Введение. Эпизоотическая геморрагическая болезнь – это трансмиссивное инфекционное неконтагиозное заболевание диких и домашних жвачных животных, проявляющееся застойными и геморрагическими явлениями. Возбудитель – вирус из рода Orbivirus семейства Sedoreoviridae, который передается между восприимчивыми животными через укусы членистоногих переносчиков рода Culicoides. За последние 20 лет возбудитель эпизоотической геморрагической болезни распространился в новые регионы, с 2022 г. на территории Южной Европы стали регистрировать массовые вспышки заболевания среди крупного рогатого скота, что создало серьезную угрозу для отрасли животноводства.

Цель исследования. Обобщение и анализ современных опубликованных данных о глобальной ситуации по эпизоотической геморрагической болезни.

Материалы и методы. Применялись аналитические методы исследований с использованием баз данных PubMed, Wiley Online Library, MDPI, Google Scholar, еLibrary, КиберЛенинка.

Результаты. Приведена краткая характеристика возбудителя заболевания. К настоящему времени в мире идентифицировано семь серотипов вируса эпизоотической геморрагической болезни, а недавно сообщалось о новом серотипе 10. Наблюдается глобальное географическое распространение вируса эпизоотической геморрагической болезни на всех континентах с региональными особенностями распределения серотипов. Серотипы 1, 2, 6, 7, 8, 10 обладают повышенной патогенностью и вызывают вспышки эпизоотической геморрагической болезни среди оленей и крупного рогатого скота. В обзоре кратко обсуждаются факторы, способствующие распространению вируса эпизоотической геморрагической болезни на новые территории, описаны клинические признаки заболевания у восприимчивых животных, определены основные меры профилактики и контроля для снижения риска возникновения вспышек болезни и обозначены пробелы в исследованиях.

Заключение. Способность вируса эпизоотической геморрагической болезни к рекомбинации, появление высоковирулентных штаммов, прогрессирующее расширение ареала активности переносчиков могут привести к крупным вспышкам со значительными экономическими потерями в животноводческом секторе, включая страны Европы и Азии. В современных условиях необходимо усилить энтомологический и вирусологический надзор для раннего выявления вируса эпизоотической геморрагической болезни среди жвачных животных и контроля за его распространением.

Введение. Врожденный иммунитет контролируется сложной сетью активирующих и регуляторных механизмов. Одним из важнейших факторов этой регуляции является реакция острой фазы в печени. В ответ на инфекцию или повреждение тканей в течение нескольких часов в печени резко меняется характер синтеза белка: повышается экспрессия так называемых положительных и отрицательных белков острой фазы. Наиболее широкое применение идентификация специфических белков получила в диагностике и оценке повреждений тканей организма человека, в том числе при воспалительных процессах, благодаря тому, что их концентрация быстро растет и значительно меняется при различных патологических процессах. Однако особенностью большинства белков острой фазы является неспецифичность по отношению к первопричине воспаления. Данный фактор обуславливает редкое использование в ветеринарии белков острой фазы в качестве основного диагностического теста для выявления конкретного заболевания.

Цель исследования. Обобщение данных по наиболее широко применяемым белкам острой фазы в клинической практике, а также изучение результатов имеющихся исследований в ветеринарии по исследованию белков острой фазы в диагностике воспалительных заболеваний, в том числе в молочной железе коров.

Материалы и методы. Систематизацию и обобщение в литературный обзор проводили с использованием элементов заявления PRISMA. В качестве инструмента для оценки методологического качества систематических обзоров и метаанализов использовали методику AMSTAR. Поиск и отбор оригинальных публикаций проводили на электронных ресурсах Scopus, Web of Science, PubMed, MedLine, ScienceDirect, eLibrary.

