Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

Сравнительный анализ свойств масляных адъювантов компании VITAVAC в составе инактивированных вакцин против ящура

https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-2-139-147

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Введение. Ящур по-прежнему остается одной из наиболее значимых трансграничных вирусных инфекций сельскохозяйственных животных, что демонстрируют данные по эпизоотической ситуации за последние 5 лет. Для специфической профилактики данного заболевания применяют культуральные инактивированные вакцины. Для изготовления эмульсионных вакцинных препаратов требуется использование масляных адъювантов. В настоящее время на мировом рынке представлена широкая линейка данных компонентов, в частности новый продукт индийской компании VITAVAC.

Цель исследования. Проведение сравнительного анализа свойств масляных адъювантов компании VITAVAC в составе инактивированных вакцин против ящура.

Материалы и методы. Исследовали следующие экспериментальные образцы масляных адъювантов: VITAVAC 50 (серия G-221), VITAVAC 70 (серия G-223), VITAVAC 250 (серия M-2508). Осуществляли анализ физико-химических свойств эмульсионных вакцин, изготовленных с применением данных адъювантов, а также определяли авирулентность, безвредность и иммуногенность в соответствии с требованиями Всемирной организации здравоохранения животных.

Результаты. Наиболее оптимальное сочетание стабильности эмульсии при длительном хранении и выраженного иммунного ответа отмечено в экспериментальном образце вакцины, содержащей масляный адъювант VITAVAC 70. Препараты на основе VITAVAC 250 обеспечивали выработку вируснейтрализующих антител с титром выше 1,65 lg SN50 , однако уступали по стабильности эмульсии при хранении. Вакцина с масляным адъювантом VITAVAC 50 по сравнению с другими вариантами индуцировала образование более низкого уровня специфических вируснейтрализующих антител. Полученные данные свидетельствуют о перспективности использования масляных адъювантов линейки VITAVAC, прежде всего VITAVAC 70, для создания инактивированных вакцин против ящура.

Заключение. Совокупность полученных данных позволяет рассматривать VITAVAC 70 как наиболее перспективный адъювант для использования в промышленном производстве инактивированных эмульсионных вакцин против ящура для свиней. Данный препарат сопоставим по ряду показателей с традиционно применяемыми масляными адъювантами Montanide ISA 206 VG и Montanide ISA 61 VG.

Для цитирования:


Кара Д.И., Доронин М.И., Борисов А.В., Михалишин Д.В., Михалишин В.В., Гусева М.Н., Жбанова Т.В., Оковытая Т.В. Сравнительный анализ свойств масляных адъювантов компании VITAVAC в составе инактивированных вакцин против ящура. Ветеринария сегодня. 2026;15(2):139-147. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-2-139-147

For citation:


Kara D.I., Doronin M.I., Borisov A.V., Mikhalishin D.V., Mikhalishin V.V., Guseva M.N., Zhbanova T.V., Okovytaya T.V. Comparative analysis of VITAVAC oil adjuvants formulated in inactivated foot-and-mouth disease vaccines. Veterinary Science Today. 2026;15(2):139-147. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-2-139-147

ВВЕДЕНИЕ

Ящур остается одной из наиболее опасных трансграничных вирусных инфекций сельскохозяйственных животных [1][2][3]. Особую эпизоотологическую и экономическую значимость болезнь приобретает в свиноводстве, где характеризуется высокой контагиозностью, быстрым развитием клинической картины и серьезными ограничительными мероприятиями для хозяйств [4][5]. В настоящее время опасность заноса вируса ящура на территорию Российской Федерации сохраняется.

По данным источников, описывающих эпизоотическую ситуацию по ящуру в мире, в период с 2020 г. по третий квартал 2025 г. в странах, сопредельных с Россией, было зарегистрировано большое количество вспышек данного заболевания. Так, в 2020 г. выявлено 2 очага в Китае; 156 – в Турции. В 2021 г. в Китае произошли 2 вспышки, в Монголии – 103. В 2022 г. в Китае вновь зафиксирована 1 вспышка ящура; в Монголии – 3; в Казахстане – 1. В 2023 г. в Китае выявлено 4 вспышки; в Южной Корее – 11. Все эти случаи были связаны с возбудителем ящура серотипа О, генетические варианты которого являются наиболее распространенными в мире. В 2023 г. в Турции произошла крупная вспышка заболевания, которая включала 200 очагов ящура, вызванного вирусом серотипов О и SAT 2 [6][7]. В 2024 г. в Китае выявили 3 очага (серотип О); в Турции – 104 (серотипы A, О, SAT 2). В 1–3 кварталах 2025 г. случаи ящура были зарегистрированы не только в странах Азии, но и Европы. На Азиатском континенте 2 очага заболевания (серотип О) обнаружили в Китае; 1 (серотип О) – в Монголии; 19 (серотип О) – в Южной Корее. В Турции произошло 4 вспышки ящура, вызванных возбудителем серотипа А, 222 – серотипа О, 12 – серотипа SAT 1, 91 – серотипа SAT 2. За последние десятилетия в Европе впервые зафиксировали случаи возникновения данного заболевания. Так, в Германии обнаружили 1 очаг ящура, вызванного вирусом генетической линии O/ME-SA/SA-2018, ранее циркулировавшим в Турции. В Венгрии и Словакии произошло более 10 вспышек заболевания, установлено, что возбудитель относится к генетической линии O/ME-SA/PanAsia2ANT-10, возникшей в Пакистане в 2017–2018 гг. [8][9][10].

