Ящур причиняет серьезный экономический ущерб, который выражается в существенных затратах на ликвидацию болезни, введение строгих ограничений, налагаемых на внутреннюю и международную торговлю продукцией животноводства. Комплекс мер для борьбы и профилактики заболевания предполагает массовую иммунизацию восприимчивых животных, а также контроль уровня напряженности поствакцинального иммунитета. При промышленном изготовлении противоящурных вакцинных препаратов определяют концентрацию 146S частиц, которые являются основным компонентом, влияющим на иммуногенную активность вакцины. В статье представлены результаты оценки возможности применения спектрометрического способа для опосредованного определения концентрации 146S компонента при определении количества РНК вируса ящура, выделенной после серологического связывания. Данный способ является дешевым, простым в исполнении, позволяет опосредованно определять концентрацию 146S частиц вируса ящура в неинактивированном сырье для вакцины в течение 3–4 ч. При исследовании суспензий культурального вируса ящура доказано, что линейная модель вида С_146S = (3,9 × N_{РНК 146S} + 566 783 689)/280 818 944 837 с помощью спектрального исследования позволяет оценивать концентрацию 146S компонента вируса ящура в сырье для вакцины. Совпадение фактических результатов полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией в режиме реального времени и ожидаемых результатов по определению концентрации 146S компонента культурального вируса ящура спектрометрическим способом составило 97,0–99,9%. При сравнении с данными, полученными в реакции связывания комплемента, совпадение фактических и ожидаемых результатов соответствовало значениям 94,5–99,5%. Для положительного контроля совпадение фактических и ожидаемых результатов составило 99,0–99,6%. В отрицательном контрольном образце геном и 146S частицы вируса ящура не обнаружены, что также соответствовало ожиданиям.

Предъявляемые в настоящее время к иммунобиологическим препаратам требования чистоты и безопасности могут быть эффективно достигнуты при использовании бессывороточных питательных сред и специализированных добавок неживотного происхождения. В данной работе показана возможность применения добавок Sheff-Vax ACF®, производимых компанией Kerry, Inc. (Ирландия), для культивирования культуры клеток ВНК-21/SUSP/ARRIAH и репродукции вируса ящура. Было отмечено, что к седьмому пассажу в присутствии добавки Sheff-Vax Plus PF ACF концентрация клеток и кратность прироста были выше на 40–60%, чем при внесении добавок Sheff-Vax PF ACF и Sheff-Vax Plus ACF. Не обнаружено различий в изменении водородного показателя. При репродукции вируса ящура в полученных клетках определили, что в опытных образцах с 1 млн клеток 146+75S компонентов было больше в 2,3–2,4 раза по сравнению с контролем. При культивировании с добавкой Sheff-Vax Plus PF ACF клетки имели нормальную морфологию, множество динамических выростов. В присутствии данной добавки к седьмому пассажу такие показатели, как кратность прироста и концентрация суспензии, в контрольных и опытных образцах выравнивались. Количество иммуногенных компонентов вируса ящура, репродуцированного в клетках с указанной добавкой, было выше на 20–30%, чем в клетках, выросших с применением других добавок. Установлено, что концентрация клеток линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH и кратность прироста в присутствии специализированных добавок была меньше, чем в контрольных образцах с добавлением сыворотки и гидролизата белков крови в питательную среду. При этом выход вируса с 1 млн клеток был выше в культуре, выросшей при внесении добавок Sheff-Vax ACF. Из трех исследованных добавок наиболее приемлемой для культивирования линии ВНК-21/SUSP/ARRIAH и репродукции вируса ящура в полученных клетках была Sheff-Vax Plus PF ACF.

