Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

Патоморфологические, бактериологические и вирусологические особенности пневмоний у обезьян, содержащихся в неволе

https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-1-28-37

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Введение. В ветеринарии проблема возникновения и лечения респираторных инфекций актуальна в связи с высоким уровнем заболеваемости среди разных видов животных. У обезьян, содержащихся в условиях неволи, пневмонии, наряду с желудочно-кишечными заболеваниями, являются одной из главных причин гибели.

Цель исследования. Изучение заболеваемости обезьян пневмонией, анализ спектра легочной микрофлоры, изучение патоморфологических изменений в легочной ткани.

Материалы и методы. При изучении 1862 случаев гибели обезьян патоморфологические, микроскопические и бактериологические исследования
проводили по общепринятым методикам. Выявление возбудителей острых респираторных вирусных инфекций и антител к ним осуществляли
методами полимеразной цепной реакции и иммуноферментного анализа при исследовании образцов легких и сывороток крови от 126 обезьян,
погибших с диагнозом «пневмония» в 2021–2024 гг.

Результаты. У 865 обезьян postmortem поставлен диагноз «пневмония» (46,5%). Гибель от пневмоний малышей первого месяца жизни приближается к 100%. У детенышей возрастом до одного года показатель смертности составляет 65,4%. Полученные данные свидетельствуют о высокой частоте заболевания в этих возрастных группах. Гибель обезьян от пневмоний регистрируется на протяжении всего года. На основании патолого-анатомических исследований установлено, что чаще возникает двусторонняя полисегментарная бронхопневмония, реже – долевая фибринозная пневмония с развитием воспалительного процесса в правом легком. При микроскопическом исследовании в просвете бронхов выявляются гнойные экссудаты и кокковая микрофлора. Среди бактерий, выделенных из ткани легких, наибольший процент составляют энтеробактерии (58,5%) и грамположительные кокки (36,6%). Спектр выделенных видов микроорганизмов разнообразный, но в большинстве случаев представлен кишечными бактериями: Escherichia coli (66,1%), Enterococcus spp. (27,5%), Proteus spp. (31,5%). Из возможных бактериальных возбудителей пневмоний обнаружены Staphylococcus aureus (31,5%), Klebsiella pneumoniae (2,2%), Pseudomonas aeruginosa (0,8%), Streptococcus pneumoniae (0,6%). В стаде обезьян также циркулируют аденовирусы, вирусы парагриппа человека типа 1 и 3 и респираторно-синцитиальный вирус.

Заключение. При анализе возможной роли микроорганизмов в развитии пневмоний у обезьян необходимо учитывать, что у большинства животных заболевание развивалось на фоне патологий желудочно-кишечного тракта и при сниженном иммунитете.

Для цитирования:


Калашникова В.А., Радомская Е.Ю., Булгин Д.В., Полякова В.И., Догадов Д.И., Демерчян А.В., Щербак Н.В., Чуканов Д.В., Гончаренко А.М., Миносян А.А., Аршба И.М. Патоморфологические, бактериологические и вирусологические особенности пневмоний у обезьян, содержащихся в неволе. Ветеринария сегодня. 2026;15(1):28-37. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-1-28-37

For citation:


Kalashnikova V.A., Radomskaya E.Yu., Bulgin D.V., Polyakova V.I., Dogadov D.I., Demerchyan A.V., Shcherbak N.V., Chukanov D.V., Goncharenko A.M., Minosyan A.A., Arshba I.M. Pathomorphological, bacteriological and virological features of pneumonia in captive monkeys. Veterinary Science Today. 2026;15(1):28-37. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-1-28-37

ВВЕДЕНИЕ

В ветеринарной практике проблема возникновения и лечения пневмоний актуальна в связи с высоким уровнем заболеваемости среди диких, домашних, сельскохозяйственных животных (кошки, собаки, крупный рогатый скот, свиньи, лошади и др.) и птиц. В основном пневмониями заболевают детеныши и молодые животные, при этом частота и тяжесть заболевания зависит от условий содержания, стресса, численности животных, их иммунного статуса, рациона питания, климата и техники производства, а также коинфекции различными патогенами [1][2][3][4][5][6][7][8][9][10][11]. У домашних животных заболеванию часто подвержены взрослые и пожилые особи [4][5][6].

