В обзоре представлен анализ данных по исследованию кормов для сельскохозяйственных животных, подготовленный на основании сведений из научных публикаций за период с 1955 по 2020 г. Установлено, что общая комбинированная оценка распространенности выявления сальмонелл составила 0,14 с распространенностью 0,18 в компонентах сырого корма, 0,09 – в готовом корме и 0,08 – в смывах с поверхностей комбикормового оборудования. Вероятность заражения сальмонеллой компонентов сырого корма животного происхождения в 3,9 раза выше, чем компонентов сырого корма растительного происхождения. Отмечена тенденция к сокращению выявления бактерий рода Salmonella в сырьевых компонентах кормов, в то время как выявляемость в готовых кормах остается неизменной на протяжении десятилетий. Превалентность сальмонелл при исследовании проб, отобранных с объектов окружающей среды и поверхностей оборудования комбикормовых заводов, составила 0,08. Риск выявления сальмонелл на предприятиях по производству кормов в зоне предтермической обработки был в 1,5 раза выше, чем риск обнаружения в зоне посттермической обработки. При анализе серовариантного состава сальмонелл установлено, что S. senftenberg, S. montevideo, S. typhimurium, S. anatum, S. havana, S. enteritidis, S. cerro выделяют повсеместно. Cеротип S. salford встречается только на территории Африканского континента. При изучении антибиотикорезистентности изолятов сальмонелл отмечена устойчивость к таким препаратам, как цефтриаксон, карбапенем и имипенем, а полногеномное секвенирование показало наличие по крайне мере одного гена антибиотикорезистентности у 40% изолятов сальмонелл, выделенных на заводах по производству комбикормов для свиней.

В связи с актуальностью проблемы маститов коров, разнообразием выделяемой при этом заболевании микрофлоры, а также для планирования лечебно-профилактических мероприятий в хозяйствах были проведены исследования по выявлению сходства и различия видового состава микроорганизмов при субклинической и клинической форме воспаления молочной железы, их количественного соотношения, установлению зависимости выделяемой микрофлоры от формы мастита, а также изучению и сравнению ферментативных свойств золотистого стафилококка, выделенного при клиническом и субклиническом мастите. Установлено, что во всех обследованных хозяйствах количество коров и нетелей, больных субклиническими маститами, превышало число животных с клиническими формами воспаления молочной железы. В результате проведения микробиологических исследований 182 проб секрета молочной железы, полученных от больных субклиническими и клиническими формами мастита коров из 13 сельскохозяйственных предприятий Вологодской, Ярославской и Костромской областей, изолировано 70 культур патогенной и условно-патогенной микрофлоры. Показано, что при субклиническом мастите из молока чаще всего выделяли культуры золотистого стафилококка (17,9% случаев), патогенные стрептококки (9,8% случаев), из них доля Streptococcus agalactiae и Streptococcus dysgalactiae составила 6,5 и 3,3% соответственно. В равных соотношениях изолированы культуры условно-патогенных стафилококков (6,5%) и энтеробактерий (6,5%). От коров с клиническим маститом культуры золотистого стафилококка были выделены в 16,9% случаев, патогенных стрептококков – в 10,2% случаев, из них доля Streptococcus agalactiae и Streptococcus dysgalactiae составила 6,8 и 3,4%. Условно-патогенные стафилококки и энтеробактерии обнаружены в равных количествах – по 3,4% случаев. Рост микоплазм на специальных питательных средах при указанных формах мастита не отмечен. Установлено, что при субклинических и клинических формах мастита выделяются идентичные патогенные и условно-патогенные микроорганизмы. Основным возбудителем является Staphylococcus aureus, индикация которого при скрытой форме мастита незначительно выше (на 1,0%). За ним следуют Streptococcus agalactiae и Streptococcus dysgalactiae, обнаружение которых превалирует при клинической форме воспаления молочной железы в среднем на 0,2%. Частота выделения условно-патогенных стафилококков в 1,9 раза выше при субклиническом мастите. Стоит отметить, что при клиническом воспалении молочной железы энтеробактерии обнаруживали только в одном из тринадцати обследованных сельскохозяйственных предприятий.

