Значение РСК и ПЦР в диагностике экспериментальной инфекции кроликов, вызванной Chlamydia psittaci

Проведена индикация специфических хламидийных антител в реакции связывания комплемента и генома хламидий методом полимеразной цепной реакции у сукрольных крольчих при экспериментальной инфекции, вызванной Chlamydiapsittaci. Развитие инфекционного процесса у зараженных кроликов сопровождалось повышением температуры тела и появлением респираторных симптомов и было подтверждено наличием в их крови специфических хламидийных антител и патологическими родами. При исследовании парных сывороток крови кроликов в реакции связывания комплемента выявили нарастание титров специфических хламидийных антител, которые на седьмые сутки после заражения варьировались в пределах 1:7,5; на четырнадцатые сутки средняя их концентрация была равна 1:40, и к тридцатым суткам средний титр увеличился до 1:60. Однако подтвердить хламидийную этиологию неблагополучных исходов окрола экспериментально зараженных кроликов при исследовании проб патологических материалов, полученных из урогенитального тракта исследуемых животных, методом полимеразной цепной реакции и микроскопией мазков-отпечатков не удалось. При этом молекулярно-генетические исследования проб внутренних органов (печень) мертворожденных крольчат позволили выявить геном хламидий, в результате чего была подтверждена хламидийная этиология патологического исхода окрола кроликов. Следовательно, при прижизненной постановке диагноза на хламидиоз такой ретроспективный метод, как реакция связывания комплемента с хламидийным антигеном, имеет диагностическую ценность. 

1. Боровкова Л. В., Челнокова Е. В. Современные методы диагностики и лечения инфекций, передающихся половым путем. Медицинский альманах. 2010; 2 (11): 150–156. EDN: MBFQOB.

2. Герасимова В. М., Марченко В. С., Парфентьева Т. М., Истомина Д. Н. Сравнительная характеристика лабораторных методов диагностики хламидиоза. Вестник Челябинского государственного университета. Образование и здравоохранение. 2021; 4 (16): 47–52. DOI: 10.24411/2409-4102-2021-10407.

3. Руководство по лабораторной диагностике инфекций урогенитального тракта. Под ред. М. Домейки, А. М. Савичевой, Е. В. Соколовского, Р. Балларда, М. Унемо. СПб.: Н-Л; 2012. 288 с.

4. Ульянова О. В., Салтыков Ю. В., Зайцев С. С., Хижнякова М. А., Филонова Н. Н., Субботина И. А. и др. Лабораторная диагностика хламидиоза. Методические рекомендации. СарНИВИ; ФГБНУ ФИЦВиМ; 2019. 29 с.

5. Harding-Esch E. M., Cousins E. C., Chow S. C., Phillips L. T., Hall C. L., Cooper N., et al. A 30-min nucleic acid amplification point-of-care test for genital Chlamydia trachomatis infection in women: a prospective, multi-centerstudy of diagnostic accuracy. EBioMedicine. 2018; 28: 120–127. DOI: 10.1016/j.ebiom.2017.12.029.

6. Widdice L. E., Hsieh Y. H., Silver B., Barnes M., Barnes P., Gaydos C. A. Performance of the Atlas genetics rapid test for Chlamydia trachomatis and women’s attitudestoward point-of-care testing. Sex. Transm. Dis. 2018; 45 (11): 723–727. DOI: 10.1097/OLQ.0000000000000865.

7. Федорова В. А., Ляпина А. М., Хижнякова М. А., Зайцев С. С., Салтыков Ю. В., Субботина И. А. и др. Хламидиозы животных и человека. М.: Наука; 2019. 135 с. DOI: 10.7868/9785020402492.

8. Feodorova V. A., Zaitsev S. S., Khizhnyakova M. A., Saltykov Y. V., Evstifeev V. V., Khusainov F. M., et al. Data of de novo genome assembly of the Chlamydia psittacistrain isolated from the livestock inVolga Region, Russian Federation. Data Brief. 2020; 29:105190. DOI: 10.1016/j.dib.2020.105190.

