Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

Ежеквартальный научный журнал «Ветеринария сегодня» основан в 2012 году и зарегистрирован в Федеральной службе по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций, свидетельство о регистрации № ФС77-49033 от 21 марта 2012 г. Журналу присвоен международный стандартный серийный номер ISSN 2304-196Х (Print), ISSN 2658-6959 (Online).

Миссией издания является представление информации об основных направлениях развития российской и мировой ветеринарной науки и практики и привлечение внимания научной общественности к актуальным проблемам и инновационным разработкам в области ветеринарии.

Основной целью деятельности журнала «Ветеринария сегодня» является знакомство научной общественности и широкого круга читателей с современными достижениями российской и мировой ветеринарной науки.

В журнале публикуются оригинальные завершенные фундаментальные и прикладные научные работы в области общей и ветеринарной вирусологии, бактериологии, иммунологии, микологии, микотоксикологии, эпизоотологии, обзорные статьи, рецензии и информационные сообщения о российских и международных научно-практических мероприятиях с целью внедрения в науку и практику достижений ветеринарной науки, которые будут способствовать снижению ущерба, наносимого инфекционными заболеваниями животных.

Журнал ориентирован на ученых, занимающихся фундаментальными и прикладными исследованиями в области общей и ветеринарной вирусологии, эпизоотологии, иммунологии, микологии, митоксикологии, бактериологии, практикующих ветеринарных врачей и врачей ветеринарных лабораторий и государственных ветеринарных служб, преподавателей ВУЗов ветеринарной, биологической, медицинской направленностей, аспирантов и студентов ВУЗов и колледжей.

Учредитель журнала «Ветеринария сегодня» - Федеральное государственное бюджетное учреждение «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»), г. Владимир, мкр. Юрьевец.

На основании Распоряжения № Р-154 от 21 сентября 2015 года Министерства образования и науки Российской Федерации научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в Перечень рецензируемых научных изданий, в которых должны быть опубликованы основные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук и на соискание ученой степени доктора наук по специальностям:

  • 03.02.02 – Вирусология (ветеринарные науки);
  • 06.02.02 – Ветеринарная микробиология, вирусология, эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология (ветеринарные науки).

Научный журнал «Ветеринария сегодня» соответствует всем требованиям, предъявляемым к рецензируемым научным изданиям.

Журнал «Ветеринария сегодня» представлен в Научно-электронной библиотеке (НЭБ) – головном исполнителе проекта по созданию Российского индекса научного цитирования (РИНЦ). Электронные версии журнала размещаются в полнотекстовом формате на сайте Научной электронной библиотеки eLIBRARY.RU.

Научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в информационно-аналитическую систему-Российский индекс научного цитирования (РИНЦ). Электронные версии журнала размещаются в полнотекстовом формате на сайте Научной электронной библиотеки (НЭБ) e-LIBRARY.RU.

Научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в список журналов, входящих в базу данных RSCI (Russian Science Citation Index).

С 2020 года журнал «Ветеринария сегодня» включен в международную базу данных на платформе EBSCOhost.

Журнал «Ветеринария сегодня» распространяется на территории России, а также в профильные научные центры других стран. Статьи публикуются на русском и английском языках.

Текущий выпуск

№ 4 (2021)
Скачать выпуск PDF

ОБЗОРЫ|ОБЩИЕ ВОПРОСЫ 

266-270 33
Аннотация

Краткое сообщение посвящено радикальным изменениям в таксономии вирусов. С помощью метагеномного анализа установлено существование огромного количества разнообразных вирусов в окружающей среде во всех сферах жизни без каких-либо связей с тривиальными паразитизмом, инфекционностью, патогенностью. Представление о вирусах вышло за рамки первоначальной модели паразитических патогенов с признанием их роли в биологии хозяина и поддержании естественных экосистем. Коэволюция вирусного и клеточного геномов включает взаимный горизонтальный перенос генов и совместное создание новых биологических функций как механизм филогенеза и филодинамики соактантов. Сформулированы представления о происхождении вирусов и их отношении ко Всеобщему Древу Жизни. В связи с этим Международный комитет по таксономии вирусов изменил прежний код их классификационной иерархии из пяти рангов на пятнадцатиранговый, тесно согласующийся с современной линнеевской таксономией и вмещающий в систему органического мира весь спектр генетического многообразия виросферы. Изменения в ранговой иерархии таксонов базируются на прогрессе от традиционной сегрегации вирусов на основе фенотипа до многоступенчатого процесса, включающего сравнительные характеристики последовательностей консервативных генов и белков, филогению генов, их синтез, общее содержание. Международный комитет по таксономии вирусов, осуществляющий надзор за официальной классификацией вирусов и номенклатурой таксонов, допускает возможные неиерархические классификации вирусов вне таксономической компетенции. Приведенные положения иллюстрированы схемами химерного полифилетического происхождения вирусов и новой ранговой структуры, в таблице даны примеры современной классификации вирусов – возбудителей некоторых социально значимых инфекций.

