Воспаление сердечных и скелетных мышц в настоящее время является одним из самых распространенных, экономически значимых заболеваний культивируемого атлантического лосося и представляет серьезную угрозу его аквакультуре. Впервые болезнь выявлена в 1999 г. в Норвегии. В 2006 г. норвежские ученые доказали ее вирусную этиологию. Воспаление сердечных и скелетных мышц является трансграничной, высококонтагиозной, новой, еще недостаточно изученной вирусной болезнью лососевых рыб, характеризующейся поражением эритроцитов, симптомокомплексом воспаления сердечных и скелетных мышц, нарушением кровообращения и желтухой. Экономический ущерб, наносимый этим заболеванием аквакультуре, чрез­вычайно велик. Общая кумулятивная смертность может достигать 30%, а уровень заболеваемости составлять 100%. Снижение качества товарной рыбной продукции из-за меланизированных участков в мышцах лососевых еще больше повышает экономические потери от этого заболевания. Наи­более чувствителен к воспалению сердечных и скелетных мышц выращиваемый в аквакультуре атлантический лосось. Восприимчивыми видами также являются радужная форель, чавыча и кумжа, и этот список продолжает пополняться. Возбудителем заболевания является вирус, относящийся к роду Orthoreovirus семейства Reoviridae. На сегодняшний день ортореовирус рыб имеет тенденцию к глобальному распространению. Заболевание, вызванное этим вирусом, регистрируют в Норвегии, Шотландии, Ирландии, Исландии, Франции, Германии, Италии, Дании, на Фарерских островах, в Чили, Канаде, на Атлантическом побережье США и на Аляске. Наибольшее количество очагов отмечают в Средней и Северной Норвегии, пограничной с Мурманской областью. Близость неблагополучных территорий к России, протекающий мимо норвежских берегов в сторону Мурманской области Гольфстрим, а также миграция диких лососевых через норвежские территориальные воды в Баренцево, Белое и Печорское моря в совокупности с высокой стабильностью вируса создают высокий уровень угрозы заноса ортореовируса рыб с территории сопредельных стран на территорию Российской Федерации.

В настоящее время основной ущерб мировой аквакультуре наносят вирусные болезни рыб. Возбудители болезней часто проникают из одних рыбоводных хозяйств в другие при перевозках инфицированных рыб из неблагополучных хозяйств в благополучные. Поэтому завоз рыбопосадочного материала в Россию из стран с различной эпизоотологической ситуацией требует мониторинга и прогнозирования на основе возможных рисков. Ведущее место в комплексе мероприятий по предотвращению распространения вирусных инфекций рыб занимает диагностика. На сегодняшний день лабораторная диагностика болезней рыб вирусной природы основана на выделении возбудителя и его идентификации серологическими методами, которые требуют больших затрат времени и выполняются только в крупных научно-исследовательских институтах, имеющих профильные лаборатории. Более чувстви­тельными и высокопроизводительными являются молекулярные методы диагностики. В статье представлены результаты применения полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией по выявлению ряда особо опасных вирусных болезней рыб семейства лососевых. В результате проделанной работы были подобраны праймеры и оптимизированы температурно-временные условия проведения реакции для идентификации инфекционного некроза гемопоэтической ткани, вирусной геморрагической септицемии и инфекционной анемии лососевых. Результаты, полученные в ходе иссле­дований, позволили установить, что данный диагностический метод является высокоспецифичным с аналитической чувствительностью для вируса инфекционной анемии лососевых – 2,5 lg ТЦД50/см3, инфекционного некроза гемопоэтической ткани – 2,9 lg ТЦД50/см3 и вирусной геморрагической септицемии – 4,2 lg ТЦД50/см3. С помощью описанного метода была проведена идентификация референтных и полевых штаммов, имеющихся в референтной лаборатории по болезням аквакультуры ФГБУ «ВНИИЗЖ» и выделенных в разные годы в рыбоводческих хозяйствах на территории Российской Федерации. Данные, полученные в ходе исследований, коррелировали с результатами вирусовыделения на культуре клеток и иммуноферментного анализа с использованием коммерческих наборов. Предложенная методика проведения полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией позволяет обнаружить возбудителей болезней у рыб как с явными клиническими признаками, так и со скрытым вирусоносительством.