Цель настоящих исследований состояла в подборе режимов инактивации вируса геморрагической болезни кроликов 1-го (RHDV1) и 2-го (RHDV2) типов для использования полученных антигенов в составе инактивированных вакцин и диагностикумов. Изучали инактивирующее действие аминоэтилэтиленимина и β-пропиолактона в различных концентрациях в зависимости от времени экспозиции и температуры. Оценку инактивирующего эффекта используемого соединения соответственно принятым условиям испытания (концентрация, температура и время экспозиции) проводили на группе кроликов. Каждому животному делали внутримышечную инъекцию пробы инактивируемого материала в объеме 1 см3. По истечении максимального интервала экспозиции аналогичным образом испытывали пробу контрольного образца вирусного материала, который содержали при тех же условиях без добавления инактиванта. В опытных и контрольных группах повреждающее действие оценивали с помощью показателя летальности: L = m/n, где m – число погибших животных; n – общее количество кроликов в группе для испытания данной пробы инактивируемого материала. Посмертный диагноз подтверждали исследованием гомогената ткани печени кроликов на наличие соответствующих антигенов при помощи иммуноферментного анализа. Установили, что аминоэтилэтиленимин и β-пропиолактон не одинаково воздействовали на исследуемые варианты вируса. В целях максимального со- хранения антигенных структур вируса считали, что оптимальными условиями инактивации будут следующие: для RHDV1 – аминоэтилэтиленимином в концентрации 0,3% при 37 °С и экспозиции 72 ч или β-пропиолактоном в концентрации 0,1–0,3% при 25–37 °С и экспозиции 24–48 ч; для RHDV2 – аминоэтилэтиленимином в концентрации 1,0% при 37 °С и экспозиции 72 ч или β-пропиолактон в концентрации 0,3% при 25 °С и экспозиции 24 ч.

Для снижения заболеваемости крупного рогатого скота острыми респираторными вирусными инфекциями проводится плановая вакцинация коров- матерей. Существует прямая зависимость уровня пассивного иммунитета у телят от эффективности вакцинопрофилактики коров. В работе представлены результаты исследования напряженности колострального иммунитета у телят и поствакцинального иммунитета у коров против возбудителей острых респираторных вирусных инфекций в сельскохозяйственных организациях, находящихся на территории Уральского и Приволжского федеральных округов. В обследованных хозяйствах (n = 10) крупный рогатый скот прививают инактивированными вакцинами: «КОМБОВАК» и «КОМБОВАК-Р» (ООО «Ветбиохим», Россия), «HIPRABOVIS® 4» (Laboratorios Hipra, S. A., Испания). Исследование напряженности поствакцинального иммунитета у коров показало, что уровень антител к возбудителям инфекционного ринотрахеита (5,3–8,0 log2), вирусной диареи (3,5–4,8 log2), парагриппа-3 (6,8–8,5 log2), респираторно-синцитиальной инфекции (4,2–4,5 log2) крупного рогатого скота соответствует протективному. При оценке результатов серодиагностики пассивного иммунитета у телят к острым респираторным вирусным инфекциям установлено, что уровень колостральных антител у них ниже, чем уровень поствакцинальных антител у коров: к вирусу инфекционного ринотрахеита на 34,2–58,8%; к вирусу диареи на 37,5–45,0%; к вирусу парагрип- па-3 на 14,7–35,4%; к респираторно-синцитиальному вирусу на 23,5–42,2%. Для обеспечения эпизоотического благополучия предложено провести коррекцию программ специфической профилактики заболеваний крупного рогатого скота в неблагополучных по острым респираторным вирусным инфекциям стадах для подвергнутых обследованию молочно-товарных ферм.