Основным средством специфической профилактики ящура является вакцинация [11]. Эффективность и продолжительность поствакцинального иммунитета определяются не только концентрацией антигена в дозе и валентностью, но и типом применяемого адъюванта [12][13]. Адъюванты – это соединения как неорганического, так и органического происхождения, которые неспецифически стимулируют иммунный ответ к специфическим антигенам, повышая их иммуногенность в десятки раз [14][15][16].

В ветеринарной практике используются культуральные инактивированные сорбированные вакцины против ящура, в состав которых входят такие адъюванты, как гидроокись алюминия и сапонин [14][16]. При этом, несмотря на широкое применение, они имеют ряд недостатков, а именно: кратковременность формируемого иммунного ответа, что требует более частых ревакцинаций; высокая реактогенность и аллергенность по причине применения сапонина как дополнительного стимулятора иммунных реакций; недостаточно высокая эффективность в отношении свиней даже при увеличении дозы и кратности введения; отсутствие высокого уровня критериев стандартизации сапонина, что может приводить к вариабельности между сериями вакцин [17][18].

В хозяйствах против ящура применяют также культуральные инактивированные эмульсионные вакцины. Использование масляных адъювантов, входящих в состав данных вакцинных препаратов, имеет ряд преимуществ. Во-первых, обеспечивается формирование более напряженного и длительного иммунитета за счет того, что масляная фаза создает в месте инъекции долгосрочное депо антигена, из которого он медленно высвобождается. Это обеспечивает продолжительную стимуляцию иммунной системы, что приводит к более длительному сохранению высокого уровня специфических антител. Во-вторых, происходит стимуляция не только гуморального ответа (Th2-клетки), но и активация клеточно-опосредованного иммунитета (Th1-клетки), что важно для формирования комплексной защиты [19][20]. В-третьих, данные вакцины обеспечивают высокую эффективность как для крупного рогатого скота, так и, что крайне важно, для свиней, устраняя ключевой недостаток сорбированных препаратов. В-четвертых, эмульсионные вакцины безопасны и обладают низкой реактогенностью за счет высокой биосовместимости, что проявляется в отсутствии выраженных местных реакций. В-пятых, промышленно производимые масляные адъюванты имеют стабильный и стандартизированный состав, что гарантирует воспроизводимость между сериями вакцин [21][22].

Долгое время в Российской Федерации при изготовлении эмульсионных вакцин для крупного рогатого скота, свиней, коз, овец, птиц и объектов аквакультуры применялись масляные адъюванты компании Seppic (Франция) с торговым названием Montanide, которые обладали улучшенными свойствами. Однако высокая стоимость этих адъювантов являлась ограничивающим фактором в крупномасштабном производстве вакцинных препаратов для ветеринарии.

При изготовлении культуральных инактивированных эмульсионных вакцин против ящура наиболее часто применяются масляные адъюванты на основе минеральных и синтетических масел, формирующие эмульсии типа «вода в масле» (W/O) и «вода в масле в воде» (W/O/W). При этом к составу и свойствам масляных адъювантов предъявляются строгие требования: они должны обеспечивать стабильность эмульсии в процессе хранения и обращения, быть безвредными и хорошо переносимыми животными, а также стимулировать формирование необходимого уровня вируснейтрализующих антител (≥ 1,65 lg SN50) [23].

Для расширения линейки применяемых адъювантов с 2023 г. ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ») стал сотрудничать с предприятием VITAVAC (Индия), производящим масляные адъюванты. Были получены экспериментальные образцы VITAVAC 50, VITAVAC 70 и VITAVAC 250 для изготовления эмульсионных противоящурных вакцин. Особый интерес представляет их сравнительный анализ с широко применяемыми в мире масляными адъювантами Montanide ISA в условиях моделирования производства и испытания противоящурных вакцин.

Цель работы – провести сравнительный анализ свойств масляных адъювантов компании VITAVAC в составе инактивированных вакцин против ящура.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Масляные адъюванты. В работе использовали следующие экспериментальные образцы масляных адъювантов (VITAVAC, Индия): VITAVAC 50 (серия G-221), VITAVAC 70 (серия G-223), VITAVAC 250 (серия M-2508). Контролем служили масляные адъюванты Montanide ISA 206 VG и Montanide ISA 61 VG (Seppic, Франция).

Экспериментальные образцы вакцин. В качестве антигенов применяли культуральный инактивированный вирус ящура штаммов «SAT-1/Кения/2017» (генетическая линия SAT-1/I) и «SAT-2/LIB/39/2012» (генетическая линия SAT-2/VII/Lib-12). Вирус ящура культивировали с применением питательной ростовой среды, содержащей гидролизат белков крови и перевар по Хоттингеру. Инактивацию вируса ящура для изготовления вакцин проводили в соответствии с рекомендациями авторов, опубликованными ранее [24]. На основе указанных масляных адъювантов получали пять вариантов культуральных инактивированных эмульсионных вакцин против ящура, состав которых представлен в таблице 1.