БОЛЕЗНИ КРС 

271-276 37
Аннотация

Несмотря на большое количество работ, посвященных характеристике предложенных методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота и механизмам проявления неспецифических реакций у больных и здоровых животных, многие аспекты этой проблемы требуют дополнительного изучения. До настоящего времени многие специалисты придерживаются точки зрения, сформулированной при изучении причин псевдоаллергических реакций, согласно которой возбудители актиномикозной инфекции, трематодозной инвазии и др. могут быть причиной сенсибилизации макроорганизма животных к ППД-туберкулину для млекопитающих. Возможность сенсибилизации организма крупного рогатого скота к туберкулину Аctinomyces bovis изучали на 240 больных актиномикозом животных из 3473 исследованных. Из числа больных только 11 голов (4,6%) реагировали на ППД-туберкулин для млекопитающих. При бактериологическом исследовании материала от убитых с диагностической целью животных (реагировавших и не реагировавших на туберкулин с подтвержденным на актиномикоз патолого-анатомическим диагнозом) изолированы культуры кислотоустойчивых нетуберкулезных микобактерий. Отсутствие аллергизирующих к туберкулину свойств у Actinomyces bovis было подтверждено результатами эксперимента, проведенного на 628 животных одного из молочных комплексов, где только у одной из 96 (15,2%) реагирующих на туберкулин коров выявили актиномикоз. Про- веденные клинические исследования с высокой степенью достоверности (Р < 0,005) позволили установить отсутствие взаимосвязи между аллергией на ППД-туберкулин для млекопитающих и актиномикозным инфекционным процессом. Полученные результаты свидетельствуют о несовершенстве дифференциальной диагностики, и дальнейшие исследования в этой области должны внести существенный вклад в развитие представлений о неспецифической сенсибилизации организма крупного рогатого скота к туберкулину.

БОЛЕЗНИ МЕЛКОГО РОГАТОГО СКОТА 

277-284 33
Аннотация

Российская Федерация признана страной, благополучной по чуме мелких жвачных. Поскольку данное заболевание поражает как домашних, так и диких мелких жвачных, необходимо оценить уровень угрозы, связанный с разнообразием дикой фауны в граничащих с Россией странах, в которых зарегистрированы вспышки чумы мелких жвачных. Для этого было проведено исследование ареалов обитания различных видов диких животных, восприимчивых к данному заболеванию. С целью изучения взаимодействия популяций различных видов животных с использованием данных зоологических исследований была составлена карта ареалов обитания диких восприимчивых животных, на которой также отмечены вспышки чумы среди диких животных, позволяющие выявить существующую возможность распространения инфекции внутри этих популяций и заноса инфекции на территорию страны. В ходе анализа эпизоотической ситуации по чуме мелких жвачных установлено, что в приграничных государствах зафиксированы случаи заболевания диких горных (горные козлы и бараны) и степных мигрирующих (джейраны и сайгаки) животных. Выявлена опасность распространения данной высококонтагиозной вирусной болезни среди диких мелких жвачных Монголии (вероятность реализации события 0,77). При определении возможных направлений и факторов заноса инфекции с дикими восприимчивыми жвачными был проведен экспертный опрос, в котором специалисты в области эпизоотологии болезней мелкого рогатого скота оценили вероятность реализации опасности. В ходе опроса было установлено, что ожидается занос чумы мелких жвачных в Российскую Федерацию со стороны Монголии (вероятность 0,81), а самым значимым фактором являются сезонные миграции популяций диких жвачных. Полученные полуколичественные показатели уровня вероятной угрозы можно рекомендовать к использованию при планировании и реализации мер по недопущению заноса и распространения чумы мелких жвачных в интактные популяции домашнего и дикого мелкого рогатого скота на территории Российской Федерации.