Результаты. В статье рассмотрены наиболее изученные белки острой фазы воспаления, описаны их основные эффекты. Установлено, что на данный момент изучено около 40 различных белков плазмы, которые относятся к белкам острой фазы. В ветеринарии при диагностике различных заболеваний, сопровождающихся воспалительным процессом, наиболее важными белками острой фазы являются С-реактивный белок, сывороточный амилоид A, гаптоглобин, альфа-1-кислый гликопротеин и липополисахарид-связывающий белок. Приведены данные по исследованию белков острой фазы у коров при воспалении в молочной железе.

Заключение. С помощью проведенного метаанализа выявлены наиболее значимые белки острой фазы, которые могут служить диагностическими маркерами мастита у коров, к ним относятся: сывороточный амилоид A, гаптоглобин, альфа-1-кислый гликопротеин и липополисахарид-связывающий белок.

Питиоз – это хроническое гранулематозное заболевание, поражающее различные виды животных, чаще всего лошадей. Распространено в тропическом, субтропическом и умеренном климате, тесно связано с влажной почвой и со стоячей водой – болотами и прудами. Возбудитель обитает на водных растениях, образуя подвижные зооспоры, которые проникают в организм хозяина через поврежденную кожу. В основе патогенеза лежит преимущественно Th2-тип иммунного ответа, для которого характерны продукция интерлейкинов IL-4, IL-5 и IL-13, а также выраженная эозинофилия и гранулематозное воспаление, способствующее длительной персистенции возбудителя в тканях хозяина. Клинически болезнь проявляется формированием эозинофильных гранулем, содержащих некротические массы, состоящие из гиф, коллагена и воспалительных клеток. Для терапии применяются различные подходы, включающие использование противогрибковых препаратов, хирургическое вмешательство и иммунотерапию. Хирургическое иссечение в сочетании с иммунотерапией считается наиболее эффективной стратегией, однако лечение сопряжено с трудностями из-за уникальных характеристик возбудителя: в отличие от истинных грибов, его клеточная стенка содержит целлюлозу и β-глюканы. Целью данного исследования является анализ биологических и инфекционных аспектов Pythium insidiosum, а также характеристика иммунопатогенеза питиоза у лошадей с акцентом на взаимодействие между этиологическим агентом и иммунным ответом хозяина.

Введение. Лептоспироз – инфекционная болезнь, опасная для человека и животных. Ключевым звеном в передаче инфекции человеку являются собаки. На территории Российской Федерации для собак актуальны серогруппы Canicola и Icterohaemorrhagiae как наиболее вирулентные, но возможно заражение и другими серогруппами Leptospira spp. Тяжесть болезни определяется факторами патогенности лептоспир. Из-за зоонозного характера лептоспироза вакцинация собак – элемент санитарно-эпидемиологического благополучия. Регулярная иммунизация снижает риск заражения людей и предотвращает вспышки. При выборе вакцин учитывают ограниченность перекрестной защиты между серогруппами, предпочитая поливалентные препараты. Однако существующие вакцины не обеспечивают надежной защиты из-за неактуального состава серогрупп. Персистенция возбудителя в организме животных и его выделение в среду снижают эффективность профилактики. Необходим комплексный подход к предотвращению заражения собак и передачи патогена человеку.

Цель исследования. Актуализировать и систематизировать данные по лептоспирозу собак, вызываемому Leptospira interrogans.

Материалы и методы. Материалом для аналитического исследования служили научные публикации зарубежных и отечественных авторов, размещенные в библиографических базах данных еLibrary, КиберЛенинка, PubMed, Science Direct, Google Scholar и др.

Результаты. В аналитическом обзоре приведены актуальные данные об эпизоотической и эпидемиологической ситуации по лептоспирозу в Российской Федерации, рассмотрены свойства возбудителя, представлена классификация лептоспир, описаны клинические и патолого-анатомические признаки болезни. Охарактеризованы применяемые в ветеринарной практике современные методы лабораторной диагностики, лечения и профилак тики лептоспироза собак, обозначены актуальные проблемы.

