Микробная этиология язвенных болезней копытного рога крупного рогатого скота

Введение. Болезни копытного рога крупного рогатого скота с язвенными поражениями мягких тканей, в том числе пальцевой дерматит, – распространенная группа заболеваний во всем мире. Предрасполагающими факторами к их возникновению являются механические травмы, позволяющие микроорганизмам проникать в мягкие ткани и вызывать гнойно-язвенные поражения, осложненные некрозом. Эти патологии имеют полимикробную причину, но среди возбудителей можно выделить несколько патогенетических групп: инициирующие болезни; осложняющие их течение; вторичные. Основной причиной развития инфекционных заболеваний являются анаэробные микроорганизмы Fusobacterium spp. и Clostridium spp.

Цель исследования. Установление этиологической причины возникновения язвенных болезней копыт крупного рогатого скота.

Материалы и методы. При проведении исследований применяли микробиологические методы. Животные с язвенными поражениями копытного рога были разделены на две группы: с лечением и без лечения (свежевыявленные случаи болезней).

Результаты. Установлено, что контаминантами при язвенных поражениях копыт у крупного рогатого скота являются: Fusobacterium spp., Clostridium spp., Klebsiella pneumoniae, Enterococcus faecalis. Возбудители рода Fusobacterium spp. играют основную роль в развитии заболеваний. Представителей рода Clostridium spp. изолируют из глубоких поражений, обеспечивающих им анаэробные условия развития.

Заключение. Основными контаминантами при язвенных поражениях копыт у крупного рогатого скота являются микроорганизмы рода Fusobacterium spp. (100%-я встречаемость), Clostridium spp. (80%), Klebsiella pneumoniae (90%).

1. Berry S. L., Read D. H., Famula T. R., Mongini A., Döpfer D. Long-term observations on the dynamics of bovine digital dermatitis lesions on a California dairy after topical treatment with lincomycin HCl. The Veterinary Journal. 2012; 193 (3): 654–658. https://doi.org/10.1016/j.tvjl.2012.06.048

2. Wong N. S. T., Malmuthge N., Gellatly D., Nordi W. M., Alexander T. W., Ortega Polo R., et al. Characterization of the hoof bacterial communities in feedlot cattle affected with digital dermatitis, foot rot or both using a surface swab technique. Animal Microbiome. 2024; 6 (1):2. https://doi.org/10.1186/s42523-023-00277-1

3. Ali S., Avais M., Durrani A. Z., Ashraf K., Bilal M., Nasir A., et al. In vitro and in vivo evaluation of some antimicrobials and disinfectants against bacterial pathogens from hoof lesions in dairy cattle. Iranian Journal of Veterinary Research. 2021; 22 (1): 9–14. https://doi.org/10.22099/ijvr.2020.37776.5493

4. Espiritu H. M., Kwon S. W., Lee S. S., Cho Y. I. Surveillance of hoof disorders in Korean dairy cattle and the correlation of farm condition risk factors to their prevalence. BMC Veterinary Research. 2025; 21:169. https://doi.org/10.1186/s12917-025-04628-9

5. Döpfer D., Koopmans A., Meijer F. A., Szakáll I., Schukken Y. H., Klee W., et al. Histological and bacteriological evaluation of digital dermatitis in cattle, with special reference to spirochaetes and Campylobacter faecalis. Veterinary Record. 1997; 140 (24): 620–623. https://doi.org/10.1136/vr.140.24.620

6. Pyakurel S., Caddey B. J., Dias A. P., De Buck J., Morck D. W., Orsel K. Profiling bacterial communities in feedlot cattle affected with bovine foot rot and bovine digital dermatitis lesions using 16S rRNA gene sequencing and quantitative real-time PCR. BMC Microbiology. 2025; 25:158. https://doi.org/10.1186/s12866-025-03869-w