БОЛЕЗНИ СВИНЕЙ 

285-294 61
Аннотация

Считается, что вследствие высокой вирулентности вируса африканской чумы свиней его циркуляция на территории Российской Федерации сопровождается низкой серопревалентностью. Однако ввиду длительного неблагополучия, внедрения в популяцию дикого кабана и появления ослабленных вариантов вируса повышается значимость серологических исследований, направленных на выявление антител к возбудителю болезни. Для cбора полевых образцов биологического материала от животных с целью проведения молекулярно-генетических, вирусологических и серологических исследований можно использовать фильтровальную бумагу, а также зонд-тампоны. Специфичность и чувствительность твердофазного иммуноферментного анализа при исследовании образцов крови, нанесенной на фильтровальную бумагу, уступают результатам, получаемым при исследовании сыворотки крови, но тем не менее позволяют с успехом выявлять специфические антитела к вирусу африканской чумы свиней. Показана возможность использования фильтровальной бумаги, пропитанной кровью животных, для исследования методом иммуноблоттинга, однако оптимального результата удалось добиться при использовании иммунопероксидазного метода в сочетании с пробами, отобранными зонд-тампонами. При сравнении результатов твердофазного иммуноферментного анализа сывороток крови, полученных от домашних свиней (зараженных вирусом африканской чумы свиней изолятов Антоново 07/14 и Собинка 07/15), и крови, отобранной на фильтровальную бумагу при скарификации ушных вен, чувствительность составила 88,9%, специфичность – 90,6%. Однако использование иммунопероксидазного метода при исследовании образцов высушенной на зонд-тампоне крови показало 100%-е совпадение с иммуноферментным анализом, в то время как при исследовании сыворотки крови иммунопероксидазный метод превзошел иммуноферментный анализ по чувствительности. Следовательно, отбор крови с применением зонд-тампонов может быть рекомендован для проведения исследований после соответствующей валидации. Данный метод может быть особенно полезен для сбора информации об инфицированных диких кабанах, так как ее отсутствие делает невозможным применение эффективных стратегий эрадикации.

БОЛЕЗНИ ПТИЦ 

295-300 32
Аннотация

В настоящее время практически нет ни одного птицеводческого хозяйства, где бы не регистрировались эймериозы птиц, как моноинвазии, так и в ассоциации с криптоспоридиозами, сальмонеллезами и колибактериозами. С учетом этого факта борьба с данным заболеванием является актуальной задачей, которую необходимо решать комплексно, с применением различных эймериостатиков, антибиотиков и пробиотиков. Изыскание новых эффективных препаратов, обладающих широким спектром антипаразитарного действия, – одно из приоритетных направлений в борьбе с эймериозами птиц. В производственных условиях одной из птицефабрик Республики Дагестан на цыплятах-бройлерах провели сравнительные испытания различных комбинаций эймериоцидных препаратов: соликокс + чиктоник, мадувет + тилозин и эйметерм + энрофлоксацин – с целью выявления их лечебной и профилактической эффективности. Для проведения исследований по принципу аналогов сформировали четыре группы цыплят-бройлеров: одна – контрольная и три – опытные – по 50 голов в каждой. В контрольной группе использовали схему лечебно-профилактических мероприятий, принятую в данном птицеводческом хозяйстве. Цыплята-бройлеры первой опытной группы получали препарат соликокс в дозе 2 мл на 1 л питьевой воды в сочетании с кормовой добавкой чиктоник в дозе 1 мл на 1 л воды в течение 4–5 дней. Цыплятам второй группы с кормом задавали препарат мадувет в дозе 3−5 мг/кг массы тела двукратно и тилозин в дозе 5 г порошка на 10 л воды один раз в сутки в течение 5 дней, при необходимости процедуру повторяли через 14–16 дней. Цыплята-бройлеры третьей группы два дня получали с водой 2,5%-й препарат эйметерм в дозе 7 мг/кг массы тела в комбинации с энрофлоксацином в дозе 3 мл на 1 л питьевой воды в течение 5–6 дней. Показано, что в опытных группах после применения эймериоцидных препаратов наблюдали уменьшение количества клинически больных особей и снижение падежа, что способствовало улучшению зоотехнических показателей при выращивании цыплят-бройлеров. Экстенс- и интенсэффективность препаратов в первой группе цыплят составила 89,2 и 96%, во второй группе − 87,6 и 94%, в третьей – 81,4 и 96% соответственно. У птиц контрольной группы наблюдали клинические признаки эймериоза в течение всего периода исследования, а показатели экстенсивности и интенсивности инвазии составили 87,6 и 42,6% соответственно.

