Представлены эпизоотологические особенности распространения высокопатогенного гриппа птиц А/Н5N8 на территории Российской Федерации, описан опыт ликвидации очагов в популяции домашних птиц, проведен анализ основных причин заноса опасного вируса в промышленные хозяйства, освещены проблемные вопросы купирования вспышек. Показаны особенности течения и клинического проявления гриппа Н5N8 в сравнении с заболеванием, обусловленным подтипом Н5N1. Обобщены материалы эпизоотологических расследований случаев заноса вируса на закрытые предприятия. Особое внимание уделено уничтожению павших и вынужденно убитых птиц в ходе проведения противоэпизоотических мероприятий, показана возможность альтернативных путей уничтожения биологических отходов. Определены основные риски заноса на территорию Российской Федерации «эмерджентных» подтипов вируса гриппа. С учетом текущей эпизоотической ситуации, персистенцией вируса у носителей, сохранением его жизнеспособности в окружающей среде, сезонными миграциями диких птиц ожидается дальнейшее распространение гриппа птиц на территории России. Главная угроза новых заносов возбудителя исходит из сопредельных стран Восточной Азии и Дальнего Востока (Китай, Япония, Корея), при этом возможно проникновение вирусов с зоонозным потенциалом. Не исключен риск заноса вируса из стран Европы, Ближнего Востока и Центральной Азии. Радикальные меры остаются единственным инструментом борьбы с заболеванием на сегодняшний день, а стратегия ограниченной целевой вакцинации против гриппа птиц в личных подворьях минимизирует занос вируса на промышленные предприятия в зонах риска.

Представлен анализ литературы, посвященной проблеме распространения вируса гриппа птиц с инкубационным яйцом, и качественная оценка риска ввоза в Российскую Федерацию инкубационного яйца в условиях действия ветеринарно-санитарных мер по гриппу при импорте. Отмечена вероятность передачи низкопатогенных вирусов гриппа птиц через инкубационное яйцо птиц сельскохозяйственного назначения, сопряженная с вероятностью контаминации этими агентами поверхности яйца и тары. Высокая вероятность распространения вируса гриппа птиц с товарным яйцом отмечена у перепелов, индеек, гусей, кур. Доказательства истинной вертикальной передачи высокопатогенного гриппа птиц ограниченны, при этом признается, что инфекция проявляется в виде системного поражения органов (бурса, тимус, селезенка, сердце, поджелудочная железа, почки, головной мозг, трахея, легкие, надпочечники и скелетные мышцы). Отмечается, что сохранность вируса может быть более продолжительна на перьях, в мясе птицы, а также что благоприятными условиями для сохранения жизнеспособности вируса во внешней среде являются повышенная влажность, нейтральное значение рН и низкая температура. Меры по ограничению перемещения инкубационного яйца рассматриваются как наиболее адекватные для предотвращения распространения заболевания между хозяйствами. Подчеркивается, что отсутствие рисков возникновения на своей территории гриппа птиц в орнитофауне не может гарантировать ни одна из стран. Меры по гриппу птиц, рекомендованные Всемирной организацией здравоохранения животных, при импорте инкубационного яйца признаны адекватными для предотвращения международного распространения болезни вне зависимости от патогенности вируса.

Изучали гуморальный ответ и двигательную активность реснитчатого эпителия слизистой оболочки трахеи у птиц, привитых против инфекционного ларинготрахеита, с помощью цилиостатического теста. Вакцины, вне зависимости от способа применения, снижали двигательную активность слизистой оболочки трахеи птиц на 5–9% с 3-х по 7-е сут после прививки. При этом окулярное применение вакцин у незначительного количества цыплят вызывало развитие односторонних серозных конъюнктивитов с благоприятным исходом. Оральная вакцинация не вызывала каких- либо клинических изменений у птиц. При серологическом мониторинге был выявлен более ранний и напряженный иммунный ответ у птиц, привитых окулярным способом. Требуемый уровень серопротекции в опытных группах превысил минимальное значение (80%) начиная с 16-х сут после вакцинации. При оральном применении срок формирования иммунного ответа зависел от величины иммунизирующей дозы вакцинного препарата. При этом вакцина отечественного производства по безвредности и иммуногенному действию не уступала импортным аналогам.