9. Шилова Е. Н., Шкуратова И. А., Ряпосова М. В., Вялых И. В., Козлова Н. А. Эффективность специфических методов диагностики хламидиоза крупного рогатого скота. Ветеринария. 2014; 4: 21–24. EDN: RZUAYX.

10. Stothard D. R., Boguslawski G., Jones R. B. Phylogenetic analysis of the Chlamydia trachomatis major outer membrane protein and examination of potential pathogenic determinants. Infect. Immun. 1998; 66 (8): 3618–3625. DOI: 10.1128/IAI.66.8.3618-3625.1998.

11. Ripa T., Nilsson P. A variant of Chlamydia trachomatis with deletion in cryptic plasmid: implicationsfor use of PCR diagnostic tests. Euro Surveill. 2006; 11 (11):E061109.2. DOI: 10.2807/esw.11.45.03076-en.

12. Федорова В. А., Полянина Т. И., Салтыков Ю. В., Зайцев С. С., Ласкавый В. Н., Ульянова О. В., Мотин В. Л. Обнаружение Chlamydia trachomatis у абортировавших овец. Ветеринария. 2016; 1: 22–26. EDN: VMFVEV.

13. Федорова В. А., Салтыков Ю. В., Филонова Н. Н., Субботина И. А., Зайцев С. С., Ульянова О. В. и др. Детекция нового шведского варианта Chlamydia trachomatis у крупного рогатого скота. Ветеринария. 2019; 7: 27–31. DOI: 10.30896/0042-4846.2019.22.7.27-31.

14. Ripa T., Nilsson P. A. A Chlamydia trachomatis strain with a 377-bp deletion in the cryptic plasmid causing false-negative nucleic acid amplification tests. Sex. Transm. Dis. 2007; 34 (5): 255–256. DOI: 10.1097/OLQ.0b013e31805ce2b9.

15. Евстифеев В. В., Хусаинов Ф. М., Барбарова Л. А., Равилов А. З. Усовершенствование комплементсвязывающего антигена для диагностики хламидиоза животных. Материалы Всероссийской научно-практической конференции по актуальным проблемам агропромышленного комплекса (29–30 октября 2004 г.). Казань: Казанская ГАВМ; 2004; 33–34. EDN: MYSJIL.

16. Unemo M., Olcén P., Agné-Stadling I., Feldt A., Jurstrand M., Herrmann B., et al. Experiences with the new genetic variant of Chlamydia trachomatis in Örebro county, Sweden – proportion, characteristics and effective diagnostic solution in an emergent situation. Euro Surveill. 2007; 12 (4):E5-6. DOI: 10.2807/esm.12.04.00699-en.

17. Herrmann B., Törner A., Low N., Klint M., Nilsson A., Velicko I., et al. Emergence and spread of Chlamydia trachomatis variant, Sweden. Emerg. Infect. Dis. 2008; 14 (9): 1462–1465. DOI: 10.3201/eid1409.080153.

18. Feodorova V. A., Polyanina T. I., Konnova S. S., Laskavy V. N. First case of detection of Chlamydia trachomatisin livestock in Russia. In: Proceeding of 5th Congress of EuropeanMicrobiologists (21–25 July 2013, Germany). Leipzig: FEMS; 2013; 237.

19. Feodorova V. A., Zaitsev S. S., Saltykov Y. V., Sultanakhmedov E. S., Bakulev A. L., Ulyanov S. S., Motin V. L. An asymptomatic patient with fatal infertility carried a Swedish strain of Chlamydia trachomatis with additional deletion in the plasmid orf1 that belonged to a different MLST sequence type. Microorganisms. 2019; 7 (7):187. DOI: 10.3390/microorganisms7070187.

20. Евстифеев В. В., Хусаинов Ф. М., Яковлев С. И., Хусаинова Г. И., Иванова С. В. Результаты клинических испытаний универсальной вакцины против хламидиоза сельскохозяйственных животных. Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов: материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 100-летию Армавирской биофабрики (20–21 августа 2021 г.). М.: 2021; 244–251. DOI: 10.47804/978-5-89904-0290_2021_244.