301-307 35
Аннотация

Грипп птиц является особо опасной болезнью вирусной этиологии, наносящей огромный экономический ущерб птицеводству. В настоящее время в популяциях домашних и диких птиц в различных странах мира достаточно часто выявляют высоковирулентный вирус гриппа с нейраминидазой подтипа N8. В статье представлены данные по изучению полных нуклеотидных последовательностей гена нейраминидазы изолятов вируса высокопатогенного гриппа птиц, выделенных во второй половине 2020 г. из патологического материала, поступившего из четырех регионов Российской Федерации. В результате проведенных исследований определен подтип выделенного вируса – N8. Согласно данным филогенетического анализа, изоляты вируса N8 относятся к группе 8С.4. При проведении филогенетического анализа по нейраминидазе также учитывали данные классификации по гемагглютинину, согласно которой изоляты вируса Н5N8 относятся к широко распространенной кладе 2.3.4.4. Вирусы данной клады впервые зарегистрированы в 2010 г. в Китае и продолжают циркулировать до настоящего времени. Также в работе приведены данные сравнительного анализа нуклеотидных последовательностей исследуемых изолятов и изолятов из международных баз данных GenBank и GISAID, выделенных в других странах в период с 2007 по 2020 г. В ходе про- ведения анализа аминокислотной последовательности исследуемых изолятов в позициях, которые влияют на резистентность к ингибиторам нейрамини- даз, замен не обнаружено. Полные нуклеотидные последовательности гена нейраминидазы вируса гриппа птиц подтипа N8 изолятов A/domestic goose/ Omsk/1521-1/2020, A/duck/Chelyabinsk/1207-1/2020, A/duck/Saratov/1578-2/2020, A/goose/Tatarstan/1730-2/2020 опубликованы в международных базах GenBank и GISAID. На основании анализа нуклеотидных последовательностей изученных изолятов показана постепенная эволюция вируса подтипа N8.

308-316 41
Аннотация

В статье представлены результаты эпизоотологического мониторинга гриппа птиц на территории Республики Крым в 2019−2020 гг. При изучении циркуляции вируса гриппа птиц особое внимание уделено акваториям Азовского и Черного морей, заливу Сиваш и пресноводным озерам городского округа Феодосия, Ленинского, Советского, Нижнегорского, Черноморского и Сакского районов. При обследовании вышеуказанных районов было отмечено обмеление и пересыхание некоторых пресноводных водоемов, деградация водной растительности. Анализ состояния обследуемых природных биотопов за 2019 и 2020 гг. показал снижение численности диких околоводных птиц. Произведен отбор проб патологического материала от околоводной и дикой перелетной птицы, а также от птиц, содержащихся на птицефабриках и в личных подсобных хозяйствах граждан. Полученные образцы исследовали методом полимеразной цепной реакции в реальном времени с обратной транскрипцией. В 2019 г. в одной пробе помета от дикой птицы с озера Кучук-Аджиголь городского округа Феодосия обнаружен геном вируса гриппа А птиц подтипа Н9. В результате проведенных в 2020 г. лабораторных исследований патологического материала (останки лебедя-шипуна), отобранного на береговой линии пресноводного озера вблизи с. Ермаково Джанкойского района, выявлен геном вируса гриппа А подтипа Н5. На базе ФГБУ «ВНИИЗЖ» (г. Владимир) был проведен генетический анализ и определен подтип нейраминидазы выделенного изолята вируса гриппа – N8. Сравнительный генетический анализ нуклеиновых последовательностей фрагмента гена H длиной 258 н. о. вируса гриппа птиц показал, что выявленный изолят принадлежит к азиатской генетической линии вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа H5 (клада 2.3.4.4), получившего эпизоотическое распространение в 2016−2020 гг. в странах Азии, Европы, Ближнего Востока и Африки.