Таблица 1

Характеристика экспериментальных образцов вакцин культуральных инактивированных эмульсионных против ящура серотипов SAT 1 и SAT 2

Table 1

Characteristics of experimental samples of culture inactivated emulsion vaccines against FMDV SAT 1 and SAT 2 serotypes

Наименование образца эмульсии

Концентрация 146S компонента вируса ящура, мкг/доза

Наименование адъюванта

Соотношение адъюванта и антигена (w/w) по массе

SAT-1/Кения/2017

SAT-2/LIB/39/2012

Контроль 1

7,5

7,5

Montanide

ISA 206 VG

50/50

Контроль 2

7,5

7,5

Montanide

ISA 61 VG

60/40

Опыт 1

7,5

7,5

VITAVAC 250

50/50

Опыт 2

7,5

7,5

VITAVAC 50

60/40

Опыт 3

7,5

7,5

VITAVAC 70

70/30

Соотношение водной (антигенной) и масляной фаз, а также режим эмульгирования подбирали в соответствии с технологическими регламентами и рекомендациями производителей адъювантов для получения стабильных мелкодисперсных эмульсий. Масляные адъюванты VITAVAC 50 и 250 по количеству, добавляемому к антигену, являются аналогами по отношению к Montanide ISA 61 VG и ISA 206 VG. Масляный адъювант VITAVAC 70 – аналог Montanide ISA 70 VG, однако для изготовления вакцин против ящура ранее он не применялся. В данном исследовании было решено изготовить экспериментальный образец эмульсионной вакцины с добавлением VITAVAC 70, поскольку он является новым продуктом.

Исследование физико-химических свойств эмульсий. Тип эмульсии определяли методом «капельной пробы» (drop-test) путем нанесения капли препарата на поверхность воды и визуальной оценки ее распределения [23]. Динамическую вязкость измеряли на вискозиметре ротационного типа при температуре эмульсии (20 ± 2) °C.

Стабильность эмульсий определяли двумя способами. При использовании экспресс-метода образец вакцины объемом 10 см³ наливали в центрифужную пробирку, через сутки после приготовления и хранения при температуре (4 ± 2) °С подвергали центрифугированию при 3000 об/мин в течение 30 мин при температуре (20 ± 2) °С. По окончании анализировали наличие фракций, на которые может разделиться эмульсия.

Возможны следующие фракции после центрифугирования эмульсии:

А – масляная фракция;

B – опалесцирующий слой (масло с белым оттенком);

C – собственно эмульсия;

D – коалесцент (плотная эмульсия);

E – антигенная составляющая вакцины (водная фракция).

Второй метод заключался в хранении экспериментальных образцов эмульсий в течение всего срока годности вакцины (18 мес.) при температурах (4 ± 2), (20 ± 2) и (37,0 ± 0,1) °C с периодическим визуальным контролем раз в месяц на предмет расслоения и изменения консистенции.

Определение безопасности экспериментальных образцов вакцин. Для анализа реактогенности вакцин использовали 10 гол. клинически здоровых свиней массой 30–40 кг, которых иммунизировали тройной дозой вакцин (6,0 см³) внутримышечно для каждой из 5 групп образцов. Животных наблюдали в течение 10 сут после иммунизации, оценивали общее состояние, аппетит, поведение, регистрировали температуру тела и наличие реакций в месте инъекции.

Исследование гуморального иммунитета. В работе использовали 20 клинически здоровых свиней массой 30–40 кг, которых распределяли на 5 групп по 4 гол. согласно вариантам вакцин. В каждой группе животным образцы вводили в прививном объеме 2,0 см³ внутримышечно. До введения препарата и на 21-е сут после вакцинации у всех животных производили отбор крови, получали сыворотки, которые исследовали для определения уровня вируснейтрализующих антител в реакции микронейтрализации (РМН) в клеточной линии почки свиньи (IB-RS-2). В соответствии с требованиями Всемирной организации здравоохранения животных (ВОЗЖ) в РМН положительной считается сыворотка крови с титром не ниже 1,65 lg SN50 [23].

Все манипуляции с животными выполняли с соблюдением этических норм и международных стандартов. Исследования одобрены комиссией по биоэтике ФГБУ «ВНИИЗЖ».

Статистическую обработку данных проводили общепринятыми методами вариационной статистики с использованием статистического программного обеспечения SPSS, Microsoft Excel, Statistica. Результаты представляли в виде средних значений и их стандартных отклонений [25][26].

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Для сравнительного анализа масляных адъювантов были изготовлены 5 экспериментальных образцов культуральных инактивированных эмульсионных вакцин с применением: VITAVAC 50 (серия G-221), VITAVAC 70 (серия G-223), VITAVAC 250 (серия M-2508), а также Montanide ISA 206 VG и Montanide ISA 61 VG.

Исследование динамической вязкости. Образцы эмульсионных вакцин, изготовленные с использованием адъювантов компании VITAVAC, имели динамическую вязкость, сопоставимую с контрольными препаратами. При этом для эмульсий с VITAVAC отмечалось некоторое снижение вязкости (в среднем на 10–25%) по сравнению с контролем, что потенциально облегчало введение препаратов.

Следует отметить, что на этапе получения предэмульсии степень вязкости полученных с применением масляных адъювантов VITAVAC эмульсий была довольно высокой, что наблюдалось визуально при перемешивании на многофункциональном лабораторном смесителе. Как видно из таблицы 2, динамическая вязкость исследуемых образцов полученных экспериментальных эмульсионных вакцин № 1, 2, 3 составляла (0,081 ± 0,001), (0,093 ± 0,001), (0,112 ± 0,001) Па×с соответственно. Данные значения находились в пределах нормы (значения динамической вязкости для сложной эмульсии, полученной с применением масляного адъюванта Montanide ISA 206 VG, по многолетним наблюдениям специалистов ФГБУ «ВНИИЗЖ», находятся в диапазоне 0,090–0,110 Па×с; для простой обратной эмульсии с масляным адъювантом Montanide ISA 61 VG значения составляют 0,010–0,150 Па×с).

