Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

К совершенствованию дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота в условиях Республики Дагестан

https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-2-164-170

Аннотация

Введение. При диагностике туберкулеза неспецифические реакции на туберкулин являются одной из наиболее важных проблем, увеличивающихся с каждым годом. Учитывая сложную ситуацию, в том числе и эпидемиологическую, совершенствование методов диагностики туберкулеза крупного рогатого скота является весьма актуальным.

Цель исследования. Разработка эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота и внедрение усовершенствованной схемы выявления инфекции в хозяйствах с различным эпизоотическим состоянием в условиях Республики Дагестан.

Материалы и методы. Аллергическим исследованиям подвергли 1670 гол. крупного рогатого скота, серологическим – 3502 образца сывороток крови, иммунологическим – 112 проб, бактериологическим – 57 проб патматериала, отобранного от животных, и 76 проб – из объектов внешней среды. В исследовании использовали штаммы культур Mycobacterium bovis, Mycobacterium bovis БЦЖ, Mycobacterium avium, Mycobacterium scrofulaceum.

Результаты. Установлено широкое распространение неспецифических реакций во всех категориях хозяйств республики. Определена диагностическая ценность внутрикожной и внутривенной проб в неблагополучных по туберкулезу стадах, где число дополнительно выявляемых больных составило 9,4%. Реакция связывания комплемента имеет низкую чувствительность и высокую специфичность. Результаты реакции непрямой гемагглютинации в большинстве случаев не подтверждаются классическими методами, что определяет ее низкую специфичность. Из 57 проб биоматериала было изолировано и идентифицировано 39 культур микобактерий: 8 (20,5%) – M. bovis; 31 (79,5%) – нетуберкулезные кислотоустойчивые виды, из которых 29 (93,5%) относятся к II группе по классификации Раньона, 2 (6,5%) – к III группе. Из 76 проб объектов внешней среды изолированы 43 культуры, из которых 2 (4,6%) отнесены к Mycobacterium bovis, 23 (53,5%) – ко II группе и 18 (41,9%) – к III группе по классификации Раньона. Наилучшими ростовыми и ингибирующими постороннюю микрофлору свойствами обладает яичная среда Левенштейна – Йенсена.

Заключение. Полученные данные являются базисной основой для разработки эффективного комплексного метода дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота.

Об авторе

М. О. Баратов
Прикаспийский зональный научно-исследовательский ветеринарный институт – филиал ФГБНУ «Федеральный аграрный научный центр Республики Дагестан» (Прикаспийский зональный НИВИ – филиал ФГБНУ «ФАНЦ РД»)
Россия

Баратов Магомед Омарович, д-р вет. наук, главный научный сотрудник, заведующий лабораторией инфекционной патологии сельскохозяйственных животных

ул. Дахадаева, 88, г. Махачкала, 367000.



Список литературы

1. Баратов М. О., Сакидибиров О. П., Ахмедов М. М. Эпизоотические особенности туберкулеза крупного рогатого скота. Экологические проблемы сельского хозяйства и научно-­практические пути их решения: сборник научных трудов Международной научно­практической конференции (Махачкала, 5–6 июня 2017 г.). Махачкала: Дагестанский ГАУ; 2017; 102–108. https://elibrary.ru/zgksmn

2. Баратов М. О. К совершенствованию диагностики туберкулеза крупного рогатого скота. Ветеринария сегодня. 2020; (4): 261–265. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-4-35-261-265

3. Баратов М. О., Сакидибиров О. П. Туберкулез крупного рогатого скота в Республике Дагестан: проблемы и перспективы. Ветеринария. 2021; (1): 24–28. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2021.24.1.24-28

4. Нуратинов Р. А., Газимагомедов М. Г. Туберкулез. Махачкала: Планета-Дагестан; 2009. 336 с.

5. Гулюкин М. И., Найманов А. Х., Овдиенко Н. П., Ведерников В. А., Верховский О. А., Толстенко Н. Г. и др. Методические наставления по проведению исследований при микобактериозах животных. М.: ГНУ ВНИИЭВ им. Я. Р. Коваленко; 2012. 85 с.

6. Донченко А. С., Овдиенко Н. П., Донченко Н. А. Диагностика туберкулеза крупного рогатого скота: монография. Новосибирск: Сибирское отделение РАСХН; 2004. 308 с.

7. Найманов А. Х., Овдиенко Н. П., Помыканов Н. П. Диагностика туберкулеза крупного рогатого скота в индивидуальных хозяйствах. Актуальные проблемы инфекционной патологии и иммунологии животных: материалы конференции (Москва, 16–17 мая 2006 г.). М.: ИзографЪ; 2006; 297–302. https://elibrary.ru/vyftgj

8. Камалиева Ю. Р. Ретроспективный анализ частоты проявления неспецифических реакций на туберкулин у крупного рогатого скота в Республике Татарстан. Молодежные разработки и инновации в решении приоритетных задач АПК: материалы Международной научной конференции. Т. 1. Казань: Казанская ГАВМ; 2020; 278–280. https://elibrary.ru/vwhcco

9. Баратов М. О., Гусейнова П. С. К поиску причин сенсибилизации крупного рогатого скота к ППД-туберкулину для млекопитающих. Ветеринария сегодня. 2021; 10 (4): 271–276. https://doi.org/10.29326/2304196X-2021-10-4-271-276

10. Дорожко В. П. Специфическая стимуляция при серологической диагностике туберкулеза крупного рогатого скота: автореф. дис. … кан. вет. наук. Киев; 1971. 20 с.