БОЛЕЗНИ МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ 

317-322 19
Аннотация

В настоящее время основной мерой борьбы с бешенством является вакцинопрофилактика домашних и диких животных, для этого используют инактивированные и живые препараты. Вакцины для оральной иммунизации диких плотоядных животных содержат живые аттенуированные вирусы бешенства, которые в жидком или лиофилизированном виде помещают внутрь съедобной приманки. В связи с отсутствием однозначных данных о преимуществах жидкого и лиофилизированного перорального препарата при формировании у животных поствакцинального иммунитета против бешенства было проведено сравнительное изучение эффективности данных антирабических вакцин, изготовленных из штамма VRC-RZ2 вируса бешенства. Иммуногенную эффективность изучали на беспородных, серонегативных к антигенам вируса бешенства собаках в возрасте от 3 мес. и старше. Животных случайным образом разделили на три группы: две опытные и контрольную. В первой группе собакам скармливали брикет-приманку, содержащую блистер с жидкой вируссодержащей суспензией, во второй группе – брикет-приманку, внутрь которой помещена желатиновая капсула с лиофилизированной суспензией вируса. Через 21 сут после иммунизации у всех животных отбирали пробы крови, полученные из них сыворотки исследовали в реакции нейтрализации для определения титров вируснейтрализующих антител. Напряженность антирабического иммунитета у вакцинированных собак оценивали путем интрацеребрального заражения животных вирулентным вирусом бешенства штамма CVS. В результате проведенного исследования установлено, что в обеих группах иммунизированных собак титры вируснейтрализующих антител были примерно одинаковыми и находились в диапазоне от 3,25 до 4,33 log2. Выработанные у иммунизированных собак вируснейтрализующие антитела обеспечивали надежную защиту от вирулентного вируса штамма CVS. Все животные контрольной группы после заражения погибли с клиническими признаками паралитической формы бешенства. Полученные результаты свидетельствуют об эффективности обеих форм оральных вакцин против бешенства.

323-328 33
Аннотация

Изучение характера взаимодействия вируса с клеткой имеет как научное, так и практическое значение. Целью настоящих исследований явилась сравни- тельная оценка проявления ряда биологических свойств вирусов миксомы и фибромы Шоупа кроликов при репродукции в клональной перевиваемой линии клеток почки кролика RK-13/2-03. Показано, что развитие инфекции и длительность проявления цитопатического действия в культуре клеток RK-13/2-03 изучаемых вирусов различны. Видимые поражения клеточного монослоя при одинаковой множественности заражения и температуре культивирования для вируса миксомы наблюдали на 2-е сут, для вируса фибромы – на 3-и сут, максимальное поражение клеток с выраженной дегенерацией отмечали на 3-и и 6-е сут культивирования соответственно. Вирус миксомы накапливался в титре 6,25–6,50 lg ТЦД50/0,2 см3, а вирус фибромы Шоупа – в титре 5,50−5,75 lg ТЦД50/0,2 см3. Данную инфекционную активность регистрировали у вируса фибромы Шоупа на протяжении трех, а вируса миксомы – двадцати пассажных уровней. Молекулярно-генетический анализ подтвердил, что полученные культуральные материалы идентифицируются как вирусы миксомы кроликов и фибромы Шоупа. При определении антигенного родства было установлено, что антитела, полученные к вирусу миксомы, способны нейтрализовать и вирус фибромы Шоупа. Титр антител в реакции нейтрализации обоих вирусов был идентичен и составил 1:8. Установлен высокий уровень пермиссивности культуры клеток RK-13/2-03 к вирусу фибромы Шоупа, изолированному от больного кролика и не являющемуся аттенуированным вариантом вируса.

