Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год

https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-102-108

Полный текст:

Аннотация

Учитывая широкое распространение микоплазмозов крупного рогатого скота в странах с развитым животноводством и торговые связи Российской Федерации с зарубежными партнерами, в том числе импорт племенного скота и спермы от быков-производителей, проблема контроля микоплазмозов не теряет своей актуальности. В работе представлены результаты исследования 1186 проб биоматериала (кровь, сыворотка крови, назальные смывы, молоко, смывы с препуции и вагинальные смывы, абортированные и мертворожденные плоды), полученных от животных с клиническими признаками респираторной и/или репродуктивной патологии из 34 различных регионов Российской Федерации в период с 2015 по 2018 г. Указанные образцы были исследованы на наличие геномов таких возбудителей микоплазмозов, как Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma dispar, методом полимеразной цепной реакции в реальном времени. В результате проведенных исследований геном M. bovis был обнаружен в 10,1% проб, геном M. bovigenitalium выявлен в 8,6% проб, а геном М. dispar регистрировали в 37,15% проб. Также с помощью ПЦР-исследования было протестировано 927 образцов семенной жидкости, поступивших из отечественных и иностранных племенных хозяйств. Полученные результаты показали наличие геномов M. bovis и M. bovigenitalium в образцах спермы от местного поголовья быков. Представленные данные подтверждают выводы отечественных ученых о широком распространении микоплазмозов среди крупного рогатого скота на территории Российской Федерации и угрозе заноса возбудителей заболевания с ввозимой спермой. Все это указывает на необходимость контроля спермопродукции, как источника распространения микоплазмозов, а также на недостаточность однократного исследования семени для присвоения племенному хозяйству статуса благополучия для реализации генетического материала.

Об авторах

Мохаммад Абед Алхуссен
ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» (РУДН)
Россия
Абед Алхуссен Мохаммад, аспирант департамента ветеринарной медицины аграрно-технологического института


А. А. Нестеров
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия
Нестеров Александр Александрович, кандидат ветеринарных наук, младший научный сотрудник референтной лаборатории болезней крупного рогатого скота


В. В. Кирпиченко
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия
Кирпиченко Владимир Владимирович, аспирант, референтная лаборатория болезней крупного рогатого скота


С. П. Яцентюк
ФГБУ «Всероссийский государственный Центр качества и стандартизации лекарственных средств для животных и кормов» (ФГБУ «ВГНКИ»)
Россия
Яцентюк Светлана Петровна, кандидат биологических наук, заведующий отделом генодиагностики инфекционных болезней животных отделения биотехнологии


А. В. Спрыгин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия
Спрыгин Александр Владимирович, к андидат биологических наук, старший научный сотрудник референтной лаборатории болезней крупного рогатого скота


О. П. Бьядовская
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия
Бьядовская Ольга Петровна, кандидат биологических наук, заведующий референтной лабораторией болезней крупного рогатого скота


А. В. Кононов
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия
Кононов Александр Владимирович, кандидат ветеринарных наук, начальник отдела диагностики и  профилактики болезней сельскохозяйственных животных


Список литературы

1. Eissa S. I., Hassan A. M., Hashem Y. M., Shaker M. M. Comparative molecular study of Mycoplasma bovis isolates from Egyptian buffaloes and cows suffered from mastitis. European J. Biol. Sci. 2012; 4 (4): 114–120. DOI: 10.5829/idosi.ejbs.2012.4.4.6668.

2. Nicholas R. A., Ayling R. D. Mycoplasma bovis: Disease, diagnosis, and control. Res. Vet. Sci. 2003; 74 (2): 105–112. DOI: 10.1016/s0034-5288(02)00155-8.

3. Fox L. K. Mycoplasma mastitis: Causes, transmission, and control. Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2012; 28 (2): 225–237. DOI: 10.1016/j.cvfa.2012.03.007.

4. Eissa S., Hashem Y., Abo-Shama U. H., Shaker M. Sequence analysis of three genes of Mycoplasma bovis isolates from Egyptian cattle and buffaloes. British Microbiol. Res. J. 2016; 14 (3): 1–10. DOI: 10.9734/BMRJ/2016/25014.