Таблица 2

Динамическая вязкость и тип эмульсий, приготовленных с применением масляных адъювантов VITAVAC 50, 70, 250 (n = 3, Mean ± SD, p < 0,01)

Table 2

Dynamic viscosity and type of emulsions prepared using VITAVAC 50, 70, 250 oil adjuvants (n = 3, Mean ± SD, p < 0.01)

Наименование образца эмульсии

Наименование адъюванта

Динамическая вязкость, Па×с

Тип эмульсии (по данным drop-test)

Контроль 1

Montanide ISA 206 VG

0,091 ± 0,001

W/O/W

Контроль 2

Montanide ISA 61 VG

0,124 ± 0,001

W/O

Опыт 1

VITAVAC 250

0,081 ± 0,001

W/O/W

Опыт 2

VITAVAC 50

0,093 ± 0,001

W/O

Опыт 3

VITAVAC 70

0,112 ± 0,001

W/O

W/O/W – сложная эмульсия (is a complex emulsion), W/O – простая обратная эмульсия (is a simple reverse emulsion).

В целом при анализе готового продукта определили, что для эмульсий, изготовленных с применением опытных образцов масляных адъювантов VITAVAC 50, 70, 250, динамическая вязкость была соответственно на 25, 10 и 11% ниже по сравнению с контрольными значениями для двух типов эмульсий.

Определение типа эмульсий. Результаты «капельной пробы» подтвердили, что вакцины с VITAVAC 50 и VITAVAC 70 относятся к эмульсиям типа W/O, в то время как препараты с VITAVAC 250 и Montanide ISA 206 VG формировали эмульсии типа W/O/W (табл. 2). Это соответствовало заявленным характеристикам адъювантов и позволяло сопоставлять их между собой по типу системы.

Анализ стабильности эмульсий. Изготовленные экспериментальные образцы вакцин исследовали на стабильность эмульсий экспресс-методом. Как следует из таблицы 3, при центрифугировании опытных образцов № 1, 2 и 3 отмечали отделение небольшого количества масляной фазы (5%), что являлось приемлемым показателем для масляных эмульсий. Выделения антигенной (водной) фазы в препарате с VITAVAC 70 не наблюдалось. Вакцины, содержащие VITAVAC 50 и VITAVAC 250, характеризовались более выраженной склонностью к образованию опалесцирующего масляного слоя и частичному выделению водной фазы, что может быть связано с особенностями состава данных адъювантов.

Таблица 3

Стабильность образцов экспериментальных противоящурных вакцин, приготовленных с применением масляных адъювантов VITAVAC 50, 70, 250 (экспресс-метод)

Table 3

Stability of experimental FMD vaccine samples formulated with VITAVAC 50, 70, 250 oil adjuvants (accelerated aging method)

Наименование образца эмульсии

Наименование адъюванта

Доля фракций, %

A

B

C

D

E

Контроль 1

Montanide ISA 206 VG

5

0

95

0

0

Контроль 2

Montanide ISA 61 VG

0

0

100

0

0

Опыт 1

VITAVAC 250

5

20

65

0

10

Опыт 2

VITAVAC 50

5

5

80

0

10

Опыт 3

VITAVAC 70

5

0

95

0

0

Возможные фракции после центрифугирования эмульсии: А – масло, B – опалесцирующий слой (масло с белым оттенком), C – собственно эмульсия, D – коалесцент (плотная эмульсия), E – антигенная составляющая вакцины (водная фракция).

Potential fractions observed after centrifugation: A – oil, B – opalescent layer (creamy oil), C – emulsion, D – coalescent layer (dense emulsion), E – antigenic component (aqueous fraction).

Стабильность эмульсий также определяли при хранении изготовленных экспериментальных образцов вакцин при температурах (4 ± 2), (20 ± 2) и (37,0 ± 0,1) °C в течение 18 мес. Установили, что опытный образец № 1, изготовленный с применением масляного адъюванта VITAVAC 250, через 1 мес. хранения при температуре (4 ± 2) °С оставался в стабильном состоянии при выделении А-фазы в количестве 5%. При температуре (20 ± 2) °С отмечали расслоение на масляную составляющую (5%) и опалесцирующий слой (20%), при этом антигенная фаза не выделялась. Хранение в течение 1 мес. данной эмульсии при температуре (37,0 ± 0,1) °С вызывало отделение А- и В-фаз в том же количестве, а также дополнительно появлялась антигенная составляющая (E-фаза) в количестве 7%. Спустя 18 мес. хранения при температуре (4 ± 2) °С отмечали выделение антигенной фазы на 30%, что являлось критичным по признаку стабильности эмульсии.

При температурах (4 ± 2) и (20 ± 2) °С после окончания периода наблюдения в опытном образце № 2, содержащем масляный адъювант VITAVAC 50, отделялась масляная фракция в количестве 5%. E-фаза не выделялась. При температуре (37,0 ± 0,1) °С также отмечали появление А-фазы в количестве 5% и отделение антигенной составляющей (30%), что не являлось критичным, поскольку данная температура не предназначена для хранения вакцинного препарата.

Опытный образец № 3, содержащий масляный адъювант VITAVAC 70, спустя 18 мес. хранения при всех заявленных выше температурах сохранялся в стабильном состоянии при выделении А-фазы в количестве 5%, что абсолютно не критично. Антигенная фаза не выделялась, эмульсия сохраняла свою стабильность.

Таким образом, при длительном хранении (18 мес.) с применением различных температурных режимов наилучшими показателями стабильности эмульсии отличался препарат, содержащий VITAVAC 70: эмульсия сохраняла однородность, отделение масляной фазы не превышало ~ 5%, антигенная фаза визуально не выделялась.