В настоящее время в ветеринарной практике применяется препарат мирамистин (бензилдиметил[3-(миристоиламино)пропил] аммоний хлорид моно­гидрат), обладающий широким бактерицидным действием. Данный антисептик активен против большинства вирусов, микоплазм, бактерий, грибов и простейших. По параметрам токсикометрии мирамистин классифицируется как малоопасное вещество. Использование клеточных структур в каче­стве тест-систем для оценки токсичности фармакологических веществ вместо классических тестов на экспериментальных животных позволяет лучше прояснить возможный механизм действия исследуемого вещества. Поскольку многие виды микоплазм поражают органы мочеполовой системы, для оценки цитотоксичности мирамистина в качестве тест-систем можно использовать клетки почек разных млекопитающих, в частности новорожденного сирийского хомячка (ВНК-21), сибирского горного козерога (ПСГК-30) и другие. Показана возможность применения монослойных клеточных BHK-21 и ПСГК-30 в качестве тест-систем для оценки базовой цитотоксичности мирамистина. В процессе исследования токсичности препарата изучали влия­ние его различных концентраций на морфологию клеток, определяли количество жизнеспособных клеток и содержание общего белка как показателя прироста клеточной массы. Результаты цитоморфологического исследования свидетельствуют о том, что предельной допустимой концентрацией ми­рамистина для монослойных клеточных линий BHK-21 и ПСГК-30 является 25 мкг/см3. Применение данного антибактериального препарата в бóльших концентрациях вызывало появление и нарастание признаков эндогенной интоксикации и дегенерации. При оценке пролиферативной активности клеток под влиянием антибиотика мирамистина в разных концентрациях выявлено, что увеличение дозы препарата до 50, 75, 100, 125, 150 мкг/см3 приводит к снижению кратности прироста клеток по сравнению с контролем. Содержание в ростовой среде мирамистина в количестве до 25 мкг/см3 не влияло на интенсивность синтеза протеинов. Наличие в культуральной среде мирамистина в предельно допустимой концентрации вызывает незначительное снижение репродукции вируса ящура в культурах клеток ВНК-21 и ПСГК-30 на 4,5 и 4,0% соответственно по сравнению с контролем без антибиотика. Поскольку микоплазмы являются наиболее распространенными контаминантами клеточных культур, дальнейшие исследования будут направлены на изучение возможности применения мирамистина для деконтаминации монослойных клеточных линий ВНК-21 и ПСГК-30.

Несмотря на все прилагаемые усилия, проблема бешенства в мире не теряет своей актуальности. Являясь острой природно-очаговой инфекцией, представля­ет огромную опасность как для животных, так и для человека. Ведущая роль в процессе передачи вируса бешенства человеку принадлежит заболевшим со­бакам, безнадзорные животные могут быть потенциальными источниками возбудителя бешенства, что повышает риск передачи смертельно опасного вируса человеку. Профилактика бешенства среди собак во всем мире осуществляется путем учета численности этого вида животных, их обязательной регулярной иммунизации и оценки эффективности вакцинации по уровню накопления антирабических вируснейтрализующих антител. Для формирования защитного уровня гуморального иммунитета у собак против бешенства (≥ 0,5 МЕ/см3) применяют инактивированные вакцины, полученные на основе различных штаммов вируса с использованием широкого спектра адъювантов, что позволяет получать вакцины с высокими показателями безопасности и эффективности для целевых видов животных. В статье представлены результаты исследования гуморального иммунитета у 20 беспородных собак на 21 сут после введения антирабических инактивированных вакцин из культурального вируса бешенства штамма «ВНИИЗЖ» с применением различных адъювантов. Представлен­ные вакцины против бешенства, изготовленные с использованием масляного адъюванта Montanide ISA 70 VG и гелевого адъюванта Montanide GEL 01, были авирулентными, безвредными и индуцировали напряженный иммунитет у всех привитых животных. Вакцина на основе адъюванта Montanide ISA 70 VG при однократном введении в дозе 1,0 см3 способствует выработке вируснейтрализующих антирабических антител в 2,4 раза выше по сравнению с пре­паратом, полученным с использованием адъюванта Montanide GEL 01. Наиболее высокие титры антител против бешенства у собак составляли 48,1 ± 3,7 и 28,3 ± 1,5 МЕ/ см3 и были отмечены при использовании антирабической инактивированной эмульсионной вакцины в дозах 3,0 и 1,0 см3 соответственно.