Контаминация бактериями и грибами спермы, полученной в производственных условиях, во многом зависит от санитарных условий при ее получении, а также от бактерионосительства быков-производителей. Так как наличие антибактериальных препаратов, входящих в состав разбавителя при криоконсервации спермопродукции, не позволяет объективно оценить степень ее обсеменения, для установления источника контаминации было проведено микробиологическое исследование свежеполученной неразбавленной спермы быков на племенном предприятии АО «Красноярскагроплем». Для эффективного лечения бактерионосителей определяли чувствительность выделенных культур условно-патогенных микроорганизмов к антибиотикам. Эксперимент выполнен в 2017 и 2018 гг. на базе кафедры эпизоотологии, микробиологии, паразитологии и ветеринарно-санитарной экспертизы института прикладной биотехнологии и ветеринарной медицины ФГБОУ ВО Красноярский ГАУ и ветеринарной лаборатории АО «Красноярскагроплем». Сперму отбирали в соответствии с ГОСТ 32222-2013, ветеринарно-санитарный контроль материала проводили по ГОСТ 32198-2013. Чувствительность к антибиотикам выделенных культур микроорганизмов определяли диско-диффузионным методом согласно методическим указаниям МУК 4.2.1890-04 «Определение чувствительности микроорганизмов к антибактериальным препаратам» с использованием дисков, содержащих восемь препаратов. Анализ результатов микробиологических исследований показал, что выбраковка спермы по санитарным показателям на племенном предприятии происходила за счет выделения условно-патогенных микроорганизмов: в 2017 г. – синегнойной палочки (6,4% проб) и протея (8,5% проб); в 2018 г. – синегнойной палочки (2,4% образцов). Остальные показатели (общее микробное число и коли-титр) находились в пределах допустимой нормы. Анаэробы и патогенные грибы обнаружены не были. Четыре выделенных в 2017–2018 гг. изолята Pseudomonas aeruginosa и три изолята Proteus vulgaris проявили чувствительность к ципрофлоксацину, который можно использовать для этиотропной терапии быков в случае установления у них бактерионосительства.

Проведено описательное ретроспективное эпизоотологическое исследование в Амурской области (Дальний Восток России), где в 2018 г. выявлена вспышка бешенства, целью которого было проанализировать возможные пути заноса и особенности пространственно-временного распространения бешенства на территорию, которая оставалась свободной от этой инфекции с 1972 до 2018 г. В 2018–2021 гг. на бешенство были исследованы пробы головного мозга, полу­ченные от 1416 животных. Подтверждено 47 случаев бешенства, доля диких животных (Vulpes vulpes, Nyctereutes procyonoides, Canis lupus) составила 66%. Первые случаи выявлены на расстоянии до 30 км от государственной границы с Китаем. Определены нуклеотидные последовательности гена нуклеопроте­ина 3 изолятов вируса бешенства и установлена их принадлежность к генетической линии Arctic-like-2. Генетически наиболее близкие к ним изоляты вируса бешенства были выявлены в провинции Хэйлунцзян (Китай, 2011 и 2018 гг.) и Еврейской автономной области (Россия, 1980 г.). Для картографирования случаев бешенства использовали геоинформационные системы и открытые данные дистанционного зондирования Земли. После 2018 г. эпизоотия распро­странялась в пределах лесостепных ландшафтов Зейско-Буреинской равнины, где заболевания людей и животных регистрировалось в прошлом (до 1972 г.). Фронт эпизоотии распространялся в северо-восточном направлении со средней скоростью 59 (16–302) км за один эпизоотический год (цикл). Занос вируса бешенства наиболее вероятен по долине реки Амур из неблагополучных по бешенству районов России и Китая, расположенных ниже по течению.

Представлены результаты изучения эпизоотологических особенностей эхинококкоза собак, овец и коз в условиях Прикаспийского региона России, где распростра­ненность указанной инвазии колеблется от 30 до 80%, а также испытания эффективности различных доз комплексного препарата Празибарс при данном пара­зитозе. В Прикаспийской низменности экстенсивность инвазии овец и коз эхинококком равна 38,6%, она проявляется экспансивно с охватом все новых и новых территорий. Некоторые исследователи указывают на то, что зараженность овец Echinococcus granulosus на территории Прикаспийского региона России ежегодно повышается на 0,2–0,3% и в среднем достигает 32,8%. Показано, что интенсивность и экстенсивность инвазии возбудителем эхинококкоза Echinococcus granulosus у чабанских собак в природных зонах вертикальной поясности региона в среднем составляет 3136,7 ± 343,0 экз/особь и 30,1% соответственно. В обследованных зонах у взрослых овец пастбищного содержания эхинококк выявляют в течение всего года с интенсивностью и экстенсивностью инвазии в среднем 22,3 ± 2,1 экз/особь и 23,0% соответственно. Установлено, что эхинококкоз регистрируется у взрослых овец и коз во всех обследованных районах Прикаспийского региона. При полном гельминтологическом вскрытии у овец и коз всех возрастных групп, кроме животных до года, в 1 мл эхинококковой жидкости обнаружены фертильные ларвоцисты, количество которых в среднем составило 23,02 ± 1,28 экз/особь. Показано, что в Прикаспийском регионе России, в том числе и Дагестане, эхинококкоз плотоядных и сельскохозяйственных животных широко распространен во всех зонах вертикальной поясности, что предполагает необходимость постоянного эпи­зоотологического контроля и мониторинга ситуации в отношении цестод семейства Taeniidae, в частности Echinococcus granulosus. Учитывая, что эхинококкоз собак и других плотоядных представляет масштабную социальную проблему и является опасным для человека гельминтозом, изыскание современных средств борьбы с этим паразитозом плотоядных является актуальной задачей. Проведенными исследованиями установлена высокая эффективность комплексного препарата Пра­зибарс при индивидуальном однократном применении в смеси c фаршем в дозе 15,0 мг/кг живого веса при спонтанном эхинококкозе собак и других плотоядных.