Для эмульсий с VITAVAC 50 и VITAVAC 250 в ряде случаев отмечали более выраженное расслоение, включая отделение значительного объема водной фазы при повышенных температурах хранения, что может ограничивать их применение без дополнительной оптимизации технологических параметров. Масляный адъювант VITAVAC 70 в составе исследуемых вакцин против ящура, изготовленных на основе вируса серотипов SAT 1 и SAT 2, продемонстрировал оптимальное сочетание реологических свойств и стабильности эмульсии в широком диапазоне температур хранения.

Определение безопасности экспериментальных образцов вакцин. Реактогенность экспериментальных образцов вакцин, изготовленных с применением указанных выше масляных адъювантов, исследовали на свиньях, которых наблюдали в течение 10 сут после иммунизации, оценивая общее состояние, аппетит, поведение, температуру тела и наличие реакций в месте инъекции.

Во всех группах свиней после однократного введения вакцин как в стандартной, так и в тройной дозе не наблюдали формирования олеогранулем и других выраженных местных реакций в области инъекции. Температура тела животных в первые сутки после вакцинации кратковременно повышалась до (40,4 ± 0,2) °C, что расценивалось как физиологическая реакция организма на введение инактивированной вакцины и отмечалось во всех группах, включая контрольные. В дальнейшем температурные показатели снижались до физиологической нормы, поведение и аппетит животных оставались удовлетворительными (рис. 1).

Рис. 1. Температура тела свиней при введении экспериментальных образцов эмульсионных вакцин против ящура, изготовленных с применением различных масляных адъювантов (n = 3, Mean ± SD, p < 0,01)

Fig. 1. Body temperature of pigs after administration of experimental FMD emulsion vaccine samples, formulated using various oil adjuvants (n = 3, Mean ± SD, p < 0.01)

Таким образом, по результатам проведенных исследований все варианты вакцин с применением масляных адъювантов VITAVAC и Montanide ISA могут быть охарактеризованы как безвредные для свиней при однократном введении.

Исследование гуморального иммунитета. Проводили сравнение уровня гуморального иммунитета свиней после введения пяти экспериментальных образцов эмульсионных вакцин, изготовленных с применением указанных выше масляных адъювантов.

Результаты исследования сывороток крови в РМН отражены в таблице 4 и на рисунке 2. Из них следует, что на 21-е сут после иммунизации свиней формирование специфических вируснейтрализующих антител к вирусу ящура штаммов «SAT-1/Кения/2017» и «SAT-2/LIB/39/2012» наблюдали во всех опытных и контрольных группах. При этом уровни вируснейтрализующих антител и их распределение по группам различались.

Таблица 4

Уровень специфических антител в РМН после иммунизации свиней противоящурными вакцинами, изготовленными с применением различных адъювантов (n = 3, Mean ± SD, p < 0,01)

Table 4

Specific antibody levels (MNT) following immunization of pigs with FMD vaccines containing various oil adjuvants (n = 3, Mean ± SD, p < 0.01)

Наименование образца

Наименование адъюванта

Номер животного

Уровень специфических вируснейтрализующих антител в РМН, lg SN50

0 СПВ

21 СПВ

SAT 1

SAT 2

SAT 1

SAT 2

Контроль 1

Montanide

ISA 206 VG

1

< 0,5

< 0,5

1,875

1,650

2

< 0,5

< 0,5

1,875

1,650

3

< 0,5

< 0,5

2,025

1,950

4

< 0,5

< 0,5

1,950

1,875

Mean ± SD

< 0,5

< 0,5

1,931 ± 0,072

1,781 ± 0,155

5*

< 0,5

< 0,5

2,550

2,550

6*

< 0,5

< 0,5

2,625

2,550

Контроль 2

Montanide

ISA 61 VG

7

< 0,5

< 0,5

1,725

1,650

8

< 0,5

< 0,5

2,025

1,950

9

< 0,5

< 0,5

2,025

2,025

10

< 0,5

< 0,5

2,025

2,025

Mean ± SD

< 0,5

< 0,5

1,950 ± 0,150

1,913 ± 0,179

11*

< 0,5

< 0,5

3,000

2,625

12*

< 0,5

< 0,5

3,000

2,625

Опыт 1

VITAVAC 250

13

< 0,5

< 0,5

1,650

1,500

14

< 0,5

< 0,5

1,650

1,650

15

< 0,5

< 0,5

1,500

1,500

16

< 0,5

< 0,5

1,500

1,650

Mean ± SD

< 0,5

< 0,5

1,575 ± 0,087

1,575 ± 0,087

17*

< 0,5

< 0,5

2,475

2,475

18*

< 0,5

< 0,5

2,550

2,475

Опыт 2

VITAVAC 50

19

< 0,5

< 0,5

1,350

1,500

20

< 0,5

< 0,5

1,500

1,500

21

< 0,5

< 0,5

1,350

1,350

22

< 0,5

< 0,5

1,500

1,500

Mean ± SD

< 0,5

< 0,5

1,425 ± 0,087

1,463 ± 0,075

23*

< 0,5

< 0,5

2,100

2,250

24*

< 0,5

< 0,5

2,250

2,250

Опыт 3

VITAVAC 70

25

< 0,5

< 0,5

1,725

1,725

26

< 0,5

< 0,5

1,800

1,800

27

< 0,5

< 0,5

1,800

1,725

28

< 0,5

< 0,5

1,800

1,725

Mean ± SD

< 0,5

< 0,5

1,781 ± 0,038

1,744 ± 0,038

29*

< 0,5

< 0,5

2,550

2,625

30*

< 0,5

< 0,5

2,625

2,400

СПВ – сутки после вакцинации (day post vaccination), Mean – среднее, SD – стандартное отклонение (standard deviation), p – уровень значимости (significance level), РМН – реакция микронейтрализации (micro-neutralization test), SAT 1 – штамм «SAT-1/Кения/2017» (SAT-1/Kenya/2017 strain), SAT 2 – штамм «SAT-2/LIB/39/2012» (SAT-2/LIB/39/2012 strain);
* исследование вакцины на безвредность (vaccine safety testing).

