus spp. (31,5%). Из возможных бактериальных возбудителей пневмоний обнаружены Staphylococcus aureus (31,5%), Klebsiella pneumoniae (2,2%), Pseudomonas aeruginosa (0,8%), Streptococcus pneumoniae (0,6%). В стаде обезьян также циркулируют аденовирусы, вирусы парагриппа человека типа 1 и 3 и респираторно-синцитиальный вирус.

Заключение. При анализе возможной роли микроорганизмов в развитии пневмоний у обезьян необходимо учитывать, что у большинства животных заболевание развивалось на фоне патологий желудочно-кишечного тракта и при сниженном иммунитете.

Введение. Listeria monocytogenes – патогенный микроорганизм, вызывающий большое количество летальных исходов вследствие потребления контаминированной продукции животного происхождения. Этим обусловлена актуальность мониторинга распространения возбудителя листериоза в сырье, продукции животного происхождения и объектах окружающей среды, а также антибиотикорезистентности изолятов.

Цель исследования. Идентификация серотипов и анализ антибиотикорезистентности изолятов Listeria monocytogenes, выделенных из продукции животного происхождения за период с 2021 по 2024 г.

Материалы и методы. Работа была выполнена на базе отдела микробиологических исследований Владимирской испытательной лаборатории ФГБУ «ВНИИЗ Ж». Изоляты бактерий рода Listeria идентифицировали с использованием метода времяпролетной масс-спектрометрии. Определение антибиотикорезистентности изолятов, относящихся к виду Listeria monocytogenes, проводили диско-диффузионным методом. Значения зон задержки роста интерпретировали согласно российским рекомендациям «Определение чувствительности микроорганизмов к антимикробным препаратам» (МАКМАХ, версия 2025-01). Серологические группы листерий были идентифицированы с использованием метода полимеразной цепной реакции в режиме реального времени с применением праймеров производства НПК «Синтол» (Россия).

Результаты. В статье представлены результаты исследований антибиотикорезистентности 77 изолятов Listeria monocytogenes, выявленных в продукции животного происхождения в 2021–2024 гг., а также их дифференциации по серогруппам. Чаще всего Listeria monocytogenes определяли в продукции из мяса птицы. Выявленные изоляты имели максимальную резистентность к цефуроксиму, сульфаметоксазолу/триметоприму, норфлоксацину, рифампицину, левофлоксацину и канамицину. При этом большинство изолятов проявило устойчивость более чем к одному антимикробному препарату. В рамках исследования установлена принадлежность изолятов Listeria monocytogenes к следующим серогруппам: IIa (серотипы 1/2а, 3а) – 92,2%; IIc (серотипы 1/2с, 3с) – 5,2%; IVb (серотипы 4b, 4d, 4e) – 2,6%.

Заключение. Показано распространение устойчивости, в том числе множественной, среди изолятов Listeria monocytogenes, выявленных в продукции животного происхождения в 2021–2024 гг. В результате проведенного исследования было определено присутствие листерий, относящихся к группе IVb (серотипы 4b, 4d, 4e). Однако доминирующая часть изолятов рода Listeria monocytogenes была классифицирована как группа IIa (серотипы 1/2а, 3а).

Введение. Рациональный подход ветеринарных специалистов к выбору антибиотика является одним из условий успешного лечения инфекционных болезней животных, в том числе снижает риск формирования антибиотикорезистентности. Понимание позиции ветеринарных врачей относительно антимикробной резистентности и информация об объеме их знаний по данной теме необходимы для пересмотра планов по оптимальному применению противомикробных препаратов в области животноводства.
Цель исследования. Определение основных причин и степени обоснованности применения антибактериальных препаратов в молочном животноводстве, а также выяснение информированности ветеринарных врачей о проблеме антибиотикорезистентности и путях ее преодоления.
Материалы и методы. Оценку рациональности использования антибиотиков проводили методом анкетирования ветеринарных врачей 44 молочных хозяйств, расположенных в 12 районах и городских округах Нижегородской области, с последующей статистической обработкой полученных данных.
Результаты. Установлено, что 90,0% опрошенных ветеринарных врачей хозяйств вели амбулаторный журнал с записью о лечении антибиотиками, а 10,0% не всегда регистрировали назначения антибиотиков в журнале. Больше половины (63,0%) ветеринаров используют антибактериальные препараты для обеспечения благополучия животных, 21,0% – для повышения рентабельности животноводства и 16,0% – для профилактики заболеваний. Чаще всего антибактериальные препараты назначались для лечения органов дыхания (21,4%), молочной железы (19,0%) и репродуктивных органов (22,1%). Около 52,0% респондентов заявили, что не используют антибиотики для профилактики заболеваний животных, 17,3% – применяют антимикробные препараты для профилактики заболеваний молочной железы (в основном в сухостойный период) и 9,6% – для профилактики заболеваний репродуктивных органов самок после отела, при этом 50,0% опрошенных не ставят перед собой задачу сокращения применения антибактериальных средств. Это создает высокие риски появления антибиотикорезистентных штаммов микроорганизмов и распространения их по пищевой цепи. Большинство ветеринарных врачей (68,0%) отме­ тили, что ограничивающим условием для широкого применения антибиотиков для молочного скота является контроль их остаточного содержания в молоке.
Заключение. Несмотря на отсутствие комплексной программы по сокращению использования антибиотиков, опрошенные специалисты признают существование механизма, ограничивающего распространение антибиотикорезистентности. Единственным условием сдерживания использования антибиотиков является контроль их содержания в сыром молоке, что диктует необходимость дальнейшего регулирования в данной сфере, оптимизации и рационализации антибиотикотерапии.