Немаловажным фактором, влияющим на продуктивность крупного рогатого скота, является удовлетворение потребности животных в питательных веществах, макро- и микроэлементах. Особенно чувствительны к погрешностям кормления высокопродуктивные коровы, характеризующиеся высоким обменом веществ. У таких животных даже при незначительном дефиците питательных и минеральных веществ возникают метаболические нарушения, на фоне которых развиваются иммунодефицитные состояния и снижается устойчивость к инфекционным агентам, увеличивается восприимчивость к инфицированию патогенной и условно-патогенной микробиотой. Кроме того, при некоторых инфекциях, например при острых респираторных забо­леваниях, также возникают метаболические нарушения, иммуносупрессия, снижается общая резистентность организма, в результате чего развиваются микст-инфекции. Все это является причиной низкой эффективности вакцинации крупного рогатого скота против основных инфекционных заболеваний. В статье представлены результаты испытания иммунометаболического растительно-тканевого препарата «Видорал», разработанного в ФГБОУ ВО Ураль­ский ГАУ с целью профилактики иммунодефицитных состояний крупного рогатого скота различного генеза. Препарат применяли подкожно в дозе 0,025 мл/кг живой массы глубокостельным коровам и телятам, у которых выявили незначительную анемию, эритроцитопению, лейкоцитоз, лимфоцитоз и моноцитоз, повышенный уровень скорости оседания эритроцитов, что является свидетельством наличия воспалительных процессов в организме животных. Через 14 дней производили отбор крови для проведения гематологических и биохимических исследований. Показано, что препарат нор­мализует обменные процессы в организме животных, увеличивает гемопоэз, снижает воспаление. Установлено, что введение «Видорала» в сочетании с иммунизацией против инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи, респираторно-синцитиальной инфекции и парагриппа типа 3 стимулирует у коров и телят выработку специфических антител к возбудителям указанных инфекций.

Микоплазмы – бактерии, лишенные ригидной клеточной стенки, поэтому крайне неустойчивы in vitro. Чаще всего их выявляют в ассоциации с другими возбудителями, среди которых есть те, что способны образовывать L-форму под действием антибиотических препаратов. Микоплазменные колонии, так же как и колонии L-форм, имеют вид «яичницы-глазуньи», поэтому для точного диагноза и выбора направления лечения необходимо провести их дифференциацию. В статье приведены данные о диагностике микоплазменной инфекции у крупного рогатого скота и результаты дифференциации выделенных колоний микоплазм и колоний L-форм бактерий методом многократных пассажей и с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Для выполнения поставленных задач были отобраны 177 образцов от животных, имеющих клинические признаки микоплазмоза, из них 45 исследованы молекулярно-генетическим методом, 132 – бактериологическим. При этом ДНК микоплазмы была выявлена в 71,1% проб, специфичные колонии – в 3,8% образцов. Такие тесты биохимической идентификации микоплазм, как гидролиз аргинина, разжижение сыворотки крови, образование пленки и пятен, посев на среду с Твином-80, гемадсорбция и гемолиз эритроцитов, не дают объективную оценку видовой принад­лежности микоплазм, но, согласно полученным результатам, изолированный вид с наибольшей вероятностью относится к Mycoplasma dispar, являющейся патогенной для крупного рогатого скота. Несомненно, полимеразная цепная реакция в режиме реального времени – наиболее точный и быстрый метод диагностики микоплазмоза, но предварительный диагноз можно установить и бактериологически в течение 2–7 сут. Кроме того, при проведении микробиологических тестов возможно провести оценку антибиотикорезистентности изолированных микоплазм, тем самым разработать оптимальную и качественную схему лечения и профилактики заболевания.