7. Dias A. P., De Buck J. Detection and quantification of bacterial species DNA in bovine digital dermatitis lesions in swabs and fine-needle aspiration versus biopsies. Frontiers in Veterinary Science. 2022; 9:1040988. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1040988

8. Gillespie A. V., Carter S. D., Blowey R. W., Staton G. J, Evans N. J. Removal of bovine digital dermatitis-associated treponemes from hoof knives after foot-trimming: a disinfection field study. BMC Veterinary Research. 2020; 16:330. https://doi.org/10.1186/s12917-020-02552-8

9. Erickson S. E., Jelinski M. D., Booker C. W., Janzen E., Schwartzkopf Genswein K. A review of foot-related lameness in feedlot cattle. Canadian Journal of Animal Science. 2024; 104 (4): 420–435. https://doi.org/10.1139/cjas-2024-0047

10. Garvey M. Lameness in dairy cow herds: disease aetiology, prevention and management. Dairy. 2022; 3 (1): 199–210. https://doi.org/10.3390/dairy3010016

11. Alsaaod M., Weber J., Jensen T., Brandt S., Gurtner C., Devaux D., et al. “Non-healing” claw horn lesions in dairy cows: clinical, histopathological and molecular biological characterization of four cases. Frontiers in Veterinary Science. 2022; 9:1041215. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.1041215

12. Bay V., Griffiths B., Carter S., Evans N. J., Lenzi L., Bicalho R. C., Oikonomou G. 16S rRNA amplicon sequencing reveals a polymicrobial nature of complicated claw horn disruption lesions and interdigital phlegmon in dairy cattle. Scientific Reports. 2018; 8:15529. https://doi.org/10.1038/s41598-018-33993-9

13. Wilson-Welder J. H., Alt D. P., Nally J. E. Digital dermatitis in cattle: current bacterial and immunological findings. Animals. 2015; 5 (4): 1114 1135. https://doi.org/10.3390/ani5040400

14. Walker K. E., Middleton J. R., Gull T., Payne C. A., Adkins P. R. F. Bacterial culture and susceptibility of samples taken from septic foot lesions of adult beef cattle. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2023; 37 (2): 757–765. https://doi.org/10.1111/jvim.16645

15. Nazifi S., Esmailnezhad Z., Haghkhah M., Ghadirian S., Mirzaei A. Acute phase response in lame cattle with interdigital dermatitis. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 2012; 28 (4): 1791–1796. https://doi.org/10.1007/s11274-011-0995-9

16. Dias A. P., Orsel K., Gammariello C. S., De Buck J. Sequential emergence and quantitative dynamics of key bacterial species preceding digital dermatitis lesion onset in dairy cattle. Veterinary Microbiology. 2025; 302:110378. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2025.110378

17. Vidu L., Enea D. N., Mărginean G.-E., Grigoraș Mihai A., Vlăsceanu L.-F. Health Challenges for High-Producing Dairy Cows and Buffaloes. In: Bovine Medicine – Education and Practice. Ed. by K. R. Petrovski. IntechOpen; 2025. https://doi.org/10.5772/intechopen.1012536

18. Yoshida K., Matsumoto T., Tateda K., Uchida K., Tsujimoto S., Yamaguchi K. Role of bacterial capsule in local and systemic inflammatory responses of mice during pulmonary infection with Klebsiella pneumonia. Journal of Medical Microbiology. 2000; 49 (11): 1003–1010. https://doi.org/10.1099/0022-1317-49-11-1003

19. Urban-Chmiel R., Mudroň P., Abramowicz B., Kurek Ł., Stachura R. Lameness in cattle – etiopathogenesis, prevention and treatment. Animals. 2024; 14 (12):1836. https://doi.org/10.3390/ani14121836

20. Hori K., Taniguchi T., Elpita T., Khemgaew R., Sasaki S., Gotoh Y., et al. Comprehensive analyses of the bacterial population in non-healing claw lesions of dairy cattle. Animals. 2022; 12 (24):3584. https://doi.org/10.3390/ani12243584