Бешенство имеет первоочередное значение в ряду вирусных болезней человека и животных, являясь одним из самых опасных зоонозов, вызывая по­ражение центральной нервной системы с неизбежным летальным исходом. Заболевание представляет собой мировую проблему, которой уделяют особое внимание международные организации (ВОЗ, МЭБ, ФАО, GARC) и ветеринарные службы многих стран мира. Для специфической профилактики бешенства среди диких плотоядных животных применяют разнообразные антирабические вакцины, однако существуют сомнения в безопасности и эффективности некоторых из них. Ведутся разработки новых, более совершенных препаратов, одним из которых является антирабическая живая оральная вакцина «Ферарабивак». Проведены исследования по изучению ее иммуногенных и протективных свойств для диких плотоядных животных. Оптимальная имму­низирующая доза препарата составляет 2,0 см³ с титром инфекционной активности вируса бешенства штамма РВ-97 не менее 6,00 lg ККИД50/см³. Через 14 сут после оральной иммунизации данной вакциной антирабические антитела обнаружены в сыворотке крови лисиц и енотовидных собак в титрах 0,70 ± 0,18 и 0,73 ± 0,19 МЕ/см³ соответственно, что обеспечивало защиту от заражения вирусом бешенства (≥ 0,50 МЕ/см³). Спустя 50 сут уровень анти­рабических вируснейтрализующих антител у лисиц достигал максимальных значений и составлял 4,30 ± 0,32 МЕ/см³. Титр антител у вакцинированных енотовидных собак достигал максимальных значений также спустя 50 сут и был равен 4,53 ± 0,27 МЕ/см³. Минимальный пороговый уровень вирусней­трализующих антител определяли через 12 месяцев после иммунизации, он составлял у лисиц и енотовидных собак 0,62 ± 0,28 и 0,71 ± 0,17 МЕ/см³ соответственно, что доказывает необходимость проведения повторной вакцинации животных против бешенства через год. В результате контрольного заражения через 30 сут после вакцинации все животные, иммунизированные антирабической живой вакциной «Ферарабивак», в течение всего срока наблюдения не проявляли клинических признаков бешенства.  

Представлены основные характеристики африканской чумы свиней как наиболее важной трансграничной инфекции с катастрофическим разрушитель­ным потенциалом для свиноводства. Появившись в Грузии в 2007 г., АЧС распространилась среди домашних свиней и кабанов на территории европейской части Российской Федерации. Затем вирус АЧС был обнаружен в Беларуси, на Украине, а с 2014 г. заболевание стали регистрировать в странах Евросоюза. Распространившись на территории Европы, африканская чума свиней приняла характер широкой эпизоотии, вызванной вирусом АЧС II генотипа, с трен­дом на ухудшение ситуации. Описан современный ареал распространения АЧС в Российской Федерации, странах Европы, Китае и Азии. В настоящее время болезнь является самой серьезной проблемой эпизоотологии ввиду: чрезвычайно большого прямого ущерба (высокой летальности восприимчивых животных); способности к возникновению и эпизоотическому распространению в самых неожиданных регионах мира; отсутствия средств специфической профилактики и лечения. В России накоплен богатый опыт предотвращения возникновения, распространения и ликвидации этой болезни. Разработан и внедрен научно обоснованный комплекс мер по профилактике и ликвидации АЧС, доказавший свою эффективность в условиях борьбы с данным заболеванием свиней. В основу комплекса мер положены: обеспечение биобезопасности по всей производственной цепочке предприятий, связанных с разведением, содержанием, убоем, переработкой, хранением, перемещением и реализацией живых свиней и свиноводческой продукции, независимо от форм собственности; регуляция численности популяции кабана; совершенствование проблемных вопросов по обращению с биологическими отходами. Опыт борьбы с АЧС в Российской Федерации можно рекомендовать другим неблагополучным по данному заболеванию странам, но с адаптацией его к конкретному региону с учетом местного социально-экономического состояния.