Введение. Телязиоз остается широко распространенным трансмиссивным паразитарным зоонозом как на территории Российской Федерации, так и в мире. Заболевания телязиозом яков изучены недостаточно, имеющиеся сведения фрагментарны. Клинический случай телязиоза яков в Оренбургской области описывается впервые и представляет собой большой интерес для широкого круга специалистов.

Цель исследования. Анализ и описание клинического случая телязиоза яков в Оренбургской области, изучение возбудителя и переносчика данного инвазионного заболевания.

Материалы и методы. Исследования, проведенные в 2021–2023 гг. в степном стационаре Института степи Уральского отделения Российской академии наук в Беляевском районе Оренбургской области, включали клинический осмотр, оценку патологических процессов и степени воспалительных процессов глаз и конъюнктивы яков. Произведен отлов с области глаз и учет паразитических двукрылых мух-секретофагов, определены их количественные, видовые и половые характеристики. Проведена гельминтоскопия, видовая принадлежность обнаруженных нематод установлена морфологически.

Результаты. Клинически телязиоз яков проявлялся в обильном слезотечении и рецидивирующем кератоконъюнктивите. Экстенсивность инвазии составила 100%, интенсивность инвазии равнялась 5. Обнаруженные гельминты принадлежали виду Thelazia rhodesi. Промежуточными хозяевами и переносчиками телязий являлись факультативные гематофаги, представители синбовинной фауны мухи Musca autumnalis, повсеместно распространенные в степных ландшафтах Оренбургской области. Соотношение самок и самцов, снятых в области головы яков, составило 83 и 17% соответственно, что подтверждает ведущую роль самок Musca autumnalis как вектора передачи нематод рода Thelazia.

Заключение. Домашние яки в природно-климатических условиях Оренбургской области подвержены телязиозу. Течение болезни, клинические проявления, экстенсивность и интенсивность инвазии, вероятно, обусловлены процессами акклиматизации яков, которые не являются аборигенными для данной местности.

Введение. Скотоводство играет ключевую роль в сельском хозяйстве Республики Таджикистан, обеспечивая не только потребности в мясных и молочных продуктах. В последнее время интенсификация животноводческой деятельности в Таджикистане сталкивается с серьезными проблемами, связанными с инфекционными заболеваниями, в частности вызываемыми каприпоксвирусами, в том числе заразным узелковым дерматитом крупного рогатого скота, который наносит значительный экономический ущерб и ставит под угрозу продуктивность и здоровье животных в регионе и во всем мире. Изучение и понимание эпизоотологии заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота в климатических условиях Республики Таджикистан позволит улучшить контроль за заболеванием.
Цель исследования. Эпизоотологическое описание и краткая характеристика вспышек заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота в Республике Таджикистан в 2023 г.
Материалы и методы. В работе использованы классические методы эпизоотологического анализа по сбору данных о вспышках заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота, а также серологические методы для ретроспективной диагностики заболевания.
Результаты. В 2023 г. в Республике Таджикистан впервые был зарегистрирован случай заболевания крупного рогатого скота заразным узелковым дерматитом в районе, граничащем с Афганистаном. Анализ сезонности проявления данного заболевания в Таджикистане показал, что вспышки заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота происходили чаще всего в летне-осенний период: с июля по ноябрь. Болезнь преимущественно распространилась в регионах с высокой концентрацией скота, в частности в районах Хатлонской области. Средняя плотность животных в Хатлонской области составляет 46 голов крупного рогатого скота на 1 км² и 117 голов мелкого рогатого скота на 1 км². Пик эпизоотии заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота был зафиксирован в сентябре – ноябре 2023 г. Заболеваемость и смертность варьировали по районам от 10 до 55% и от 2 до 15% соответственно. При исследовании 216 проб сывороток крови крупного рогатого скота антитела к вирусу заразного узелкового дерматита были обнаружены у 109 животных, что составило 50,5% от общего числа.
Заключение. В 2023 г. в Республике Таджикистан был проведен комплекс исследований и предприняты меры по предупреждению распространения заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота. Для эффективной борьбы с заболеванием необходимо усилить эпизоотологический мониторинг, проводить своевременную вакцинацию животных и внедрять меры по идентификации потенциальных переносчиков и их контролю. Эти шаги позволят минимизировать экономические потери и сохранить здоровье скота в республике.