329-334 29
Аннотация

Согласно данным официальной статистики, в Российской Федерации ситуация по паразитарным болезням остается неблагополучной. Вопросы санитарного загрязнения почв разных объектов яйцами Echinococcus granulosus остаются недостаточно изученными, поэтому целью исследования являлось изучение эхинококкоза собак как угрозы эпизоотическому, эпидемиологическому и санитарно-гигиеническому благополучию субъектов Северного Кавказа. Гельминтологические исследования проб фецес приотарных собак провели в семи регионах Северного Кавказа: Ставропольском крае, Карачаево-Черкесской Республике, Кабардино-Балкарской Республике, Республике Северная Осетия – Алания, Республике Ингушетия, Чеченской Республике, Республике Дагестан. В результате установлено, что средний индекс встречаемости инвазии эхинококкоза составил 85,07%. В 1400 пробах средний индекс обилия яиц Echinococcus granulosus был равен 22,73 ± 1,49 экз. в 10 г фецес собак. Полученные данные свидетельствуют о санитарном неблагополучии субъектов по данной инвазии и широком распространении зооноза в региональном масштабе. Санитарно-гельминтологические исследования 14 000 проб почвы присельских пастбищ на обсемененность яйцами тениат, в т. ч. Echinococcus granulosus, показали, что в Ставропольском крае инвазированность составила 65,80%, в Карачаево-Черкесии экстенсивный показатель инвазии почв составил 79,00%, в Кабардино-Балкарии − 82,60%, в Северной Осетии – Алании − 74,65%, в Ингушетии − 88,20%, в Чечне − 83,75%, в Дагестане − 79,85%. Представленные результаты указывают на высокий уровень контаминации почв региона инвазионными элементами. Показано, что обсемененность почв пастбищных угодий жизнеспособными яйцами Echinococcus granulosus находилась в прямой зависимости от экологических особенностей региона: наибольшее количество жизнеспособных яиц Echinococcus granulosus содержалось в почвах предгорной зоны, меньшее – на равнинной территории и минимальное – в горной зоне. При этом установленного количества яиц в пробах почвы пастбищ достаточно для поддержания стойкого неблагополучия субъектов по эхинококкозу животных и человека. Результаты санитарно-гельминтологической экспертизы 7500 проб почв 119 скотопрогонных трасс субъектов Северного Кавказа свидетельствуют о 100%-й обсемененности паразитарными агентами, что создает угрозу осложнения эпидемиологической и эпизоотической обстановки по эхинококкозу на территории региона.

ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ 

335-341 23
Аннотация

Золотистый стафилококк (Staphylococcus aureus) – патогенный микроорганизм, вызывающий большое количество заболеваний у человека и животных. Проведено много исследований по генотипированию Staphylococcus aureus, выделенных у людей и при маститах у коров, но данных по типированию Staphylococcus aureus, обнаруженного у обезьян, в зарубежной литературе не найдено. Однако инфекции стафилококковой природы у приматов распространены широко. В статье представлены результаты молекулярно-генетического изучения золотистых стафилококков, изолированных от низших обезьян, на основе типирования коагулазного гена и полиморфного локуса agr, являющегося регулятором экспрессии генов патогенности. Проведено исследование структуры коагулазного гена (coa) и полиморфных типов регуляторного гена (agr) у 145 изолятов Staphylococcus aureus, выделенных от обезьян разных видов. Получены одиночные фрагменты коагулазного гена четырех размеров: 600, 750, 800 и 900 п. н. По результатам рестрикции эндонуклеазой AluI изученные золотистые стафилококки классифицированы на семь различных coa-типов. Наиболее часто обнаруживали VII генотип (31,7%), реже – II генотип коагулазного гена (9,7%). Для каждого изолята Staphylococcus aureus характерен определенный профиль рестрикции коагулазного гена, следовательно, среди обезьян питомника циркулирует как минимум семь штаммов золотистого стафилококка. При этом стафилококки, содержащие коагулазный ген VII генотипа, являются инвазивными, так как выделены из различных органов и гноя, а также фекалий и носовой полости животных. Анализ результатов исследования показал, что между разными видами обезьян возможна передача бактерий данного вида. Установлено, что, в отличие от обнаруженных у людей изолятов Staphylococcus aureus, в геноме которых преобладает agrI, у изученных в настоящей работе изолятов превалирует agrIV (59,3%). Группы agrII и agrIII детектированы у 5,5 и 2,1% изолятов соответственно.