Представлены результаты по живой массе, основным промерам молодняка крупного рогатого скота черно-пестрой породы, которые были получены в условиях молочного комплекса ООО «Приамурье» Тамбовского района Амурской области в 2017 г. Животных подбирали по методу пар-аналогов с учетом возраста, живой массы и физиологического состояния. Были сформированы 3 группы животных в возрасте 6 месяцев: 1 контрольная и 2 опытных, по 10 голов в каждой. Условия содержания молодняка всех групп были схожими. На основании полученных данных о количестве потребляемых и выделенных с фекалиями питательных веществ определены коэффициенты переваримости сырого протеина, сырого жира, безазотистых экстрактивных веществ и сырой клетчатки – питательных веществ рациона кормления, принятого в хозяйстве. Телятам контрольной группы скармливали основной рацион, принятый в хозяйстве, 1-й опытной с основным рационом скармливали нормируемые микроэлементы (йод, кобальт и селен) в минеральной форме, 2-й опытной – эти же микроэлементы в органической форме. Длительность опыта составила 180 дней. В конце опыта было установлено, что наиболее высокие показатели живой массы и среднесуточного прироста животных были во 2-й опытной группе. Аналогичная картина наблюдалась и по повышению коэффициентов переваримости питательных веществ. Также было доказано положительное влияние микроэлементов в органической форме на рост и развитие телят.

Представлены результаты лабораторных исследований проб патологического и биоматериала на наличие генома вируса заразного узелкового дерматита с помощью тест-системы «Заразный узелковый дерматит ПЦР-РВ» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»). Пробы от крупного рогатого скота были получены в 2016–2017 гг. из 16 регионов Российской Федерации. Исследовано 848 образцов проб стабилизированной крови, сыворотки крови, соскобов кожи (нодулы), носовых смывов. При прижизненной диагностике вирус заразного узелкового дерматита КРС был выявлен в носовых смывах (29,2%), сыворотке крови (19,5%) и стабилизированной крови (24,4%). При посмертной диагностике геном вируса заразного узелкового дерматита КРС выявляли в пробах пораженных кожных покровов в 77,7% случаев. В пробах трахеи, селезенки и от абортированных плодов геном вируса выявлен не был. Таким образом, при подозрении на заразный узелковый дерматит при прижизненной диагностике необходимо в первую очередь исследовать пробы крови и носовых смывов, а при посмертной диагностике – нодулы (бугры).

Представлены данные по изучению эффективности комплексного препарата тиононтрит-S при профилактике метаболических нарушений функции печени крупного рогатого скота. Назначение препарата коровам 6–7-го месяца сухостойного периода в течение двух недель в дозе 0,3 г/кг массы тела корректирует биохимический гомеостаз и профилактирует развитие патогенетических сдвигов, возникающих при метаболических нарушениях функции печени. Нивелирование симптоматики у коров происходит на 12–14-е сут, профилактическая эффективность составляет 90%. В контрольной группе симптомы заболевания отмечались у 55% коров. Назначение тиононтрита-S способствовало повышению протеинсинтетической функции печени. Так, повышение уровня общего белка в опытной группе составило 8,8% от фоновых показателей. Повышение уровня глюкозы относительно фона в опытной группе составило 26,6%, в контроле этот показатель снижался на 6,7%. Препарат восстанавливал функциональную и барьерную функции печени, нормализовал ферментообразующую функцию. Уровень аланинаминотрансферазы на конец опыта в опытной группе был меньше показателей контроля в 1,8 раза, уровень аспартатаминотрансферазы был ниже отрицательного контроля в 1,6 раза. Положительное влияние тиононтрита-S отмечалось и в отношении пигментного обмена: концентрация общего билирубина в опытной группе коров была в пределах физиологических границ (4,28 ± 0,55 мкмоль/л), тогда как в контрольной группе выявлялась гипербилирубинемия, в 1,6 раза превышающая верхненормальные значения. Улучшение биохимических показателей в опытной группе коррелировало со снижением уровня молекул средней массы и продуктов перекисного окисления ненасыщенных жирных кислот. Снижение уровня молекул средней массы у опытных коров на длине волны λ = 254 нм составило 8,3% и на длине волны λ = 280 нм – 10%. В опытной группе уровень диеновых конъюгатов понижался на 14,3% относительно фоновых показателей, кетодиенов – на 26,3%, малонового диальдегида – на 8,9% и флуоресцирующих оснований Шиффа – на 18,2%.

В настоящее время актуальным вопросом в профилактике и лечении вирусных инфекций является изучение действия на организм человека и животных индукторов синтеза интерферона – веществ природного или синтетического происхождения, стимулирующих продукцию собственного интерферона. Одним из синтетических индукторов интерферона является полудан. Он предназначен для стимуляции клеточного иммунитета, который способен предотвращать заражение и развитие заболевания, а также обладает противовирусным и иммуномодулирующим действием. В клетках и тканях организма полудан в основном стимулирует выработку α-интерферона и в меньшей степени –
β- и γ-интерферона, образование которых препятствует размножению вируса в клетке. Представлены результаты влияния полудана на репродукцию ряда вирусов свиней в первичных и перевиваемых культурах клеток путем индукции синтеза интерферона и других цитокинов, понижающих уровень инфицирования клеток. В результате проведенных исследований выявили взаимосвязь внесения индуктора интерферона и изменения уровня репродукции вирусов репродуктивно-респираторного синдрома свиней, трансмиссивного гастроэнтерита свиней и африканской чумы свиней. Также установлен высокий уровень интерфероногенной активности полудана в первичных культурах клеток тестикул и селезенки свиней по сравнению с перевиваемыми линиями клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ) и почки макаки-резуса (MARC-145). Интерфероногенная способность полудана была умеренной для клеток MARC-145 и не установлена для клеток СПЭВ.