Сенекавирус – новый вирус, принадлежащий к роду Senecavirus семейства Picornaviridae, ранее называвшийся вирусом долины Сенека, который может вызывать идиопатическую везикулярную болезнь, клинически неотличимую от ящура, везикулярного стоматита и везикулярной болезни свиней, тем самым представляя большую угрозу для свиноводческих хозяйств. В последние годы в зарубежной литературе приводятся сведения о присутствии сенекавируса А в стадах свиней таких стран, как Бразилия, США, Колумбия, Китай и Таиланд. Для обеспечения контроля сенекавирусной инфекции ре­шающее значение имеет точная диагностика. В настоящей работе представлены результаты изучения ситуации по данному заболеванию в Российской Федерации с использованием методов генодиагностики. В исследовании были использованы праймеры и зонд для полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в реальном времени, описанные V. L. Fowler et al. в 2017 г., однако условия проведения реакции были оптимизированы. Анализ специфичности метода показал отсутствие перекрестной реактивности с другими тестируемыми вирусами. С помощью разработанного метода обнаружения вирусной РНК было изучено распространение сенекавируса в свиноводческих хозяйствах на территории Российской Федерации. В период с 2018 по 2020 г. было исследовано 1577 образцов биологического материала от свиней разных возрастных групп из 112 хозяйств 37 регионов страны. Сенекавирус был обнаружен в одном из хозяйств Уральского федерального округа. Есть предположение, что на данный свинокомплекс инфекционный агент попал при введении хозяйства в эксплуатацию в 2015 г. и комплектовании племенным молодняком, ввезенным из Канады. Это первое сообщение об обнаружении сенекавируса на территории Российской Федерации. Поскольку существует угроза заноса возбудителя из других стран, возникает необ­ходимость изучения и контроля сенекавирусной инфекции. Разработанный метод может быть использован в качестве потенциального, чувствительного метода для диагностики данного инфекционного заболевания.

Для успешного искоренения африканской чумы свиней, построения эффективных программ надзора и контроля за болезнью, поиска перспективных геномных маркеров для создания профилактических препаратов, реализации стратегии по дифференциации инфицированных и вакцинированных жи­вотных, а также кластеризации изолятов необходимо продолжать изучение эпизоотической ситуации и молекулярно-биологических свойств современ­ных изолятов вируса африканской чумы свиней, выделенных на приграничных территориях Российской Федерации. Ретроспективный анализ некоторых эпизоотологических данных в отношении эпизоотии африканской чумы свиней и сравнительный генетический анализ изолятов, циркулирующих на тер­ритории Дальневосточного федерального округа, позволили предположить пути заноса и распространения возбудителя, а также определить сезонность регистрации инфекции в Приморском крае. Отмечена циркуляция двух субгенотипов вируса африканской чумы свиней (IGR-I и IGR-II), определенных по интергенному региону I73R/I329L, на территории изучаемого края в течение первых месяцев неблагополучия по заболеванию. Исследования по из­учению биологических свойств изолята вируса африканской чумы свиней ASFV/Primorsky 19/WB-6723, выделенного из трубчатой кости от павшего дикого кабана на территории Приморского края, позволили охарактеризовать его как высоковирулентный, способный вызывать от сверхострой до подострой формы течения инфекции с гибелью до 100% зараженных животных. Инкубационный период и длительность течения болезни у экспериментально ин­фицированных свиней составили от 4 до 6 и от 3 до 5 дней после заражения соответственно. Геном вируса африканской чумы свиней при использовании метода полимеразной цепной реакции в реальном времени детектировали в пробах крови, полученной от зараженных животных на 5–8-й день после инфицирования. Специфические антитела в образцах сыворотки крови обнаружены не были. Подтверждена необходимость проведения дальнейше­го изучения молекулярно-биологических свойств современных изолятов вируса африканской чумы свиней. Во избежание продолжения эпизоотии и ухудшения сложившейся ситуации требуется корректировка применяемых подходов к осуществлению эпизоотического надзора и контроля болезни.