Инфекционный бронхит кур является одной из наиболее распространенных вирусных инфекций, наносящих огромный экономический ущерб птицевод­ству во всем мире. По причине отсутствия механизмов коррекции во время репликации генома вирус может быстро мутировать и генерировать новые штаммы. Этому способствует широкое использование живых вакцин, одновременная циркуляция полевых вирусов, относящихся к разным серотипам в одном стаде, и быстрое распространение вируса. Проведенные ранее исследования выявленных на птицефабриках Российской Федерации штаммов и изолятов вируса инфекционного бронхита кур показали, что 50% положительных проб относятся к вакцинным штаммам 4-91, D274, Н-120, Ма5, вторая половина положительных проб представлена полевыми вирусами, которые относятся к 8 генетическим линиям генотипа GI, при этом доминирующей является линия G1-19 (QX). В данной работе представлены результаты по выявлению и генотипированию вируса инфекционного бронхита кур на одной из птицефабрик Саратовской области Российской Федерации в 2018–2019 гг. Внутренние органы, ротоглоточные и клоакальные смывы, кровь отбирали от цыплят и кур-несушек разных возрастов из родительского стада и стада ремонтного молодняка. Выявлены: вакцинный штамм, полевые изоляты генетической линии GI-19 и вариантные изоляты, не относящиеся ни к одной из известных генетических линий. Анализ результатов исследований за двухлетний период показал, что важно исследовать пробы, взятые от птиц разного возраста. Инфицируя несколько поколений птиц, вирус изменяется и приспосабливается, порождая новые генетические формы, благодаря чему наблюдается гетерогенность вирусной популяции не только на птицефа­брике в целом или в отдельном цехе, но и в одном организме. Выявленные изоляты обладали тропизмом к тканям кишечника, репродуктивных органов и, в единичных случаях, трахеи и легких. Полученные данные свидетельствуют о том, что на птицефабрике, несмотря на применяемую вакцинацию, циркулирует генетически разнородная популяция вируса инфекционного бронхита, при этом инфекция может не проявляться в раннем возрасте, но может повлиять на продуктивность стада в дальнейшем за счет патологических изменений органов репродукции кур-несушек.

На сегодняшний день в Российской Федерации сложилась целая система нормативно-правовых документов, регулирующих вопросы обеспечения про­довольственной безопасности. Мониторинг качества и безопасности пищевых продуктов осуществляется на федеральном уровне, уровне субъектов Российской Федерации, уровне муниципальных образований на основе разработанных и утвержденных в установленном порядке нормативных и ме­тодических документов. В статье представлен анализ данных информационной системы «Ассоль» по микробной контаминации сырья и продукции животного происхождения, полученных при выполнении государственных работ «Проведение лабораторных исследований в рамках плана государ­ственного мониторинга качества и безопасности пищевых продуктов» и «Проведение лабораторных исследований сырья, продукции животного про­исхождения, кормов и биологического материала в целях обеспечения качества и безопасности пищевых продуктов». Данные по микробиологическим показателям были получены в 37 подведомственных Россельхознадзору лабораториях Российской Федерации за период с 2015 по 2018 г. На основании выполненного анализа установлено, что максимальное количество исследований приходилось на обнаружение патогенных микроорганизмов: бактерий рода Salmonella (29,5% при проведении государственного мониторинга и 26,8% при выполнении государственного задания) и Listeria monocytogenes (22 и 21% соответственно). Наибольшее количество несоответствий при проведении мониторинга установлено по показателям КМАФАнМ (количество мезофильных анаэробных и факультативно анаэробных микроорганизмов – 14,8%) и БГКП (бактерии группы кишечной палочки – 8,98%); при вы­полнении государственного задания – по показателям дрожжи (18,8%), дрожжи и плесневые грибы (18,5%) и КМАФАнМ (12,4%). Определены показа­тели, процент выявления которых при выполнении государственных работ составил менее 1. Это парагемолитический вибрион, бактерии рода Proteus и сульфитредуцирующие клостридии. Обоснована необходимость дальнейших исследований по оценке безопасности и качества сырья и продукции животного происхождения на территории Российской Федерации.