Заключение. Лептоспироз широко распространен среди собак. Лептоспиры способны адаптироваться и персистировать в организме-хозяине, вызывая хроническое течение болезни, что угрожает здоровью людей и животных. Сложность патогенеза, многообразие серотипов и внутриклеточная персистенция затрудняют элиминацию возбудителя. Современные методы диагностики и лечения требуют совершенствования. Необходимы исследования для разработки эффективных схем профилактики и терапии, включая новые подходы к специфической профилактике у собак. Таким образом, лептоспироз остается актуальной проблемой ветеринарной медицины, требующей комплексного подхода.

Введение. Новосибирская область относится к числу энзоотичных по бешенству субъектов Российской Федерации Сибирского федерального округа, лидируя по числу регистрируемых случаев среди других субъектов округа. В то же время изученность генетических особенностей полевых изолятов вируса бешенства низкая.

Цель исследования. Оценить связи эпизоотий бешенства на энзоотичной территории Новосибирской области с соседними регионами на основе анализа генетического разнообразия вариантов вируса бешенства и их пространственного распределения.

Материалы и методы. Секвенирование двух перекрывающихся фрагментов генома, содержащих полноразмерный ген нуклеопротеина N вируса бешенства, с последующей очисткой и нуклеотидным секвенированием по Сэнгеру осуществляли согласно ранее опубликованному протоколу. При выполнении филогенетического анализа использовали байесовский подход с применением пакета программ Bayesian Evolutionary Analysis Sampling Trees (BEAST X).

Результаты. Количество зарегистрированных заболеваний животных бешенством после 2012 г. заметно снизилось и не превышало 60 случаев в год. Все изученные изоляты относятся к генетической группе С. Изоляты классифицируются на два генетических кластера – C2c (35 изолятов) и C2b (18 изолятов). Один из изолятов вируса бешенства выделен в культуре клеток нейробластомы мыши. Представители всех кластеров группы С, выявленных в Новосибирской области, раньше обнаруживались также в Казахстане. Наиболее устойчивые связи прослеживаются с Восточно-Казахстанской (кластеры С2с, С1b) и Северо-Казахстанской (кластеры C2c, C2b) областями. Результаты филогенетического анализа согласуются с ранними описаниями «лисьего» бешенства и с результатами эпизоотологического мониторинга на сопредельных территориях Западной Сибири и Казахстана в современный период.

Заключение. В настоящее время на территории Новосибирской области персистируют варианты вируса бешенства кластеров C2b и C2c, имеющих независимое друг от друга происхождение.

Введение. Бешенство в России, несмотря на снизившуюся в последние десять лет инцидентность, остается крайне актуальным заболеванием. Полимеразная цепная реакция (ПЦР) в разных вариантах является одним из методов обнаружения и характеристики вируса бешенства в патологическом материале. Для обеспечения надежной диагностики при разработке ПЦР должны быть учтены актуальные данные по генетическим особенностям изолятов, циркулирующих на определенной территории.

Цель исследования. Выполнение теоретического дизайна и оптимизация тест-системы на основе совмещенной обратной транскрипции – полимеразной цепной реакции (С-ОТ-ПЦР) для выявления фрагмента генома вируса бешенства с использованием эндогенного внутреннего контроля.

Материалы и методы. В работе использованы вакцинный штамм вируса бешенства «РВ-97» и лабораторный фиксированный штамм вируса бешен ства «CVS», образцы головного мозга животных разных видов, положительные и отрицательные на вирус бешенства. Дизайн олигонуклеотидов и проверку специфичности in silico осуществляли с помощью онлайн-сервиса Primer Blast. Для проведения С-ОТ-ПЦР использованы реактивы НПК «Синтол» (Россия).

