ВЫЯВЛЕНИЕ ГЕНОМА ВИРУСА ЗАРАЗНОГО УЗЕЛКОВОГО ДЕРМАТИТА (НОДУЛЯРНОГО ДЕРМАТИТА) КРС В ПОЛЕВЫХ ОБРАЗЦАХ ОТ КРС НА ТЕРРИТОРИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ


https://doi.org/10.29326/2304-196X-2018-1-29-32

Полный текст:


Аннотация

Представлены результаты лабораторных исследований проб патологического и биоматериала на наличие генома вируса заразного узелкового дерматита с помощью тест-системы «Заразный узелковый дерматит ПЦР-РВ» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»). Пробы от крупного рогатого скота были получены в 2016–2017 гг. из 16 регионов Российской Федерации. Исследовано 848 образцов проб стабилизированной крови, сыворотки крови, соскобов кожи (нодулы), носовых смывов. При прижизненной диагностике вирус заразного узелкового дерматита КРС был выявлен в носовых смывах (29,2%), сыворотке крови (19,5%) и стабилизированной крови (24,4%). При посмертной диагностике геном вируса заразного узелкового дерматита КРС выявляли в пробах пораженных кожных покровов в 77,7% случаев. В пробах трахеи, селезенки и от абортированных плодов геном вируса выявлен не был. Таким образом, при подозрении на заразный узелковый дерматит при прижизненной диагностике необходимо в первую очередь исследовать пробы крови и носовых смывов, а при посмертной диагностике – нодулы (бугры).


Об авторах

А. В. Кононов
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

 Заведующий лабораторией, кандидат ветеринарных наук.

 Владимир.



А. В. Спрыгин
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

 Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук.

 Владимир.



С. В. Кононова
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук. 

Владимир.



А. А. Нестеров
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

Младший научный сотрудник, кандидат ветеринарных наук.

Владимир. 



П. В. Прутников
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

Ведущий ветеринарный врач.

Владимир. 



Е. Е. Артюхова
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

Ведущий биолог.

Владимир. 



Е. С. Кострова
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

 Младший научный сотрудник.

Владимир. 



И. Н.  Шумилова
ФГБУ «ВНИИЗЖ».
Россия

Ведущий ветеринарный врач.

Владимир.



Список литературы

1. Культурально-биологические свойства возбудителя нодулярного дерматита крупного рогатого скота, выделенного на территории Российской Федерации в 2015 году / А. В. Кононов, С. В. Кононова, И. Н. Шумилова [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2016. – № 3. – С. 8–18.

2. Проблема нодулярного дерматита крупного рогатого скота / А. В. Мищенко, В. А. Мищенко, А. В. Кононов [и др.] // Ветеринария Кубани. – 2015. – № 5. – С. 3–6.

3. Al-Salihi K. A., Hassan I. Q. Lumpy skin disease in Iraq: Study of the disease emergence // Transbound. Emerg. Dis. – 2015. – Vol. 62, No. 5. – P. 457–462.

4. Carn V. M., Kitching R. P. An investigation of possible routes of transmission of lumpy skin disease virus (Neethling) // Epidemiol. Infect. – 1995. – Vol. 114, No. 1. – P. 219–226.

5. Elhaig M. M., Selim A., Mahmoud M. Lumpy skin disease in cattle: Frequency of occurrence in a dairy farm and a preliminary assessment of its possible impact on Egyptian buffaloes // Onderstepoort J. Vet. Res. – 2017. – Vol. 84, No. 1. – doi: 10.4102/ ojvr.v84i1.1393.

6. Emergence of lumpy skin disease in Greece, 2015 / K. E. Tasioudi, S. E. Antoniou, P. Iliadou [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2016. – Vol. 63, No. 3. – P. 260–265.

7. Family Poxviridae / R. M. Buller, B. M. Arif, D. N. Black [et al.] // Virus Taxonomy: Classification and Nomenclature of Viruses. Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / ed. C. M. Fauquet, M. A. Mayo, J. Maniloff [et al.]. – Oxford: Elsevier Inc., 2005. – Р. 117–133.

8. First cases of lumpy skin disease reported in the EU // Vet. Rec. – 2015. – Vol. 177, No. 9:218. – doi: 10.1136/vr.h4668.

9. Genome of lumpy skin disease virus / E. R. Tulman, C. L. Afonso, Z. Lu [et al.] // J. Virol. – 2001. – Vol. 75. No. 15. – P. 7122–7130.