Рис. 2. Уровень вируснейтрализующих антител к вирусу ящура серотипов SAT 1 и SAT 2 на 21-е сут после введения экспериментальных образцов эмульсионных вакцин, изготовленных с применением различных масляных адъювантов (n = 3, Mean ± SD, p < 0,01)

Fig. 2. Virus-neutralizing antibody levels against FMDV serotypes SAT 1 and SAT 2 at 21 dpv in pigs immunized with experimental emulsion vaccines formulated with various oil adjuvants (n = 3, Mean ± SD, p < 0.01)

Введение в организм свиней эмульсионной вакцины, изготовленной с применением масляного адъюванта VITAVAC 250 (опытный образец № 1), на 21-е сут после иммунизации стимулировало выработку вируснейтрализующих антител с титрами выше пороговых значений, рекомендованных ВОЗЖ. Средние титры вируснейтрализующих антител против вируса ящура штаммов «SAT-1/Кения/2017» и «SAT-2/LIB/39/2012» составляли по (1,575 ± 0,087) lg SN50, что позволяло рассматривать данный вариант как обеспечивающий удовлетворительный уровень специфической защиты. При этом значения титров вируснейтрализующих антител были ниже по сравнению с контролем № 1 для штаммов «SAT-1/Кения/2017» и «SAT-2/LIB/39/2012» в 2,3 и 1,6 раза соответственно.

Эмульсионная вакцина, содержащая масляный адъювант VITAVAC 50, обеспечивала положительный иммунный ответ, однако средние титры вируснейтрализующих антител были ниже по сравнению с эмульсионной вакциной, содержащей Montanide ISA 61 VG, и с другими вариантами вакцин с VITAVAC. Так, масляный адъювант VITAVAC 50 стимулировал выработку антител против антигена вируса ящура штаммов «SAT-1/Кения/2017» и «SAT-2/LIB/39/2012» в сравнении с контролем № 2 ниже в 3,3 и 2,8 раза; по сравнению с VITAVAC 250 – ниже в 1,4 и 1,3 раза; в сравнении с VITAVAC 70 – ниже в 2,3 и 1,9 раза соответственно.

Наибольший уровень антител у животных опытных групп выявлен в группе № 3, которую иммунизировали экспериментальным образцом вакцины, в состав которой входил масляный адъювант VITAVAC 70.

Во всех группах при введении тройной дозы эмульсионной вакцины отмечали более высокие уровни вируснейтрализующих антител по сравнению со стандартной дозой, что соответствовало общим закономерностям дозозависимой стимуляции иммунного ответа вакцинными препаратами.

Сопоставление данных по стабильности эмульсий, их безопасности и иммуногенности показало, что масляный адъювант VITAVAC 70 обладал оптимальным комплексом характеристик. При анализе культуральных инактивированных эмульсионных вакцин адъюванты VITAVAC 250 и 50 уступали продукту VITAVAC 70 по стабильности эмульсии, а также по уровню выработки вируснейтрализующих антител. Все исследуемые адъюванты позволяли получить эмульсионные вакцинные препараты с заявленным типом эмульсии, которые являлись безвредными для свиней. При этом следует отметить, что VITAVAC 250 и 50 нуждаются в дополнительной оптимизации состава и режима эмульгирования для достижения высоких показателей стабильности эмульсии и иммуногенности вакцин.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

По результатам исследования физико-химических свойств экспериментальных образцов культуральных инактивированных эмульсионных вакцин, изготовленных с применением масляных адъювантов VITAVAC 50, 70 и 250 (Индия), выявлено, что наилучшие показатели стабильности при хранении в широком диапазоне температур продемонстрировала вакцина, в состав которой входил адъю-вант VITAVAC 70: при испытании не отмечено выделения антигенной фазы и значимого расслоения.

Определено, что масляные адъюванты VITAVAC 50, 70 и 250 могут быть использованы для изготовления культуральных инактивированных эмульсионных вакцин против ящура, обеспечивая формирование эмульсий с удовлетворительными реологическими характеристиками и безвредность препаратов для свиней при однократном введении тройного прививного объема вакцины.

Выявлено, что вакцины, содержащие масляные адъюванты VITAVAC 70 и VITAVAC 250, обеспечивали формирование вируснейтрализующих антител к вирусу ящура штаммов «SAT-1/Кения/2017» и «SAT-2/LIB/39/2012» с титром выше 1,65 lg SN50. При этом в опытной группе с применением масляного адъюванта VITAVAC 70 титры антител в РМН были наибольшими по сравнению с другими адъювантами VITAVAC.

Установлено, что вакцина, содержащая масляный адъювант VITAVAC 50, не обеспечивала формирования вируснейтрализующих антител в достаточном количестве для защиты от ящура по сравнению с другими исследованными вариантами и, вероятно, требует доработки технологических параметров применения (концентрация, режим эмульгирования и др.).