Введение. Несмотря на отсутствие в Российской Федерации с 2021 г. зарегистрированных случаев классической чумы свиней, для получения стату­са зоны, свободной от данного заболевания, необходимо внедрение эффективных и безопасных вакцин, соответствующих стратегии DIVA. В качестве потенциальных инструментов для создания рекомбинантной субъединичной вакцины рассматриваются различные системы экспрессии; перспективным представляется синтез антигена Е2 в клетках млекопитающих.
Цель исследования. Оптимизация условий транзиентной трансфекции производственных линий клеток млекопитающих для экспрессии антигена Е2 вируса классической чумы свиней.
Материалы и методы. Нуклеотидная последовательность, кодирующая фрагмент антигена Е2 протяженностью 188 а. о., была клонирована в вектор pVAX1. Транзиентная трансфекция проводилась двумя общедоступными методами: кальций-фосфатным и катионным (при помощи разветвленного полиэтиленимина) – в отношении трех производственных клеточных линий млекопитающих: CHO-K1, PK-15, BHK-21/13. Контроль эффективности экспрессии осуществлялся методами иммунофлуоресценции, количественной полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией, иммуноферментного анализа.
Результаты. Было установлено, что все рассматриваемые клеточные линии подвергались трансфекции с эффективностью от 60 до 90%. Выживаемость клеток через 24 ч после проведения трансфекции составляла не менее 87%, наименьшие показатели регистрировались при проведении кальцийфосфатной трансфекции с первичной инкубацией 12 ч. Проведение трансфекции во всех случаях сопровождалось экспрессией специфических матричных РНК. Наибольший выход рекомбинантного белка Е2 молекулярной массой 17,3 кДа был характерен для линии СНО-K1 (до 47,4 мг/л), наименьший – для линии BHK-21/13 (до 24,1 мг/л). Коэффициент специфичности в антигенном варианте непрямого иммуноферментного анализа со специфическими антисыворотками для всех вариантов экспрессируемого белка варьировал в диапазоне 5,1–6,2 ед.
Заключение. Все представленные в исследовании клеточные линии обладали удовлетворительной трансфицируемостью, что в совокупности с их свойствами (высокой скоростью пролиферации, адаптацией к бессывороточным средам) позволяет использовать их для стабильной экспрессии. И кальций-фосфатный метод, и катионный обеспечивают высокую эффективность трансфекции, относительно низкую цитотоксичность и воспроизводимость. Применение рассматриваемых методов контроля целесообразно в совокупности на этапе конструирования экспрессионных систем, однако в производственных условиях основным критерием их функциональности является тотальный выход специфического рекомбинантного белка, регистрируемый при помощи антигенного иммуноферментного анализа.

Введение. Классическая чума свиней продолжает оставаться важной проблемой свиноводства. В Российской Федерации последняя вспышка была зарегистрирована в 2020 г. в популяции диких кабанов, однако риск возникновения новых случаев болезни сохраняется. Для снижения имеющейся угрозы необходимо совершенствование мер эпизоотологического наблюдения и контроля.
Цель исследования. Анализ текущей эпизоотической ситуации и результатов реализуемого на территории Российской Федерации эпизоотологического наблю­ дения за классической чумой свиней с разработкой предложений по его совершенствованию.
Материалы и методы. Для анализа использовались данные проведенных в 2020–2024 гг. лабораторных исследований, представленные в электронную государственную информационную систему «Веста» ФГИС «ВетИС», а также материалы Всемирной организации здравоохранения животных, «Методические рекомендации по планированию лабораторных исследований и отбору проб для совершенствования эпизоотологического надзора за классической чумой свиней на территории Российской Федерации», разработанные и утвержденные в ФГБУ «ВНИИЗЖ». Картографирование осуществлялось с помощью онлайн-платформы MapChart, статистическая обработка проводилась в программе Microsoft Excel.
Результаты. На основании анализа международного опыта по ликвидации и контролю болезни описаны аспекты поэтапного оздоровления территории Российской Федерации от классической чумы свиней с перспективами получения соответствующего статуса Всемирной организации здравоохранения животных. Предлагаемая в исследовании стратегия эпизоотологического наблюдения включает комплексный подход с немедленными уведомлениями о подозрении на классическую чуму свиней, проведением синдромного анализа, клиническими исследованиями животных и патолого-анатомическим вскрытием трупов, ветеринарным предубойным осмотром животных и экспертизой продуктов убоя, наблюдением в дозорных единицах, проведением эффективного пробоотбора и лабораторной диагностики. Обсуждены перспективы зонирования территории России, поэтапного отказа от иммунизации живыми (аттенуированными) вакцинами, применения маркированных вакцин.
Заключение. Изложенные подходы гармонизированы с международными рекомендациями и соответствуют цели оздоровления страны от классической чумы свиней. Реализация всех предложенных этапов будет способствовать усилению контроля за болезнью в России и увеличению экспортного потенциала отечественной свиноводческой отрасли.