Результаты. В результате анализа 193 последовательностей гена N изолятов вируса бешенства, циркулирующих на территории России и сопредельных государств, был разработан дизайн шести праймеров и двух TaqMan-зондов. Экспериментальным путем из них были выявлены лучшие два праймера и зонд для создания тест-системы. В ходе серии экспериментов были оптимизированы такие параметры С-ОТ-ПЦР, как концентрация олигонуклеотидов, концентрация ионов магния и температура отжига. Для проведения контроля условий реакции в каждой пробирке была разработана система олигонуклеотидов для амплификации и детекции участка гена бета-актина млекопитающих. Экспериментально продемонстрирована возможность одновременного применения двух систем ПЦР в одной пробирке. Анализ 193 последовательностей гена N различных изолятов вируса бешенства показал, что разработанные олигонуклеотиды теоретически могут обеспечивать выявление подавляющего большинства вирусов, циркулирующих на территории Российской Федерации и сопредельных государств.

Заключение. Разработаны и оптимизированы основные компоненты и условия реакции тест-системы для выявления генома вируса бешенства методом С-ОТ-ПЦР с использованием эндогенного внутреннего контроля на основе гена бета-актина млекопитающих.

Введение. Дирофиляриоз собак – широко распространенный трансмиссивный гельминтоз, при котором иммунный ответ на паразита и его эндосимбионта Wolbachia играет ключевую роль в патогенезе, однако механизмы формирования аутоиммунных осложнений изучены недостаточно.

Цель исследования. Изучить цитокиновый профиль, баланс Th1/Th2-ответа и их взаимосвязь с эозинофилией, гиперпродукцией IgE и образованием циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) у собак с разной тяжестью дирофиляриоза.

Материалы и методы. В исследование включено 113 собак: 26 клинически здоровых (контроль) и 87 больных дирофиляриозом, разделенных на четыре группы по степени тяжести (I–IV). Концентрации ФНО-α, ИЛ-1α, ИЛ-4, ИЛ-6, ИЛ-8, ИНФ-γ и общего IgE определяли методом иммуноферментного анализа. Подсчет эозинофилов проводили в рамках клинического анализа крови. Статистическую обработку выполняли с использованием критериев Краскела – Уоллиса и Манна – Уитни.

Результаты. У больных собак выявлен выраженный цитокиновый шторм: уровень ИЛ-4 в группе IV превышал контроль в 4,7 раза (p < 0,001), ИЛ-6 – в 4,3 раза, ИЛ-8 – в 7,5 раза, ФНО-α – в 3,3 раза. Соотношение ИЛ-4/ИНФ-γ возрастало с 3,01 в контроле до 3,17–3,58 в группах III–IV, указывая на доминиро вание Th2-ответа. Относительное содержание эозинофилов повышалось в группах I–II [до (5,54–6,04)%, p < 0,01] и снижалось в группе IV [до (2,44 ± 0,54)%, p < 0,05]. Уровень общего IgE прогрессивно нарастал от (15,20 ± 1,80) Ед/мл в контроле до (92,50 ± 10,60) Ед/мл в группе IV. Общие ЦИК в группе IV достигали (57,31 ± 2,05) Ед/мл [контроль: (28,60 ± 0,87) Ед/мл, p < 0,001]. Корреляционный анализ показал положительную связь ИЛ-4 с IgE (r = 0,78, p < 0,01) и общими ЦИК (r = 0,71, p < 0,01).

Заключение. Доминирование Th2-ответа в сочетании с цитокиновым штормом инициирует каскад реакций, включающий гиперпродукцию IgE и эозинофилию, и способствует массивному образованию иммунных комплексов, что создает патогенетическую основу для развития аутоиммунной патологии при дирофиляриозе собак.

Введение. Актуальность данной работы обусловлена ростом антибиотикорезистентности у патогенных клостридий в агропромышленном комплексе Уральского федерального округа, что приводит к снижению эффективности терапии, увеличению экономических потерь от инфекционных заболеваний и создает угрозу межвидового переноса генов резистентности, подчеркивая необходимость разработки современных инструментов для молекулярного мониторинга в рамках реализации национальных стратегий по сдерживанию устойчивости к противомикробным препаратам.