При оздоровлении каждого неблагополучного по туберкулезу хозяйствующего субъекта необходимо выявлять анергичных к туберкулину животных, являющихся потенциальным источником инфекции. Целью настоящего исследования было изучение роли комплементсвязывающих и гемагглютинирующих антител при выявлении больного туберкулезом крупного рогатого скота. В двух неблагополучных по туберкулезу хозяйствах исследовано трехкратно в динамике 977 голов скота разных половозрастных групп. Всех реагирующих на туберкулин животных (132 головы; 13,5%) через 35 дней подвергли комплексному исследованию с использованием аллергических и серологических методов. На третьем этапе с интервалом 40 дней исследовали животных с выраженной специфической активностью антител и низким функциональным состоянием клеточного иммунитета. Показана низкая информативность аллергических методов диагностики туберкулеза в неблагополучных по заболеванию хозяйствах. Установлена активность комплементсвязывающих и гемагглютинирующих антител в организме анергичных к туберкулину животных. Более высокая антигенная активность выявлена в реакции связывания комплемента у комплексного туберкулезного антигена Украинского НИИЭВ в сравнении с антигеном Сибирского НИВИ, а также в реакции непрямой гемагглютинации с полисахаридным антигеном ВИЭВ, показатель выявляемости при этом составил 68 (7,0%), 28 (2,9%) и 299 (30,6%) случаев соответственно. Коррелятивной связи между серопозитивностью и иммунореактивностью обнаружить не удалось. Животные с положительными показаниями в реакции связывания комплемента и реакции непрямой гемагглютинации не реагировали на туберкулин. При послеубойном осмотре у 19 из 20 не реагировавших на туберкулин коров патолого-анатомические изменения совпадали с серопозитивностью, причем у животных с положительными показаниями в реакции связывания комплемента с антигеном Сибирского НИВИ – во всех случаях. Полученные результаты свидетельствуют о высокой результативности комбинации аллергического теста с серологическими методами и перспективности их сочетанного использования для диагностики туберкулеза крупного рогатого скота.

Одним из этиологических агентов респираторных болезней является респираторно-синцитиальный вирус крупного рогатого скота (РСВ КРС). Возбудитель широко распространен во всех странах мира с интенсивным типом ведения животноводства и может вызывать патологию респираторного тракта самостоятельно или взаимодействуя с другими вирусами и бактериями. Актуальным является изучение распространения возбудителя на крупных молочных комплексах, выявление его во внутренних органах инфицированных животных, в том числе с количественной оценкой накопления в них. Целью работы было изучение особенностей распространения респираторно-синцитиальной инфекции, частоты выявления вируса в пробах биологического материала как в моноварианте, так и в ассоциациях с вирусами инфекционного ринотрахеита (ИРТ КРС) и вирусной диареи – болезни слизистых оболочек (ВД- БС КРС) крупного рогатого скота, бактериями семейства Pasteurellaceae на крупных молочных комплексах, неблагополучных по респираторным болезням животных, с определением концентрации вируса в органах респираторного тракта. В моноварианте РСВ КРС присутствовал в 9,2% исследованных проб биоматериала, в ассоциациях с вирусами ИРТ и ВД-БС КРС – в 1,4 и 5,2% проб соответственно. Количество проб, содержащих одновременно РСВ КРС и бактерии семейства Pasteurellaceae, составило 10,8%. Максимально вирус присутствовал в 26,6% проб от числа исследованных. Методом полимеразной цепной реакции в реальном времени геном вируса выявляли в легких (13,1%), в экссудате трахеи, бронхов и носовых синусов (6,0%), носовых выделениях (4,0%), бронхах (1,7%). Реже вирус присутствовал в пробах слизистой оболочки трахеи и бронхов (1,1%) и легочных лимфатических узлах (0,8%). Количественная оценка РНК РСВ КРС показала, что максимальное накопление вируса происходило в легких и носовых выделениях, что подтверждает данные об его тропизме к интерстицию легочной ткани.