5. Mustafa R., Qi J., Ba X., Chen Y., Hu Ch., Liu X., et al. In vitro quinolones susceptibility analysis of chinese Mycoplasma bovis isolates and their phylogenetic scenarios based upon QRDRs of DNA topoisomerases revealing a unique transition in ParC. Pak. Vet. J. 2013; 33 (3): 364–369. Available at: http://pvj.com.pk/pdf-files/33_3/364-369.pdf.

6. Protection & Response. Biosecurity New Zealand. Available at: https:// www.biosecurity.govt.nz/protection-and-response/mycoplasma-bovis/resources-for-mycoplasma-bovis/media-releases/.

7. Haapala V., Pohjanvirta T., Vähänikkilä N., Halkilahti J., Simonen H., Pelkonen S., et al. Semen as a source of Mycoplasma bovis mastitis in dairy herds. Vet. Microbiol. 2018; 216: 60–66. DOI: 10.1016/j.vetmic.2018.02.005.

8. Pothmann H., Spergser J., Elmer J., Prunner I., Iwersen M., Klein-Jöbstl D., Drillich M. Severe Mycoplasma bovis outbreak in an Austrian dairy herd. J. Vet. Diagn. Invest. 2015; 27 (6): 777–783. DOI: 10.1177/1040638715603088.

9. Arcangioli M. A., Chazel M., Sellal E., Botrel M. A., Bezille P., Poumarat F., Calavas D., Le Grand D. Prevalence of Mycoplasma bovis udder infection in dairy cattle: Preliminary field investigation in Southeast France. N. Z. Vet. J. 2011; 59 (2): 75–78. DOI: 10.1080/00480169.2011.552856.

10. Surýnek J., Vrtková I., Knoll A. mycoplasma bovis was not detected in milk from dairy cattle in the Czech Republic. Acta Univ. Agric. Silvic. Mendelianae Brun. 2016; 64 (1): 165–168. DOI: 10.11118/actaun201664010165.

11. Filioussis G., Christodoulopoulos G., Thatcher A., Petridou V., BourtziChatzopoulou E. Isolation of Mycoplasma bovis from bovine clinical mastitis cases in Northern Greece. Vet. J. 2007; 173 (1): 215–218. DOI: 10.1016/j.tvjl.2005.08.001.

12. Bednarek D., Ayling R. D., Nicholas R. A., Dudek K., Szymańska-Czerwinska M. Serological survey to determine the occurrence of respiratory Mycoplasma infection in the Polish cattle population. Vet. Rec. 2012; 171 (2):45. DOI: 10.1136/vr.100545.

13. Al-Farha A. A., Hemmatzadeh F., Khazandi M., Hoare A., Petrovski K. Evaluation of effects of Mycoplasma mastitis on milk composition in dairy cattle from South Australia. BMC Vet. Res. 2017; 13 (1):351. DOI: 10.1186/s12917-017-1274-2.

14. Calcutt M. J., Lysnyansky I., Sachse K., Fox L. K., Nicholas R. A. J., Ayling R. D. Gap analysis of Mycoplasma bovis disease, diagnosis and control: An aid to identify future development requirements. Transbound. Emerg. Dis. 2018; 65 (Suppl 1): 91–109. DOI: 10.1111/tbed.12860.

15. Punyapornwithaya V., Fox L. K., Hancock D. D., Gay J. M., Alldredge J. R. Association between an outbreak strain causing Mycoplasma bovis mastitis and its asymptomatic carriage in the herd: A case study from Idaho, USA. Prev. Vet. Med. 2010; 93 (1): 66–70. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2009.08.008.

16. Dos Santos S. B., Pinheiro Júnior J. W., Oliveira A. A. F., Mota A. R., Baltazar de Oliveira J. M., Veras G. A., et al. Ocorrência de Mollicutes e Ureaplasma spp. em surto de doença reprodutiva em rebanho bovino no Estado da Paraíba. Pesq. Vet. Bras. 2013; 33 (3): 315–318. DOI: 10.1590/S0100-736X2013000300007.

17. Gambarini M. L., Kunz T. L., Oliveira Filho B. D., Porto R. N., Oliveira C. M., Brito W. M., Viu M. A. Granular vulvovaginitis syndrome in nelore pubertal and post pubertal replacement heifers under tropical conditions: Role of Mycoplasma spp., Ureaplasma diversum and BHV-1. Trop. Anim. Health Prod. 2009; 41 (7): 1421–1426. DOI: 10.1007/s11250-009-9330-y.