ОБЩИЕ ВОПРОСЫ 

342-348 29
Аннотация

Представлены результаты научно-производственного опыта применения кормовой добавки на основе эндо- и экзометаболитов Bacillus subtilis коровам в разные физиологические периоды. Изучено ее влияние на функционирование основных систем организма подопытных животных (= 30), показатели молочной продуктивности, интенсивность роста родившихся от них телят (= 18). Коровам из опытных групп вводили в рацион кормовую добавку в дозе 15 г в сутки на 1 голову. Установлено, что кормовая добавка оказывает положительное влияние на нормализацию иммуногематологических и метаболических процессов у коров в послеродовой период. Показатель фагоцитарной активности нейтрофилов у животных 1-й опытной группы увеличился на 12,5%, 2-й опытной группы – на 14,6% по сравнению с контрольной группой (42,8 ± 1,9%). Поглотительная способность нейтрофилов у особей 1-й опытной группы увеличилась в 2,5 раза, 2-й опытной группы – в 3,2 раза, контрольной группы – в 2,1 раза. Содержание относительного количества Т-лимфоцитов в крови животных 1-й и 2-й опытных групп регистрировали на уровне 44,5 и 48,9% соответственно, у особей контрольной группы данный показатель был равен 37,5%. В послеродовой период отмечали тенденцию к увеличению концентрации общего белка в сыворотке крови коров за счет повышения альбуминовой фракции: в 1-й группе – 72,91 ± 3,45 г/л; во 2-й группе – 75,54 ± 4,12 г/л; в контрольной группе – 70,95 ± 4,25 г/л. Установлено, что за 150 дней лактации среднесуточный удой у коров 1-й группы составил 24,50 ± 1,86 кг; 2-й группы – 25,33 ± 1,45 кг; контрольной группы – 22,75 ± 4,41 кг. Зарегистрирована более высокая интенсивность роста телят, рожденных от коров, которым в основной рацион вводили кормовую добавку. Телочки 1-й и 2-й опытных групп за 6 мес. достигли живой массы тела, равной 193,51 ± 5,76 и 195,33 ± 3,76 кг, а особи контрольной – 187,33 ± 4,98 кг. В целях реализации задачи по созданию высокопродуктивного молочного стада и сохранения биологического благополучия сельскохозяйственных животных-продуцентов кормовая добавка на основе комплекса эндо- и экзометаболитов Bacillus subtilis рекомендована к применению в рационах кормления коров.

349-356 20
Аннотация

Хлорелла обладает широким спектром биологической активности, в частности, проявляет выраженную антиоксидантную активность, противовоспалительные, противоопухолевые и противовирусные свойства. Изучению кормовых достоинств этой одноклеточной зеленой водоросли при использовании в составе рационов для сельскохозяйственных животных посвящен ряд исследований, однако вопрос возможности включения разных видов Chlorella в рацион приматов практически не изучен. Целью данной работы была оценка возможности замещения высокопротеиновых кормов животного и растительного происхождения на хлореллу, определение коэффициентов переваримости питательных веществ рационов и влияния сухой и суспензионной форм водоросли на гематологические, биохимические показатели крови у самцов макаков-резусов. Полученные при проведении эксперимента данные свидетельствуют о том, что включение в рацион хлореллы как в сухом виде, так и в виде клеточной суспензии способствует лучшей усвояемости питательных веществ. Так, в группе животных, получавших суспензию водоросли, усвояемость сырого протеина увеличилась на 4,18% (p < 0,05), сырого жира – на 4,70% (< 0,01), сырой клетчатки – на 4,14% (< 0,05) и сырой золы – на 12,32% (< 0,001). У приматов, в рецептуру комбикорма которых был введен порошок хлореллы, коэффициенты переваримости сырого протеина были выше на 6,83% (< 0,001), сырой клетчатки – на 4,78% (< 0,05) и сырой золы – на 18,93% (< 0,001). Результаты гематологических исследований указывают на отсутствие побочных эффектов от длительного употребления хлореллы приматами. Введение в рацион сухой хлореллы способствовало повышению уровня глюкозы в крови до верхней границы контрольных значений, тогда как суспензия хлореллы не оказывала такого эффекта. Таким образом, хлорелла может быть успешно использована в качестве компонента сбалансированного лабораторного рациона для приматов или в качестве кормовой добавки.



Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.