В Российской Федерации в 2019 году произошло резкое обострение ситуации по ньюкаслской болезни птиц с распространением вируса субгенотипа VII-L по всей территории страны – от Приморского края до Курской области. В итоге зарегистрировано 17 неблагополучных пунктов, где содержалось невакцинированное поголовье в личных подсобных хозяйствах граждан. В данной работе оценивали иммуногенность вакцин производства ФГБУ «ВНИИЗЖ», а также эффективность различных схем вакцинации для профилактики ньюкаслской болезни в отношении актуальных для Российской Федерации вирусов VII генотипа. Известно, что вирулентность циркулирующего в настоящее время возбудителя ньюкаслской болезни заметно возросла по сравнению с вирусами, выделенными в предыдущие годы, и он способен преодолевать поствакцинальный иммунитет, создаваемый живыми вакцинами. В результате исследований было установлено, что вакцины производства ФГБУ «ВНИИЗЖ» обладают высокой иммуногенной активностью в отношении вирусов VII генотипа, что позволяет эффективно профилактировать эту болезнь при их использовании в составе стандартных схем вакцинации. Схема вакцинации с двукратным применением живой вакцины из штамма «Ла-Сота» формирует иммунитет у 100% цыплят, так же как и «полная» схема вакцинации с использованием инактивированных вакцин. Применение живых вакцин в схеме вакцинации с однократным и двукратным введением предотвращает гибель птиц и клиническое проявление болезни, однако не препятствует репликации вируса, в то время как добавление в схему иммунизации инактивированной вакцины предотвращает, кроме того, и репликацию вирулентного вируса. Таким образом, использование живых и инактивированных вакцин отечественного производства, прежде всего на основе штамма «Ла-Сота», с последующим контролем напряженности иммунитета и проведением ревакцинаций по показаниям является главным инструментом в борьбе с заболеванием.

В статье представлены результаты анализа эпизоотической ситуации по цестодозам домашних северных оленей в хозяйствах Мурманской области. Исследования проводили в период с 2018 по 2019 г. во время планового убоя северных оленей на убойных пунктах СХПК «Тундра» и СХПК ОПХ МНС «Оленевод», расположенных в поселениях Ловозеро, Краснощелье, Сосновка. Всего было обследовано 4048 туш домашних северных оленей, из них 2812 – в Ловозеро, 396 – в Сосновке, 840 – в Краснощелье. При ветеринарно-санитарной экспертизе проводили внешний осмотр паренхиматозных органов на предмет наличия на них цестодовых пузырей. При их обнаружении производили отбор проб и готовили макропрепараты по общепринятым в паразитологии методикам. Из числа обследованных туш было отобрано 56 проб внутренних органов оленей с подозрением на наличие цестод, в 25 из них обнаружены гельминты, в остальных образцах паразиты не выделены. Видовую принадлежность гельминтов определяли на кафедре ветеринарно-биологических наук факультета ветеринарной медицины Хельсинкского университета. В результате проведенных исследований из гельминтозных заболеваний были выявлены эхинококкоз (Echinococcus canadensis) и цистицеркоз (Taenia hydatigena). Преимущественно была поражена печень, где в пузырчатой форме паразитируют личинки возбудителя. Установлено, что инвазированность домашних северных оленей возбудителями цистицеркоза в СХПК «Тундра» составила 0,5%, эхинококкоза – 0,04%, в СХПК ОПХ МНС «Оленевод» цистицеркоз диагностировали в 0,81% случаев, эхинококки не выделены. В целом по оленеводческим хозяйствам цестодами поражено 0,62% оленей. Мероприятия по предупреждению распространения гельминтозов среди домашних и сельскохозяйственных животных проводятся достаточно эффективно.

Приведены результаты морфометрических и денситометрических показателей биопленок микроорганизмов, выделенных при болезнях органов пищеварения ягнят. Установлены изменения количественного и видового состава микробиоценозов кишечника при болезнях органов пищеварения по сравнению с клинически здоровыми ягнятами. При проведении исследований методами оптической микроскопии выявили формирование трехмерной структуры биопленок в виде плотной сети, состоящей из грамотрицательных и грамположительных бактерий, дрожжевых клеток, гифальных и псевдогифальных форм, окруженных межклеточным полимерным матриксом. Наличие бластоспор обусловливало увеличение количества адгезированных к субстрату клеток, происходило формирование биологической пленки, состоящей из палочковидных и округлых клеток, удерживающихся на клетках микроскопических грибов. В процессе дисперсии при разрушении межклеточного матрикса и отделении бактериальных и дрожжевых клеток от микроколоний обособлялись разветвленные структуры и колонизировали свободные от микроорганизмов участки субстрата. Оценку интенсивности формирования биопленок изучаемыми микроорганизмами проводили, измеряя оптическую плотность через 48 ч культивирования. Результаты люминесцентных микроскопических исследований показали, что динамика изменений жизнеспособных структур микроорганизмов характеризовалась чередующимися периодами снижения и увеличения интенсивности формирования биопленки. В исследуемых культурах микроорганизмов выявляли клетки, характеризующиеся способностью к активному росту и размножению, образующие сменяющие друг друга субпопуляции. При детекции жизнеспособности микроорганизмов в составе биопленок дифференцировали жизнеспособные (зеленый спектр люминесценции) и нежизнеспособные клетки (красный спектр люминесценции).