Цель исследования. Разработка и апробация ПЦР-тест-систем для детекции генов антибиотикорезистентности (tetM/B, ermB/Q, bcrA/B/D/R) у Clostridium perfringens и Clostridium difficile.

Материалы и методы. Исследовали 472 пробы биологического материала (фекалии и раневое отделяемое от животных, корма, объекты окружающей среды), отобранные в 2023–2024 гг. на 32 молочно-товарных предприятях региона. Видовую принадлежность выделенных изолятов подтверждали методом MALDI-ToF-масс-спектрометрии, а фенотипическую устойчивость к антибиотикам определяли диско-диффузионным методом в соответствии со стандартами EUCAST. С помощью ПЦР был сформирован банк ДНК, выделенной из поступивших проб биологического материала и изолятов клостридий, коллекционных штаммов различных видов спорообразующих анаэробов.

Результаты. В результате была создана и валидирована эффективная ПЦР-панель для детекции генов антимикробной резистентности у клостридий. Скрининг 123 проб, содержащих ДНК целевых патогенов, позволил выявить распространение генов антимикробной резистентности: доминирующим у Clostridium difficile являлся ген ermB (95,1%), у Clostridium perfringens – гены ermB (90,0%) и ermQ (67,1%). Ген tetМ обнаруживали в 52,4 и 60,0% проб соответственно, гены bcrA/B/D/R – у 27,1–39,8% изолятов. Фенотипические исследования показали формирование у клостридий множественной лекарственной устойчивости.

Заключение. Разработанная тест-система стала надежным инструментом для молекулярного мониторинга антимикробной резистентности, полученные данные свидетельствуют о массовой циркуляции клостридий с генетическим потенциалом резистентности к клинически значимым антибиотикам.

Введение. Болезни копытного рога крупного рогатого скота с язвенными поражениями мягких тканей, в том числе пальцевой дерматит, – распространенная группа заболеваний во всем мире. Предрасполагающими факторами к их возникновению являются механические травмы, позволяющие микроорганизмам проникать в мягкие ткани и вызывать гнойно-язвенные поражения, осложненные некрозом. Эти патологии имеют полимикробную причину, но среди возбудителей можно выделить несколько патогенетических групп: инициирующие болезни; осложняющие их течение; вторичные. Основной причиной развития инфекционных заболеваний являются анаэробные микроорганизмы Fusobacterium spp. и Clostridium spp.

Цель исследования. Установление этиологической причины возникновения язвенных болезней копыт крупного рогатого скота.

Материалы и методы. При проведении исследований применяли микробиологические методы. Животные с язвенными поражениями копытного рога были разделены на две группы: с лечением и без лечения (свежевыявленные случаи болезней).

Результаты. Установлено, что контаминантами при язвенных поражениях копыт у крупного рогатого скота являются: Fusobacterium spp., Clostridium spp., Klebsiella pneumoniae, Enterococcus faecalis. Возбудители рода Fusobacterium spp. играют основную роль в развитии заболеваний. Представителей рода Clostridium spp. изолируют из глубоких поражений, обеспечивающих им анаэробные условия развития.

Заключение. Основными контаминантами при язвенных поражениях копыт у крупного рогатого скота являются микроорганизмы рода Fusobacterium spp. (100%-я встречаемость), Clostridium spp. (80%), Klebsiella pneumoniae (90%).

Введение. В современной микробиологии сбор и поддержание коллекций микроорганизмов в рабочем состоянии являются наиболее важными направлениями практической деятельности микробиологической лаборатории.

Цель исследования. Осуществление процесса реактивации нежизнеспособных культур микобактерий, выделенных из биоматериала животных и образцов внешней среды, на жидких и плотных питательных средах с ростовой добавкой с последующим бактериологическим, молекулярно биологическим и молекулярно-генетическим типированием восстановленных патогенов.

