ВЫЯВЛЕНИЕ ГЕНОМА ВИРУСА ЗАРАЗНОГО УЗЕЛКОВОГО ДЕРМАТИТА (НОДУЛЯРНОГО ДЕРМАТИТА) КРС В ПОЛЕВЫХ ОБРАЗЦАХ ОТ КРС НА ТЕРРИТОРИИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ

Представлены результаты лабораторных исследований проб патологического и биоматериала на наличие генома вируса заразного узелкового дерматита с помощью тест-системы «Заразный узелковый дерматит ПЦР-РВ» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»). Пробы от крупного рогатого скота были получены в 2016–2017 гг. из 16 регионов Российской Федерации. Исследовано 848 образцов проб стабилизированной крови, сыворотки крови, соскобов кожи (нодулы), носовых смывов. При прижизненной диагностике вирус заразного узелкового дерматита КРС был выявлен в носовых смывах (29,2%), сыворотке крови (19,5%) и стабилизированной крови (24,4%). При посмертной диагностике геном вируса заразного узелкового дерматита КРС выявляли в пробах пораженных кожных покровов в 77,7% случаев. В пробах трахеи, селезенки и от абортированных плодов геном вируса выявлен не был. Таким образом, при подозрении на заразный узелковый дерматит при прижизненной диагностике необходимо в первую очередь исследовать пробы крови и носовых смывов, а при посмертной диагностике – нодулы (бугры).

1. Культурально-биологические свойства возбудителя нодулярного дерматита крупного рогатого скота, выделенного на территории Российской Федерации в 2015 году / А. В. Кононов, С. В. Кононова, И. Н. Шумилова [и др.] // Ветеринария сегодня. – 2016. – № 3. – С. 8–18.

2. Проблема нодулярного дерматита крупного рогатого скота / А. В. Мищенко, В. А. Мищенко, А. В. Кононов [и др.] // Ветеринария Кубани. – 2015. – № 5. – С. 3–6.

3. Al-Salihi K. A., Hassan I. Q. Lumpy skin disease in Iraq: Study of the disease emergence // Transbound. Emerg. Dis. – 2015. – Vol. 62, No. 5. – P. 457–462.

4. Carn V. M., Kitching R. P. An investigation of possible routes of transmission of lumpy skin disease virus (Neethling) // Epidemiol. Infect. – 1995. – Vol. 114, No. 1. – P. 219–226.

5. Elhaig M. M., Selim A., Mahmoud M. Lumpy skin disease in cattle: Frequency of occurrence in a dairy farm and a preliminary assessment of its possible impact on Egyptian buffaloes // Onderstepoort J. Vet. Res. – 2017. – Vol. 84, No. 1. – doi: 10.4102/ ojvr.v84i1.1393.

6. Emergence of lumpy skin disease in Greece, 2015 / K. E. Tasioudi, S. E. Antoniou, P. Iliadou [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2016. – Vol. 63, No. 3. – P. 260–265.

7. Family Poxviridae / R. M. Buller, B. M. Arif, D. N. Black [et al.] // Virus Taxonomy: Classification and Nomenclature of Viruses. Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses / ed. C. M. Fauquet, M. A. Mayo, J. Maniloff [et al.]. – Oxford: Elsevier Inc., 2005. – Р. 117–133.

8. First cases of lumpy skin disease reported in the EU // Vet. Rec. – 2015. – Vol. 177, No. 9:218. – doi: 10.1136/vr.h4668.

9. Genome of lumpy skin disease virus / E. R. Tulman, C. L. Afonso, Z. Lu [et al.] // J. Virol. – 2001. – Vol. 75. No. 15. – P. 7122–7130.

10. Hunter P., Wallace D. Lumpy skin disease in Southern Africa: A review of the disease and aspects of control // J. S. Afr. Vet. Assoc. – 2001. – Vol. 72, No. 2. – P. 68–71.

11. Ireland D. C., Binepal Y. S. Improved detection of capripoxvirus in biopsy samples by PCR // J. Virol. Methods. – 1998. – Vol. 74, No. 1. – P. 1–7.

12. Long-term changes in the spatial distribution of lumpy skin disease hotspots in Zimbabwe / S. Swiswa, M. Masocha, D. M. Pfukenyi [et al.] // Trop. Anim. Health Prod. – 2017. – Vol. 49, No. 1. – P. 195–199.

13. Lumpy skin disease in Jordan: Disease emergence, clinical signs, complications and preliminary-associated economic losses / S. M. Abutarbush, M. M. Ababneh, I. G. al Zoubi [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2015. – Vol. 62, No. 5. – P. 549–554.

14. Lumpy skin disease: Attempted propagation in tick cell lines and presence of viral DNA in field ticks collected from naturally-infected cattle / E. S. M. Tuppurainen, E. H. Venter, J. A. W. Coetzer, L. Bell-Sakyi // Ticks Tick Borne Dis. – 2015. – Vol. 6, No. 2. – P. 134–140.

15. Mechanical transmission of lumpy skin disease virus by Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) / C. M. Chihota, L. F. Rennie, R. P. Kitching, P. S. Mellor // Epidemiol. Infect. – 2001. – Vol. 126, No. 2. – P. 317–321.

16. Quantification of lumpy skin disease virus following experimental infection in cattle // S. Babiuk, T. R. Bowden, G. Parkyn [et al.] // Transbound. Emerg. Dis. – 2008. – Vol. 55, No. 7. – P. 299– 307.

17. Sites of persistence of lumpy skin disease virus in the genital tract of experimentally infected bulls / C. H. Annandale, P. C. Irons, V. P. Bagla [et al.] // Reprod. Domest. Anim. – 2010. – Vol. 45, No. 2. – P. 250–255.

18. Temporal and spatial distribution of lumpy skin disease (LSD) outbreaks in Mashonaland West Province of Zimbabwe from 2000 to 2013 / C. Gomo, K. Kanonhuwa, F. Godobo [et al.] // Trop. Anim. Health Prod. – 2017. – Vol. 49, No. 3. – P. 509–514.

19. Tuppurainen E. S. M., Venter E. H., Coetzer J. A. W. The detection of lumpy skin disease virus in samples of experimentally infected cattle using different diagnostic techniques // Onderstepoort J. Vet. Res. – 2005. – Vol. 72, No. 2. – P. 153–164.

20. Use of the Capripoxvirus homologue of Vaccinia virus 30 kDa RNA polymerase subunit (RPO30) gene as a novel diagnostic and genotyping target: development of a classical PCR method to differentiate Goat poxvirus from Sheep poxvirus / C. E. Lamien, C. Le Goff, R. Silber [et al.] // Vet. Microbiol. – 2011. – Vol. 149, No. 1–2. – P. 30–39.

21. Woods J. A. Lumpy skin disease: A review // Trop. Anim. Health Prod. – 1988. – Vol. 20, No. 1. – P. 11–17.

22. World Organisation for Animal Health / OIE. – URL: http:// www.oie.int/.