Данный обзор направлен на обобщение современного понимания становления микробиоты новорожденных млекопитающих на основе результатов современных исследований в экспериментах с животными в трех аспектах, включая начальную колонизацию, влияние микробиоты на иммунную функцию кишечника развивающегося новорожденного и воздействие внешних факторов на формирование микробиома в ювенильный период. Результаты представленных в статье исследований подтверждают, что коррекция микробного пейзажа – важнейший фактор улучшения здоровья животного с учетом того, что именно здоровая микрофлора способствует снижению частоты и интенсивности кишечных инфекций, а это, в свою очередь, минимизирует использование антибиотиков. Известно, что микробиом влияет на развитие иммунной системы, метаболические процессы и даже на этологию, в связи с чем нетипичная микробная популяция способна вызвать нарушения как иммунитета, так и метаболизма организма. Активный процесс взаимодействия микроорганизмов и организма хозяина начинается уже при рождении. Даже различные способы родов – кесарево или вагинальное родоразрешение – могут определять начальную колонизацию новорожденного. Кроме того, на формирование микробиоты кишечника влияют генетика особи, питание и окружающая среда. В связи с этим актуально изучение пробиотиков – понимание их эффективности при профилактике и лечении диареи, использование как альтернативы антибиотикам, а также для повышения устойчивости животных к стрессовым факторам.

Африканская чума свиней – инфекционное заболевание домашних и диких свиней, которое в ХХI в. вышло за пределы своего естественного ареала (Африканский континент) и с 2007 г. (после появления в Грузии) распространилось по многим странам Европейского и Азиатско-Тихоокеанского регионов. К началу 2021 г., по данным срочных сообщений и последующих отчетов, 68% всех зарегистрированных в мире вспышек инфекции приходились на Европу. Однако наибольшие потери свиноводству нанесла вспышка, зарегистрированная в Азии в 2020 г., когда погибло 6 733 791 животное, что составляет 82% от общих мировых потерь отрасли из-за АЧС. После нескольких лет течения современной эпизоотии АЧС, при отсутствии вакцины и средств лечения, стало ясно, что серьезных проблем для свиноводческой отрасли (и в особенности мелких фермеров), а также дестабилизации мирового рынка свиноводческой продукции не избежать. В связи с этим в сентябре 2014 г. в Берне под эгидой ФАО/МЭБ GF-TADs была создана региональная Постоянная группа экспертов по АЧС в Европе (SGE ASF). Целью ее работы является налаживание более тесного сотрудничества между странами, затронутыми заболеванием, повышение транспарентности и обмен опытом профилактики и борьбы. Работа миссий постоянных экспертов по АЧС под эгидой GF-TADs в Европе показала свою эффективность и стала образцом для других регионов. В апреле 2019 г. аналогичная группа была создана и в Азии, чтобы противостоять быстрому развитию болезни в Азиатско-Тихоокеанском регионе, где сосредоточено более 60% мирового поголовья свиней. Прорабатывается вопрос создания новой постоянной группы экспертов по АЧС для стран Северной и Южной Америки. Результатом многолетней работы стало создание платформы ФАО/МЭБ/GF-TADs в качестве прогрессивного средства борьбы с такой трансграничной болезнью, как африканская чума свиней.