Представлены результаты 10-летнего ежегодного микотоксикологического обследования полнорационных комбикормов для свиней и сельскохозяй­ственной птицы, предоставленных хозяйствами и перерабатывающими предприятиями Северо-Западного, Центрального, Южного, Приволжского и Уральского федеральных округов. Методом конкурентного иммуноферментного анализа показано, что Т-2 токсин, дезоксиниваленол, зеараленон, фумонизины группы В, альтернариол, охратоксин А, цитринин, микофеноловая кислота, эргоалкалоиды и эмодин встречаются с частотой более 5%, их количества варьируют в пределах одного-трех порядков, и количества Т-2 токсина, дезоксиниваленола, зеараленона, фумонизинов и охратоксина А могут превышать регламенты допустимого содержания в зерне, предназначенном на кормовые цели. Диацетоксисцирпенол, афлатоксин В1, стеригматоцистин и циклопиазоновая кислота относятся к группе редких контаминантов. Установлено, что высокая загрязненность комбикормов Т-2 токсином и эмодином сохраняет по годам устойчивый характер, в отдельные годы возрастает встречаемость дезоксиниваленола, фумонизинов, а также охратоксина А, ци­тринина, микофеноловой кислоты и эргоалкалоидов. В 2016–2018 гг. отмечено обострение ситуации по загрязненности комбикормов альтернариолом при положительной тенденции снижения контаминации фумонизинами и сохранения стабильно низкой встречаемости зеараленона. Факт обширной распространенности эмодина, известного как «диарейный фактор», а также спорадического, в отдельные периоды наблюдений, возрастания контами­нации комбикормов альтернариолом, цитринином и микофеноловой кислотой – микотоксинами с особо опасными формами токсического действия и негативными отдаленными последствиями – выявлен впервые. Эта информация подтверждает необходимость их введения в группу нормируемых санитарно-значимых показателей. Обсуждаются общие черты контаминации комбикормов для свиней и птицы, а также целесообразность региональных обследований для прогнозирования рисков развития интоксикаций. Особое внимание уделяется актуальности выполнения проектов, направленных на формирование единых информационных ресурсов, которые могут стать уникальной научной базой для инноваций в сфере профилактики кормо­вых отравлений. Исходные данные мониторинга, систематизированные и обобщенные в данной работе, представлены в электронном виде в разделе «Дополнительные материалы».

Важной задачей при проведении комплекса противоэпизоотических мероприятий, направленных на борьбу с заразными болезнями животных, является лабораторная диагностика. Необходимость в постоянном доверии к качеству работы лаборатории важна не только для исполнителей и заказчиков, но и инспектирующих организаций, органов по аккредитации и др., которые устанавливают требования к деятельности диагностических лабораторий. Недосто­верные результаты лабораторных исследований могут привести к постановке неправильного диагноза, а значит, и к серьезным последствиям. Одной из форм экспериментальной проверки деятельности лаборатории с целью определения ее компетентности и подтверждения соответствия критериям аккредитации при инспекционном контроле за ее деятельностью являются межлабораторные сличительные (сравнительные) испытания. Обобщая и анализируя результаты участия в межлабораторных сличительных испытаниях, лаборатория может не только подтвердить свою компетентность в конкретный момент, но и наглядно продемонстрировать, насколько стабильно качество результатов ее анализов. Представлен анализ результатов межлабораторных сличительных испытаний, организованных в 2018–2019 гг. ФГБУ «ВНИИЗЖ» для ветеринарных лабораторий России, по программам выявления возбудителей или антител к возбуди­телям гриппа птиц, ньюкаслской болезни, бешенства, классической чумы свиней, африканской чумы свиней, блютанга, заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота. Результаты показали, что большинство лабораторий успешно справились с испытаниями. Неудовлетворительный результат был получен участниками по отдельным программам межлабораторных сличительных испытаний (выявление вируса бешенства методом флуоресцирующих антител; выявление вирусов гриппа птиц, классической чумы свиней и заразного узелкового дерматита крупного рогатого скота методом полимеразной цепной реакции). Это указывает на необходимость повышения качества лабораторных исследований не справившихся с заданием участников.