Совокупность полученных данных позволяет рассматривать VITAVAC 70 как наиболее перспективный адъювант для использования при промышленном производстве инактивированных эмульсионных вакцин против ящура для свиней, сопоставимый по ряду показателей с традиционно применяемыми масляными адъювантами Montanide ISA 206 VG и Montanide ISA 61 VG.

Вклад авторов: Кара Д. И. – проведение исследований, анализ и интерпретация полученных данных, подготовка рисунков; Доронин М. И. – формирование идеи, формулировка и развитие ключевых целей и задач, проведение исследований, анализ и интерпретация полученных данных, подготовка и редактирование текста, принятие ответственности за все аспекты работы, целостность всех частей статьи и за ее окончательный вариант; Борисов А. В. – научное консультирование, редактирование текста статьи; Михалишин Д. В. – научное консультирование; Михалишин В. В. – научное консультирование; Гусева М. Н. – сбор статистических данных; Жбанова Т. В. – статистический анализ; Оковытая Т. В. – подготовка рисунков и редактирование текста.

Contribution of the authors: Kara D. I. – investigation, data analysis and interpretation, visualization; Doronin M. I. – conceptualization, methodology, investigation, formal analysis, writing of original draft, paper review & editing, supervision, project administration; Borisov A. V. – scientific consultation, paper editing; Mikhalishin D. V. – scientific consultation; Mikhalishin V. V. – scientific consultation; Guseva M. N. – statistical data collection; Zhbanova T. V. – statistical analysis; Okovytaya T. V. – visualization, paper editing.

Список литературы

1. Arzt J., Sanderson M. W., Stenfeldt C. Foot-and-mouth disease. Veterinary Clinics of North America: Food Animal Practice. 2024; 40 (2): 191–203. https://doi.org/10.1016/j.cvfa.2024.01.001

2. Родина Э. В., Родин В. Н., Боряева Ю. А. Регионализация и современная эпизоотическая ситуация по ящуру животных. Международный научно-исследовательский журнал. 2025; (11). https://doi.org/10.60797/IRJ.2025.161.67

3. Bouguedour R., Ripani A. Review of the foot and mouth disease situation in North Africa and the risk of introducing the disease into Europe. Revue Scientifique et Technique. 2016; 35 (3): 757–768. https://doi.org/10.20506/rst.35.3.2566

4. Dhikusooka M. T., Ayebazibwe C., Namatovu A., Belsham G. J., Siegismund H. R., Wekesa S. N., et al. Unrecognized circulation of SAT 1 foot-andmouth disease virus in cattle herds around Queen Elizabeth National Park in Uganda. BMC Veterinary Research. 2016; 12:5. https://doi.org/10.1186/s12917-015-0616-1

5. Fana E. M., Mpoloka S. W., Leteane M., Seoke L., Masoba K., Mokopasetso M., et al. A five-year retrospective study of foot-and-mouth disease outbreaks in Southern Africa, 2014 to 2018. Veterinary Medicine International. 2021; 2021:7438809. https://doi.org/10.1155/2021/7438809

6. Jo H.-E., You S.-H., Choi J.-H., Ko M.-K., Shin S. H., Song J., et al. Evaluation of novel inactivated vaccines for the SAT 1, SAT 2 and SAT 3 serotypes of foot-and-mouth disease in pigs. Virology Journal. 2019; 16 (1):156. https://doi.org/10.1186/s12985-019-1262-1

7. Ularamu H. G., Lefebvre D. J., Haegeman A., Wungak Y. S., Ehizibolo D. O., Lazarus D. D., et al. Complex circulation of foot-and-mouth disease virus in cattle in Nigeria. Frontiers in Veterinary Science. 2020; (7):466. https://doi.org/10.3389/fvets.2020.00466

8. Kabelo T. I., Fana E. M., Hyera J. M., Lebani K. A review of foot-andmouth disease status and control measures in Botswana. Tropical Animal Health and Production. 2023; 55 (4):278. https://doi.org/10.1007/s11250-023-03674-5

9. Wasfy M., Bazid A. H., Nayel M., Ata E. B., Elfeil W. K., Attia M., Elsayed M. Immunogenicity of a foot-and-mouth disease (FMD) vaccine against serotypes O, A, SAT-2, and Asia-1 in the Middle East and many parts of Africa, Southeast Asia and Europe. Virology Journal. 2025; 22 (1):98. https://doi.org/10.1186/s12985-025-02698-7

10. Kardjadj M. History of foot-and-mouth disease in North African countries. Veterinaria Italiana. 2018; 54 (1): 1–12. https://doi.org/10.12834/vetit.928.4711.2

11. Лозовой Д. А., Рахманов А. М., Михалишин Д. В., Михалишин В. В., Гуленкин В. М. Экономическая целесообразность использования эмульсионных вакцин против ящура в России в современных условиях. Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК: материалы Международной научно-практической конференции, посвященной 50-летию института (Щелково, 25–27 сентября 2019 г.). М.: ФГБНУ «ВНИТИБП»; 2019; 59–64. https://elibrary.ru/glunot

12. Пиголева И. В., Шарыпов А. С., Шабалина Т. Н., Заглядова С. В., Китова М. В., Антонов С. А. и др. Испытания эмульсионных вакцин на основе белых масел, полученных гидрокаталитической переработкой нефтяного сырья. Ветеринария сегодня. 2017; (4): 42–48. https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/332

