ВЛИЯНИЕ ПОЛУДАНА НА РЕПРОДУКЦИЮ ВИРУСОВ РЕПРОДУКТИВНО-РЕСПИРАТОРНОГО СИНДРОМА, ТРАНСМИССИВНОГО ГАСТРОЭНТЕРИТА И АФРИКАНСКОЙ ЧУМЫ СВИНЕЙ В ПЕРВИЧНЫХ И ПЕРЕВИВАЕМЫХ КУЛЬТУРАХ КЛЕТОК

В настоящее время актуальным вопросом в профилактике и лечении вирусных инфекций является изучение действия на организм человека и животных индукторов синтеза интерферона – веществ природного или синтетического происхождения, стимулирующих продукцию собственного интерферона. Одним из синтетических индукторов интерферона является полудан. Он предназначен для стимуляции клеточного иммунитета, который способен предотвращать заражение и развитие заболевания, а также обладает противовирусным и иммуномодулирующим действием. В клетках и тканях организма полудан в основном стимулирует выработку α-интерферона и в меньшей степени –
β- и γ-интерферона, образование которых препятствует размножению вируса в клетке. Представлены результаты влияния полудана на репродукцию ряда вирусов свиней в первичных и перевиваемых культурах клеток путем индукции синтеза интерферона и других цитокинов, понижающих уровень инфицирования клеток. В результате проведенных исследований выявили взаимосвязь внесения индуктора интерферона и изменения уровня репродукции вирусов репродуктивно-респираторного синдрома свиней, трансмиссивного гастроэнтерита свиней и африканской чумы свиней. Также установлен высокий уровень интерфероногенной активности полудана в первичных культурах клеток тестикул и селезенки свиней по сравнению с перевиваемыми линиями клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ) и почки макаки-резуса (MARC-145). Интерфероногенная способность полудана была умеренной для клеток MARC-145 и не установлена для клеток СПЭВ.

1. Андронати С. А., Литвинова Л. А., Головенко Н. Я. Пероральный индуктор эндогенного интерферона «Амиксин» и его аналоги // Журн. АМН Украины. – 1999. – Т. 5, № 1. – С. 53–66.

2. Изучение репродукции вируса африканской чумы свиней на первичной культуре клеток костного мозга свиней до и после криоконсервирования / И. Ю. Жуков, И. В. Шевченко, Н. Н. Власова [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2016. – № 1. – С. 7–15.

3. Исследование молекулярно-генетических особенностей изменчивости вируса АЧС, циркулирующего на территории РФ / Н. Н. Власова, А. А. Елсукова, А. А. Варенцова [и др.] // Актуальные проблемы в промышленном свиноводстве: 6-й Междунар. вет. конгр., Сочи, 12–15 апр. – Сочи, 2016. – С. 11.

4. Кузнецов В. П. Интерфероны в каскаде цитокинов: исторический и современный аспекты // Антибиотики и химиотерапия. – 1998. – Т. 43, № 5. – С. 28–40.

5. Медведева М. В., Беляк А. С. Воздействие препарата полудан на иммунологические и биохимические показатели крови животных с экспериментальным конъюнктивитом в магнитном поле повышенной напряженности // Человек и его здоровье. – 2015. – № 4. – С. 104–107. – URL: http://www.kurskvestnik.ru/jour/article/view/82/83 (дата обращения: 24.04.17).

6. Митягина О. Н., Павлюк А. С. Влияние иммуномодулятора «полудана» на клеточную регенерацию и состояние апоптоза в эксперименте // Тезисы 1-го российского симпозиума по рефракционной хирургии. – М., 1999. – С. 66.

7. Никитин Е. В., Чабан Т. В., Лапай В. С. Использование индуктора интерферона амиксин в комплексной терапии острых и хронических вирусных гепатитов. – Одесса, 2000. – 16 с.

8. Полудан. – URL: http://www.rlsnet.ru/tn_index_id_6054. htm (дата обращения: 24.04.17).

9. Результаты и перспективы использования индукторов интерферона в лечении инфекционных болезней / Ф. И. Ершов [и др.] // Вестник РАМН. – 2013. – Т. 68, № 10. – С. 46–52.

10. Романцов М. Г., Ершов Ф. И., Коваленко А. Л. Противовирусные препараты для лечения ОРВИ и гриппа у детей (клинический обзор) // Фундамент. исследования. – 2010. – № 9. – С. 76–87.

11. Хаитов Р. М., Пинегин Б. В. Современные иммуномодуляторы. Классификация. Механизм действия. – М.: Фармарус принт, 2005. – 27 с.

12. Charley B., Lavenant L. Characterization of blood mononuclear cells producing IFN alpha following induction by coronavirus-infected cells (porcine transmissible gastroenteritis virus) // Res. Immunol. – 1990. – Vol. 141, No. 2. – P. 141–151.

13. Costa E. Viral modulation of interferon (IFN) responses to African swine fever virus (ASFV): Dissertação. – Departamento de Biologia Animal, Lisboa, 2011. – 61 p.

14. Deletion of African swine fever virus interferon inhibitors from the genome of a virulent isolate reduces virulence in domestic pigs and induces a protective response / A. L. Reis, C. C. Abrams, L. C. Goatley [et al.] // Vaccine. – 2016. – Vol. 34. No. 39. – P. 4698– 4705.

15. Esparza I., González J. C., Viñuela E. Effect of interferon-α, interferon-γ and tumour necrosis factor on African swine fever virus replication in porcine monocytes and macrophages // J. Gen. Virol. – 1988. – Vol. 69. – P. 2973–2980.

16. Immunomodulators in the prevention of acute respiratory viral infections / T. A. Semenenko [et al.] // Rus. J. Immunol. – 2002. – Vol. 7, No. 2. – С. 105–114.

17. Interferon type I response in porcine reproductive and respiratory syndrome virus-infected MARC-145 cells / L. C. Miller, W. W. Laegreid, J. L. Bono [et al.] // Arch. Virol. – 2004. – Vol. 149, No. 12. – P. 2453–2463.

18. The cysteine protease domain of porcine reproductive and respiratory syndrome virus nonstructural protein 2 possesses deubiquitinating and interferon antagonism functions / Z. Sun, Z. Chen, S. R. Lawson, Y. Fang // J. Virol. – 2010. – Vol. 84, No. 15. – P. 7832–7846.