Материалы и методы. Процесс реактивации включал в себя посев культур на жидкую среду Middlebrook 7H9 и плотную среду Левенштейна – Йенсена с использованием ростовой добавки OADC. Последующую идентификацию микобактерий проводили методом времяпролетной масс-спектрометрии и методом гибридизации на микрочипе с помощью тест-системы «МИКО-Биочип» (Россия).

Результаты. Для эксперимента in vitro отобрано 75 образцов культур микобактерий, полученных при обработке биоматериала животных и объектов внешней среды и находящихся в некультивируемом состоянии. Реактивировано 46 (61,3%) культур, среди которых идентифицированы Mycobacterium tuberculosis (4,3%) и нетуберкулезные микобактерии следующих видов: медленнорастущие патогенные Mycobacterium avium (65,2%) и Mycobacterium intracellulare (2,2%); медленнорастущие непатогенные Mycobacterium nonchromogenicum (15,2%) и Mycobacterium monacense (2,2%); быстрорастущие патогенные Mycobacterium fortuitum (4,3%) и Mycobacterium abscessus (2,2%), быстрорастущие условно-патогенные Mycobacterium neoaurum (2,2%), а также Mycobacterium kyogaense (2,2%). Ведущая роль среди реактивированных культур принадлежала микобактериям III группы нетуберкулезных микобактерий согласно классификации Раньона: Mycobacterium avium, Mycobacterium nonchromogenicum, Mycobacterium intracellulare.

Заключение. Осуществлена реактивация 46 из 75 патогенов полевых изолятов микобактерий в условиях микробиологической лаборатории, позволяющих получить жизнеспособные популяции, что свидетельствует об эффективности использованного метода реактивации. Сохранены основные характеристики полученных культур и разнообразие видов микобактерий в коллекции. Результаты проведенных исследований можно использовать для оптимизации лабораторной микробиологической диагностики туберкулеза.

Введение. Летучие мыши, являясь природным резервуаром множества вирусов, традиционно воспринимаются как источник биологической опасности. Активное развитие центров реабилитации рукокрылых входит в противоречие с их репутацией высокопотенциальных резервуаров зоонозных инфекций: концентрация животных в условиях центра без должного контроля способна искусственно усиливать циркуляцию патогенов. Разрешить это противоречие можно путем включения в протоколы работы центров предварительного вирусологического скрининга поступающих особей. Выявление носителей и их своевременная изоляция (карантин) защитят как остальных животных, так и персонал, а накопленные данные позволят создать систему раннего предупреждения о появлении новых генетических вариантов вирусов.

Цель исследования. Апробация комбинированного подхода к получению полногеномных последовательностей РНК-содержащих вирусов рукокрылых в условиях низкой копийности и фрагментации РНК-матрицы, включающего последовательное применение и модификацию методов ампликонного секвенирования и случайного прайминга (SMART-9N).

Материалы и методы. В качестве материала исследования были взяты образцы фекалий летучих мышей, содержащихся в условиях реабилитацион ного центра в г. Ростове-на-Дону в 2022–2023 гг. В статье описана последовательность действий от выделения нуклеиновых кислот до обработки и анализа данных. Также представлены три способа обогащения РНК-матрицы на основе реакции обратной транскрипции и полимеразной цепной реакции.

Результаты. При проведении исследования была разработана праймерная панель для выявления альфа-коронавирусов летучих мышей. В результате метагеномного анализа установлено присутствие вирусной РНК Bat bastrovirus (семейство Astroviridae) и разработаны диагностические праймеры для подтверждения. Получена полная генетическая последовательность вируса Loanvirus brunaense (семейство Hantaviridae) и 95% нуклеотидной последовательности вируса Alphacoronavirus (семейство Coronaviridae).

Заключение. Данные о генетических последовательностях вирусов играют важную роль в различных аспектах науки, медицины, ветеринарии и здравоохранения в целом. Результаты данного исследования могут быть использованы для разработки экспресс-диагностических тест-систем по обнаружению различных вирусов летучих мышей.