10. Hunter P., Wallace D. Lumpy skin disease in Southern Africa: A review of the disease and aspects of control // J. S. Afr. Vet. Assoc. – 2001. – Vol. 72, No. 2. – P. 68–71.

11. Ireland D. C., Binepal Y. S. Improved detection of capripoxvirus in biopsy samples by PCR // J. Virol. Methods. – 1998. – Vol. 74, No. 1. – P. 1–7.

12. Long-term changes in the spatial distribution of lumpy skin disease hotspots in Zimbabwe / S. Swiswa, M. Masocha, D. M. Pfukenyi [et al.] // Trop. Anim. Health Prod. – 2017. – Vol. 49, No. 1. – P. 195–199.

13. Lumpy skin disease in Jordan: Disease emergence, clinical signs, complications and preliminary-associated economic losses / S. M. Abutarbush, M. M. Ababneh, I. G. al Zoubi [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2015. – Vol. 62, No. 5. – P. 549–554.

14. Lumpy skin disease: Attempted propagation in tick cell lines and presence of viral DNA in field ticks collected from naturally-infected cattle / E. S. M. Tuppurainen, E. H. Venter, J. A. W. Coetzer, L. Bell-Sakyi // Ticks Tick Borne Dis. – 2015. – Vol. 6, No. 2. – P. 134–140.

15. Mechanical transmission of lumpy skin disease virus by Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) / C. M. Chihota, L. F. Rennie, R. P. Kitching, P. S. Mellor // Epidemiol. Infect. – 2001. – Vol. 126, No. 2. – P. 317–321.

16. Quantification of lumpy skin disease virus following experimental infection in cattle // S. Babiuk, T. R. Bowden, G. Parkyn [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2008. – Vol. 55, No. 7. – P. 299– 307.

17. Sites of persistence of lumpy skin disease virus in the genital tract of experimentally infected bulls / C. H. Annandale, P. C. Irons, V. P. Bagla [et al.] // Reprod. Domest. Anim. – 2010. – Vol. 45, No. 2. – P. 250–255.

18. Temporal and spatial distribution of lumpy skin disease (LSD) outbreaks in Mashonaland West Province of Zimbabwe from 2000 to 2013 / C. Gomo, K. Kanonhuwa, F. Godobo [et al.] // Trop. Anim. Health Prod. – 2017. – Vol. 49, No. 3. – P. 509–514.

19. Tuppurainen E. S. M., Venter E. H., Coetzer J. A. W. The detection of lumpy skin disease virus in samples of experimentally infected cattle using different diagnostic techniques // Onderstepoort J. Vet. Res. – 2005. – Vol. 72, No. 2. – P. 153–164.

20. Use of the Capripoxvirus homologue of Vaccinia virus 30 kDa RNA polymerase subunit (RPO30) gene as a novel diagnostic and genotyping target: development of a classical PCR method to differentiate Goat poxvirus from Sheep poxvirus / C. E. Lamien, C. Le Goff, R. Silber [et al.] // Vet. Microbiol. – 2011. – Vol. 149, No. 1–2. – P. 30–39.

21. Woods J. A. Lumpy skin disease: A review // Trop. Anim. Health Prod. – 1988. – Vol. 20, No. 1. – P. 11–17.

22. World Organisation for Animal Health / OIE. – URL: http:// www.oie.int/.


Дополнительные файлы

Для цитирования: Кононов А.В., Спрыгин А.В., Кононова С.В., Нестеров А.А., Прутников П.В., Артюхова Е.Е., Кострова Е.С.,  Шумилова И.Н. ВЫЯВЛЕНИЕ ГЕНОМА ВИРУСА ЗАРАЗНОГО УЗЕЛКОВОГО ДЕРМАТИТА (НОДУЛЯРНОГО ДЕРМАТИТА) КРС В ПОЛЕВЫХ ОБРАЗЦАХ ОТ КРС НА ТЕРРИТОРИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ. Ветеринария сегодня. 2018;(1):29-32. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2018-1-29-32

For citation: Kononov A.V., Sprygin A.V.,  Kononova S.V.,  Nesterov A.A.,  Prutnikov P.V., Artyukhova Y.Y.,  Kostrova Y.S., Shumilova I.N. DETECTION OF LUMPY SKIN DISEASE VIRUS GENOME IN FIELD SAMPLES COLLECTED FROM CATTLE IN THE RUSSIAN FEDERATION. Veterinary Science Today. 2018;(1):29-32. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2018-1-29-32

Просмотров: 133

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)