13. Akache B., Stark F. C., Agbayani G., Renner T. M., McCluskie M. J. Adjuvants: engineering protective immune responses in human and veterinary vaccines. Methods in Molecular Biology. 2022; 2412: 179–231. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1892-9_9

14. Михалишин Д. В., Елькина Ю. С., Гочмурадов Ы. М., Доронин М. И., Гусева М. Н. Эффективный способ ликвидации вспышек ящура. Ветеринария. 2025; (1): 10–14. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2025.28.1.10-14

15. Zhou Y., Yin W., Teng Z., Zhao Y., Lu Y., Qian Y., Deng B. Enhanced immunogenicity of foot-and-mouth disease virus-like particles using a waterin-oil-in-water adjuvant. Vaccines. 2024; 13 (1):24. https://doi.org/10.3390/vaccines13010024

16. Jones L. S., Peek L. J., Power J., Markham A., Yazzie B., Middaugh C. R. Effects of adsorption to aluminum salt adjuvants on the structure and stability of model protein antigens. Journal of Biological Chemistry. 2005; 280 (14): 13406–13414. https://doi.org/10.1074/jbc.M500687200

17. Aucouturier J., Dupuis L., Ganne V. Adjuvants designed for veterinary and human vaccines. Vaccine. 2001. 19 (17–19): 2666–2672. https://doi.org/10.1016/s0264-410x(00)00498-9

18. Стариков В. А., Михалишин Д. В., Лёзова Т. Н., Михалишин В. В. Сравнительное изучение активности сорбированных и эмульсионных вакцин для крупного рогатого скота. Ветеринария. 2015; (3): 21–26. https://elibrary.ru/rppxsc

19. Brito L. A., Malyala P., O’Hagan D. T. Vaccine adjuvant formulations: a pharmaceutical perspective. Seminars in Immunology. 2013; 25 (2): 130–145. https://doi.org/10.1016/j.smim.2013.05.007

20. Shi S., Zhu H., Xia X., Liang Z., Ma X., Sun B. Vaccine adjuvants: understanding the structure and mechanism of adjuvanticity. Vaccine. 2019; 37 (24): 3167–3178. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2019.04.055

21. Singh R. K., Sharma G. K., Mahajan S., Dhama K., Basagoudanavar S. H., Hosamani M., et al. Foot-and-mouth disease virus: immunobiology, advances in vaccines and vaccination strategies addressing vaccine failures – an Indian perspective. Vaccines. 2019; 7 (3):90. https://doi.org/10.3390/vaccines7030090

22. Charerntantanakul W. Adjuvants for swine vaccines: mechanisms of actions and adjuvant effects. Vaccine. 2020; 38 (43): 6659–6681. https://doi.org/10.1016/j.vaccine.2020.08.054

23. Foot and mouth disease (infection with foot and mouth disease virus). In: WOAH. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals. Chapter 3.1.8. https://www.woah.org/fileadmin/Home/fr/Health_standards/tahm/3.01.08_FMD.pdf

24. Михалишин Д. В., Михалишин В. В., Гочмурадов Ы. М., Елькина Ю. С. Инактивация вируса ящура для изготовления вакцин. Ветеринария сегодня. 2023; 12 (2): 164–170. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2023-12-2-164-170

25. Stumpf M. P. H. Biology challenging statistics. Statistical Applications in Genetics and Molecular Biology. 2018; 17 (4):20180048. https://doi.org/10.1515/sagmb-2018-0048

26. Viari A. Big data in biology. Médecine Sciences. 2012; 28 (12): 1027-1028. https://doi.org/10.1051/medsci/20122812001


Об авторах

Д. И. Кара
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Кара Дмитрий Игоревич, аспирант, ветеринарный врач лаборатории профилактики ящура

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



М. И. Доронин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Доронин Максим Игоревич, д-р биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории профилактики ящура

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



А. В. Борисов
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Борисов Алексей Валерьевич, канд. вет. наук, заведующий лабораторией профилактики ящура

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



Д. В. Михалишин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Михалишин Дмитрий Валерьевич, д-р вет. наук, 
главный эксперт информационно-аналитического центра

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



В. В. Михалишин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Михалишин Валерий Васильевич, д-р вет. наук, профессор,
главный научный сотрудник информационно-аналитического
центра ФГБУ  «ВНИИЗЖ», г.  Владимир, Россия; 



М. Н. Гусева
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Гусева Марина Николаевна, канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории профилактики ящура

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



Т. В. Жбанова
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Жбанова Татьяна Валентиновна, канд. вет. наук, младший научный сотрудник отдела образования и научной информации

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



Т. В. Оковытая
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Оковытая Татьяна Владимировна, канд. биол. наук, старший научный сотрудник лаборатории профилактики ящура

ул. Гвардейская, 6, мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901



Рецензия

Для цитирования:


Кара Д.И., Доронин М.И., Борисов А.В., Михалишин Д.В., Михалишин В.В., Гусева М.Н., Жбанова Т.В., Оковытая Т.В. Сравнительный анализ свойств масляных адъювантов компании VITAVAC в составе инактивированных вакцин против ящура. Ветеринария сегодня. 2026;15(2):139-147. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-2-139-147

For citation:


Kara D.I., Doronin M.I., Borisov A.V., Mikhalishin D.V., Mikhalishin V.V., Guseva M.N., Zhbanova T.V., Okovytaya T.V. Comparative analysis of VITAVAC oil adjuvants formulated in inactivated foot-and-mouth disease vaccines. Veterinary Science Today. 2026;15(2):139-147. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-2-139-147

Просмотров: 64

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)