18. Marouf S. A., Mohamed Kh. F., EL-Jakee J. Detection of Mycoplasma bovis and Mycoplasma bovigenitalium in cattle and buffalo in Egypt using dot ELISA and PCR with anti-microbial trials. European J. Biol. Sci. 2011; 3 (1): 1–8. Available at: https://www.idosi.org/ejbs/3(1)11/1.pdf.

19. Macêdo A. A. M., Oliveira J. M. B., Silva B. P., Borges J. M., Soares L. B. F., Silva G. M., et al. Occurrence of Mycoplasma bovigenitalium and Ureaplasma diversum in dairy cattle from to Pernambuco state, Brazil. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. 2018; 70 (6): 1798–1806. DOI: 10.1590/1678-4162-10132.

20. Ghanem M. E., Higuchi H., Tezuka E., Ito H., Devkota B., Izaike Y., Osawa T. Mycoplasma infection in the uterus of early postpartum dairy cows and its relation to dystocia and endometritis. Theriogenology. 2013; 79 (1): 180–185. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2012.09.027.

21. Cardoso M. V., Vasconcellos S. A. Importância Das Micoplasmoses Na Fertilidade de Touros. Arquivos Do Instituto Biológico. 2004; 71 (2): 257–265.

22. Junqueira J. R. C., Alfieri A. A. Falhas da reprodução na pecuária bovina de corte com ênfase para causas infecciosas [Reproductive failures in beef cattle breeding herds with emphasis for infectious causes]. Semina: Ciências Agrárias. 2006; 27 (2): 288–298. DOI: 10.5433/1679-0359.2006v27n2p289.

23. Mosier D. Review of BRD pathogenesis: The old and the new. Anim. Health Res. Rev. 2014; 15 (2): 166–168. DOI: 10.1017/S1466252314000176.

24. Tortorelli G., Carrillo Gaeta N., Mendonça Ribeiro B. L., Miranda Marques L., Timenetsky J., Gregory L. Evaluation of Mollicutes microorganisms in respiratory disease of cattle and their relationship to clinical signs. J. Vet. Intern. Med. 2017; 31 (4): 1215–1220. DOI: 10.1111/jvim.14721.

25. Козлова А. Д., Горбачева Н. С., Хаерова Р. Ф., Красникова М. С., Лазарева Е. А., Яцентюк С. П. Дифференциация Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma californicum и выявление Ureaplasma diversum методом ПЦР в реальном времени. Сельскохозяйственная биология. 2019; 54 (2): 378–385. DOI: 10.15389/agrobiology.2019.2.378rus.

26. Урбан В. П., Найманов И. Л. Болезни молодняка в промышленном животноводстве. М.: Колос; 1984. 207 c.

27. Красиков А. П., Рудаков Н. В. Микоплазмозы человека и животных и их эпидемиологическое и эпизоотологическое значение: монография. Омск: Омский научный вестник; 2016. 608 с.

28. Сухинин А. А., Макавчик С. А., Кузьмин В. А., Фогель Л. С., Орехов Д. А., Карпенко Л. Ю., Кан Ф. Л. Методические рекомендации по профилактике и ликвидации микоплазмозов сельскохозяйственных животных, в том числе птиц. СПб.: ФГБОУ ВО СПбГАВМ; 2017. 23 с. eLIBRARY ID: 30063528.


Для цитирования:


Абед Алхуссен М., Нестеров А.А., Кирпиченко В.В., Яцентюк С.П., Спрыгин А.В., Бьядовская О.П., Кононов А.В. Распространение микоплазмозов крупного рогатого скота на животноводческих фермах в Российской Федерации в период с 2015 по 2018 год. Ветеринария сегодня. 2020;(2):102-108. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-102-108

For citation:


Abed Alhussen M., Nesterov A.A., Kirpichenko V.V., Yatsentyuk S.P., Sprygin A.V., Byadovskaya O.P., Kononov A.V. Bovine mycoplasmosis occurrence on livestock farms in the Russian Federation for 2015–2018. Veterinary Science Today. 2020;(2):102-108. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-102-108

Просмотров: 85


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)