Введение. Грипп птиц и ньюкаслская болезнь представляют собой серьезную угрозу для здоровья птиц. Оба заболевания характеризуются высокой контагиозностью и в условиях быстрого распространения могут привести к серьезным убыткам. Признаки болезней часто схожи, что затрудняет быструю диагностику и принятие экстренных мер по изоляции больных особей. Оперативное распознавание заболеваний является критически важным для своевременного реагирования.
Цель исследования. Целью работы является разработка простой тест-системы для детекции вируса гриппа птиц и парамиксовирусов в органах больных и павших птиц при возникновении вспышек заболеваний в птицеводческих хозяйствах.
Материалы и методы. Для дифференциации вирусов гриппа птиц и парамиксовирусов в патологическом материале, полученном от больной и павшей птицы, применяли 96-луночные планшеты, покрытые раствором фетуина и анти-ВНБ IgY в соответствующих лунках. Полученные данные сопоставляли с результатами, полученными методами полимеразной цепной реакции и титрования на куриных эмбрионах.
Результаты. Разработанный метод выявления возбудителей основан на разных принципах связывания вирусов. Вирус гриппа связывается с рецепторным аналогом, а парамиксовирусы – с антителами к вирусу ньюкаслской болезни. Ранее на примере сотен штаммов было показано, что вирус гриппа А разных субтипов связывается с сиалогликозильными остатками сывороточного белка эмбриона коровы – фетуина. В то же время ни один из исследованных при проведении работы изолятов парамиксовирусов не связывался с данным сиалогликопротеином. Для связывания парамиксовирусов использовали иммуноглобулины, выделенные из яичного желтка кур, иммунизированных против ньюкаслской болезни. Связывание проводили на 96-луночных плашках в системе, аналогичной иммуноферментному анализу.
Заключение. Разработанный способ выявления вирусов в гомогенатах тканей органов инфицированных кур позволяет за несколько часов идентифицировать и дифференцировать вирусы гриппа птиц и ньюкаслской болезни, что является важным шагом в предотвращении распространения и ликвидации очагов опасных болезней.

Введение. Хитозан, благодаря иммуномодулирующим и мукоадгезивным свойствам, является перспективным адъювантом для вакцин. Безопасность, в частности отсутствие цитотоксичности, – ключевое требование к адъювантам. Исследования in vitro позволяют определять биосовместимость препарата хитозана до тестирования на животных.

Цель исследований. Исследовать цитотоксическое действие раствора низкомолекулярного хитозана в концентрации 10 мг/мл на культурах фибробластов эмбриона кур и эпителиоподобных клеток коронарных сосудов теленка для обоснования его дальнейшего применения в качестве вакцинного адъюванта.

Материалы и методы. Применяли низкомолекулярный хитозан (степень деацетилирования – 90%) в 1%-м растворе глутаминовой кислоты, pH 6,9. Цитотоксичность определяли комплексно, используя метод витального окрашивания трипановым синим (оценка жизнеспособности), прижизненное микроскопическое наблюдение (оценка морфологии) и расчет индекса пролиферации после 72-часовой инкубации при температуре +37 °С в атмосфере 5%-го диоксида углерода.

Результаты и обсуждение. Количество жизнеспособных клеток фибробластов эмбриона кур и коронарных сосудов теленка после двухчасовой инкубации с хитозаном соответствовало значениям 97,4 и 98,7%, не имеющим статистически значимых отличий от контролей (97,6 и 96,4%). При микроскопическом наблюдении клетки в опытной группе через 72 ч инкубации формировали плотный однородный монослой без признаков цитопатического эффекта, вакуолизации, без изменений морфологии, аналогичный таковому в контрольных лунках. Индексы пролиферации в опытных и контрольных группах были сопоставимы: для фибробластов эмбриона кур – 3,9 и 3,6, для коронарных сосудов теленка – 3,7 и 3,8, что свидетельствует об отсутствии цитостатического действия изучаемого препарата.

Заключение. Хитозан низкомолекулярный в концентрации 10 мг/мл не проявляет цитотоксических или цитостатических свойств in vitro в отношении тестируемых клеток. Полученные данные подтверждают его биосовместимость и являются основанием для дальнейших исследований in vivo с целью разработки безопасных и действенных вакцин для ветеринарного применения.