11. Муковнин А. А., Найманов А. Х., Гулюкин А. М. Туберкулез крупного рогатого скота в России. Ветеринария. 2020; (7): 19–24. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2020.23.7.19-24

12. Мингалеев Д. Н. Новые средства и методы профилактики туберкулеза молодняка крупного рогатого скота: автореф. дис. … д-ра вет. наук. Казань; 2018. 42 с.

13. Ионина С. В., Донченко Н. А., Донченко А. С. Взаимосвязь циркуляции атипичных микобактерий туберкулеза во внешней среде с проявлением туберкулиновых реакций у сельскохозяйственных животных. Инновации и продовольственная безопасность. 2016; (1): 41–44. https://doi.org/10.31677/2311-0651-2016-0-1-41-44

14. Бокова Т. В. Частота неспецифического реагирования на ППД туберкулин крупного рогатого скота, инфицированного BLV, и разработка схем оздоровления племенных стад от лейкоза в Алтайском крае: автореф. дис. … канд. вет. наук. Барнаул; 2001. 27 с.

15. Azuma I., Ajisaka M., Yamamura Y. Polysaccharides of Mycobacterium bovis Ushi 10, Mycobacterium smegmatis, Mycobacterium phlei, and atypical Mycobacterium P1. Infection and Immunity. 1970; 2 (3): 347–349. https://doi.org/10.1128/iai.2.3.347-349.1970

16. Harriff M. J., Cansler M. E., Toren K. G., Canfield E. T., Kwak S., Gold M. C., Lewinsohn D. M. Human lung epithelial cells contain Mycobacterium tuberculosis in a late endosomal vacuole and are efficiently recognized by CD8+ T cells. PLoS ONE. 2014; 9 (5):e97515. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0097515

17. Monin L., Griffiths K. L., Slight S., Lin Y., Rangel-Moreno J., Khader S. A. Immune requirements for protective Th17 recall responses to Mycobacterium tuberculosis challenge. Mucosal Immunology. 2015; 8 (5): 1099–1109. https://doi.org/10.1038/mi.2014.136

18. Власенко В. С. Оптимизация методов контроля и коррекции иммунного статуса при туберкулезе и лейкозе крупного рогатого скота: автореф. дис. … д-ра биол. наук. Казань; 2011. 43 с.

19. Протодьяконова Г. П. Эпизоотологические и эпидемиологические особенности туберкулеза в Якутии, усовершенствование методов диагностики и специфической профилактики: автореф. дис. … д-ра вет. наук. Новосибирск; 2015. 35 с.

20. Carneiro P. A. M., de Moura Sousa E., Viana R. B., Monteiro B. M., Do Socorro Lima Kzam A., de Souza D. C., et al. Study on supplemental test to improve the detection of bovine tuberculosis in individual animals and herds. BMC Veterinary Research. 2021; 17:137. https://doi.org/10.1186/s12917-021-02839-4

21. Khairullah A. R., Moses I. B., Kusala M. K. J., Tyasningsih W., Ayuti S. R., Rantam F. A., et al. Unveiling insights into bovine tuberculosis: a comprehensive review. Open Veterinary Journal. 2024; 14 (6): 1330–1344. https://doi.org/10.5455/OVJ.2024.v14.i6.2

22. Петров Р. В., Хаитов Р. М. Основы иммунитета и иммунная биотехнология. Вестник Российской академии медицинских наук. 2000; (11): 18–21.

23. Tizard I. R. Veterinary Immunology: an Introduction. 6th ed. Philadelphia: Saunders; 2000. 482 p.

24. Ramos D. F., Silva P. E., Dellagostin O. A. Diagnosis of bovine tuberculosis: review of main techniques. Brazilian Journal of Biology. 2015; 75 (4): 830–837. https://doi.org/10.1590/1519-6984.23613

25. Barksdale L., Kim K. S. Mycobacterium. Bacteriological Reviews. 1977; 41 (1): 217–372. https://doi.org/10.1128/br.41.1.217-372.1977

26. Радченков В. П., Соколовская И. И. Розеткообразующие лимфоциты крупного рогатого скота и рациональные методы их выявления. Сельскохозяйственная биология. 1983; (12): 87–91.

27. Джупина С. И. Фундаментальные знания эпизоотического процесса – основа контроля туберкулеза крупного рогатого скота. Ветеринарная патология. 2004; (1–2): 45–47. https://elibrary.ru/hsowdp


Рецензия

Для цитирования:


Баратов М.О. К совершенствованию дифференциальной диагностики туберкулеза крупного рогатого скота в условиях Республики Дагестан. Ветеринария сегодня. 2025;14(2):164-170. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-2-164-170

For citation:


Baratov M.O. Towards improved differential diagnostics of bovine tuberculosis in the Republic of Dagestan. Veterinary Science Today. 2025;14(2):164-170. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2025-14-2-164-170

Просмотров: 20


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)