В настоящее время такое высококонтагиозное заболевание, как вирусный гепатит утят, регистрируют во всех странах, где занимаются разведением уток. Данная инфекция включена в перечень нотифицируемых болезней Всемирной организации здравоохранения животных, при ее возникновении устанавливаются ограничительные мероприятия и проводится регионализация территории страны. В системе противоэпизоотических мероприятий ведущее место занимает своевременная вакцинация уток родительского стада с целью получения иммунного потомства. В условиях активного раз­вития промышленного утководства и увеличения количества частных подворий растет необходимость в качественных и эффективных средствах про­филактики данной инфекционной болезни. На территории Российской Федерации на сегодняшний день зарегистрирована одна отечественная вакцина производства ФГБУ «ВНИИЗЖ», которая выпускается в нативном виде и предназначена для парентерального применения. С целью увеличения срока годности препарата, а также для удобства его хранения и транспортировки ведутся работы по разработке вакцины против вирусного гепатита утят живой лиофилизированной. В статье представлены результаты изучения патогенеза вирусного гепатита утят и оценки эффективности и безвредности разрабатываемой вакцины. Проведенные после экспериментального заражения патоморфологические исследования свидетельствуют о том, что вирус гепатита утят оказывает патогенное действие не только на органы пищеварительной системы птиц, в частности на печень, но и вызывает дегенеративные изменения в центральных и периферических органах иммунной системы: в клоакальной бурсе, тимусе и железе третьего века, что может проявляться дефицитом В- и Т-клеточного звена иммунного ответа и требует дополнительного изучения. Показано, что при иммунизации утят в 3-суточном возрасте экспериментальный препарат индуцирует гуморальный иммунный ответ, введение десятикратной дозы не оказывает вредного воздействия на организм птиц и говорит о его безопасности, вакцина обеспечивает защиту от заражения контрольным вирулентным штаммом вируса гепатита. 

Антиген вируса низкопатогенного гриппа птиц подтипа H5N1 штамма «Ямал» в составе инактивированной эмульгированной вакцины способен индуциро­вать выработку напряженного иммунитета у кур против высокопатогенного гриппа птиц. Инактивированные эмульсионные вакцины на основе антигена вируса низкопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N1 штамма «Ямал» и антигена вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N1 штамма А/chicken/Primorsky/85/08 способны вызывать дозозависимый перекрестный иммунитет в отношении актуальных вирусов высокопатогенного гриппа птиц под­типов Н5N1 и H5N8. Так, для защиты 95% вакцинированной птицы прививная доза антигена вируса низкопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N1 штамма «Ямал» против вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N1 штамма А/chicken/Primorsky/85/08 в прививном объеме вакцины должна составлять не менее 609 ГАЕ и против вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N8 штамма A/duck/KChR/1590-20/20 – 255 ГАЕ. Аналогичный показатель, установленный для антигена вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N1 штамма А/chicken/Primorsky/85/08 против вируса высокопатогенного гриппа птиц подтипа Н5N8 штамма A/duck/KChR/1590-20/20, должен составлять не менее 294 ГАЕ. Протективный эффект испытанных инактивированных вакцин связан с напряженностью гуморального иммунитета птицы. Прогнозируемый титр антител к гомологичным антигенам, при котором ожидаемая защита вакцинированной птицы достигнет 95%, составил величину 1:538, или 9,1 log2. Инактивированная вакцина против гриппа птиц Н5 на основе антигена вируса низкопатогенного гриппа птиц подтипа H5N1 штамма «Ямал» обладает высокой иммуногенной активностью и защищает птиц при заражении вирусом высокопатогенного гриппа птиц подтипов Н5N1 и Н5N8.

Онкологические заболевания – одна из ведущих причин смертности домашних непродуктивных животных, а также людей во всем мире. Противо­показания и побочные эффекты традиционных методов лечения рака актуализируют исследования, направленные на поиск новых способов борьбы с такого рода заболеваниями. Одним из перспективных методов лечения онкологии является применение компонентов бактериальных токсинов, в том числе токсинов возбудителя сибирской язвы – Bacillus anthracis. Летальный фактор – главный фактор вирулентности возбудителя сибирской язвы, пред­ставляющий из себя цинк-зависимую металлопротеазу, субстратом которой являются внутриклеточные сигнальные пути MAPK, широко представленные в раковых клетках. Данный обзор сосредоточен на обсуждении опыта зарубежных исследователей по применению летального фактора Bacillus anthracis в терапии онкологических заболеваний. В работе представлены данные исследований, характеризующие структуру и функции летального фактора, отражающие результаты его воздействия на онкологические клетки как в составе токсина возбудителя сибирской язвы, так и в виде отдельной едини­цы, раскрывающие его терапевтический потенциал. Анализ литературных источников продемонстрировал перспективность возможного применения летального фактора на таких видах онкологических заболеваний, как рак печени, легких, толстой кишки, груди, поджелудочной железы, яичников, простаты, желудка и нервной системы. Однако, несмотря на впечатляющие результаты, необходимы дальнейшие глубокие исследования в этом на­правлении, касающиеся подбора оптимальных дозировок летального фактора, определения чувствительности к нему различных видов рака, изучения его воздействия на другие ткани организма и взаимодействия с иммунной системой в процессе терапии.