Ретроспективный анализ лабораторной диагностики, проводимой в России по опасным вирусным болезням свиней, показал, что за последние семь лет (период реализации распоряжений Россельхознадзора по выполнению планов государственного мониторинга) отмечается увеличение объема осуществляемых исследований. Однако не всегда можно однозначно истолковать получаемые результаты тестирований, что требует усовершенствования диагностической практики с установлением правил проведения пробоотбора, лабораторных исследований, представления полученных результатов. Так, осуществляемые выборочные исследования должны быть представительны в отношении обследуемых субпопуляций, соотноситься с превалентностью надзираемой инфекции, отвечать требуемой достоверности. Также требуется установить методы первичного и подтверждающего тестирования, упорядочить использование тест-систем (обязательно валидированных) в пользу наиболее эффективных и недорогих. Соответствующим образом спланированные и реализуемые мероприятия надзора (в том числе государственный мониторинг) позволят минимизировать финансовые затраты и одновременно повысить их эффективность.

Представлены результаты адаптации изолятов вируса ящура типа О, полученных из Агентства по карантину животных и растений Республики Корея, к культурам клеток и организму свиней, изучения их инфекционной и антигенной активности, стабильности при пассировании в перевиваемой культуре клеток ПСГК-30. Проведено изучение антигенного соответствия полевых изолятов вируса ящура типа О 2014–2015 гг., полученных из Агентства по карантину животных и растений Республики Корея, российским и зарубеж-ным производственным штаммам вируса ящура типа О. Особое внимание уделено подбору дозы заражения для культивирования вируса в клеточной линии ПСГК-30 с целью последующего получения антигенных препаратов и противоящурных вакцин. Результа-ты изучения штаммов послужили основанием для депонирования их в коллекцию штаммов микроорганизмов ФГБУ «ВНИИЗЖ».

Исходным сырьем для приготовления гидролизата белков крови служит цельная кровь животных, ее сгустки и другие отходы сывороточного про-изводства. Отмечена зависимость продуктивности клеточной линии ВНК-21/2-17 от сезона заготовки сырья для гидролизата. Гидролизат белков крови из сырья, полученного в летние месяцы, стимулировал рост клеток в 1,2–1,3 раза больше по сравнению с гидролизатом, изготовленным в осенне-зимний период (различия существенны, р < 0,001). Количество иммуногенных компонентов вируса ящура из «летнего» гидролизата белков крови было больше в 1,3–1,6 раза по сравнению с полученным в другие сезоны года (различия существенны, р < 0,001). Найдена прямая зависимость между продуктивностью клеточной линии ВНК-21/2-17, концентрацией иммуногенных компонентов вируса ящура и сезонной дина-микой содержания следующих аминокислот, входящих в гидролизат белков крови: аланина, аспарагина, валина, гистидина, глицина, изолейцина, лейцина, лизина, метионина, пролина, серина, тирозина, треонина, триптофана, фенилаланина. Для увеличения продуктивности клеточной линии ВНК-21/2-17 и концентрации иммуногенных компонентов вируса ящура предложено в культуральную ростовую среду для выращивания суспен-зионной культуры клеток в осенне-зимний период наряду с гидролизатом белков крови дополнительно добавлять некоторые аминокислоты.

Представлены данные по оценке эффективности лецитинового препарата при экспериментальном токсическом поражении печени лабораторных животных. Эксперименты проведены на крысах, содержащихся в одинаковых условиях, прошедших карантинный режим вивария и не имеющих внешних признаков заболеваний. Группы животных формировались по принципу парных аналогов. Острое токсическое поражение печени моделировали однократным введением четыреххлористого углерода (0,3 мг/кг массы тела). Установлено, что на второй день после введения крысам четыреххлористого углеродазарегистрированы внешние признаки интокси-кации: отказ от корма, угнетение, одышка, повышение температуры тела. Применение per os рапсового лецитина за час до введения гепатотоксиканта и далее ежедневно в последующие 30 дней в дозе 1 мл/кг массы тела снижает клинические проявления интоксикации и повышает сохранность крыс. Фармакологический эффект лецитина проявляется улучшением биохимических параметров и функци-онального состояния печени лабораторных животных на фоне экспериментального острого гепатита. Полученные данные могут по-служить основанием для применения рапсовых лецитинов в качестве гепатопротекторов природного происхождения с возможностью их использования как биологически активных добавок или действующих начал лекарственных средств, предназначенных для лечения заболеваний печени у животных.