Низшие обезьяны также чувствительны к большинству патогенов человека, поэтому на них легко воспроизвести в сходной форме некоторые инфекционные заболевания людей [12]. В последние десятилетия в связи с резким сокращением популяций обезьян в местах естественного обитания и запретом отлова основным источником лабораторных приматов стали питомники, осуществляющие их разведение. Животные, содержащиеся в неволе, в большинстве случаев подвержены кишечным и респираторным заболеваниям. Одно из ведущих мест в заболеваемости занимает пневмония, часто приводящая к гибели животных [13][14][15]. Пневмония развивается как самостоятельный процесс, а также встречается в виде сопутствующего (вторичного) при желудочно-кишечных заболеваниях (острые или хронические гастриты и гастроэнтероколиты) [12][16]. Кроме того, пневмония часто возникает среди особей, недавно завезенных из мест естественного обитания и проходящих акклиматизацию [17][18].

Легкие – сложная экосистема с большим числом разнообразных микроорганизмов, взаимодействующих как между собой, так и с организмом хозяина [18][19]. Существует взаимосвязь между микробиомом легких, ротоглотки и кишечника, которая влияет на развитие кишечных и легочных заболеваний (метаболические, иммунные и другие процессы). Происходит постоянная миграция микроорганизмов между ротоглоткой, верхними и нижними дыхательными путями, в связи с чем микробиом легких непрерывно изменяется. Доминирующая популяция и численность микробиома различны в здоровых и патологически измененных органах. На основании этой концепции инфекционные поражения легких рассматриваются как нарушение баланса присутствующих микробов, при этом от межмикробных взаимодействий зависит течение и исход пневмонии [19].

Важным этапом в диагностике пневмонии является выделение из дыхательного тракта и идентификация инфекционных агентов (бактерий, вирусов, грибов), принимающих участие в развитии инфекционного процесса [2][20]. По литературным данным, менее 10% случаев пневмоний описывают как полимикробные, а в более 50% случаев этиологические агенты пневмоний у обезьян являются неустановленными [19]. Наиболее частыми причинами возникновения пневмоний у обезьян разных видов, содержащихся в неволе, по сведениям из литературных источников, являются Streptococcus spp., реже – Klebsiella pneumoniae, Staphylococcus aureus и другие бактерии (Pseudomonas aeruginosa, Escherichia coli, Enterococcus spp., Morganella morganii) [21][22][23][24][25]. Ранее сотрудниками Курчатовского комплекса медицинской приматологии (ККМП) НИЦ «Курчатовский институт» была показана причастность возбудителя парагриппа человека 3‑го типа к патологии респираторного тракта павианов анубисов [26].

Актуальность проведенной работы состоит в том, что патологии респираторного тракта в этиологической структуре заболеваний у обезьян занимают доминирующую позицию и являются одной из главных причин гибели животных в неволе.

Новизна полученных данных заключается в обобщении результатов мониторинга гибели от пневмонии обезьян, содержащихся в условиях питомника (ранее подобные исследования в России не проводились). В связи с этим представляет интерес не только выявление бактериальной микрофлоры в легких погибших животных, изучение серологических и молекулярно-генетических маркеров острых респираторных вирусных инфекций (ОРВИ), но также описание особенностей патологически измененных легких.

Цель исследования – изучение видовой и возрастной структуры заболеваемости обезьян пневмонией, анализ спектра легочной микрофлоры, изучение патоморфологических изменений в легочной ткани.

МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ

Животные. В период с января 2019 по декабрь 2024 г. было изучено 1862 случая гибели обезьян разных видов от спонтанных заболеваний. Все животные содержались в питомнике ККМП НИЦ «Курчатовский институт». Погибшие самцы (n = 726) и самки (n = 1136) обезьян были в возрасте от новорожденности до 38 лет (табл. 1).

Таблица 1

Характеристика возрастных групп погибших обезьян

Table 1

Characterization of dead monkeys by age groups

Вид обезьян

Возрастные группы

Всего

до 1 мес.

до 11 мес.

1–3 года

4–10 лет

11–15  лет

16+ лет

Макак-резус

(Macaca mulatta)

52

45

116

176

86

129

604

Макак яванский

(Macaca fascicularis)

73

32

78

148

76

94

501

Макак лапундер

(Macaca nemestrina)

15

5

2

8

6

17

53

Африканская зеленая мартышка

(Chlorocebus aethiops ssp.)

11

7

7

18

14

18

75

Павиан анубис

(Papio anubis)

30

13

27

40

21

20

151

Павиан гамадрил

(Papio hamadryas)

109

49

47

110

58

71

444

Другие виды

5

2

7

9

3

8

34

Всего

295

153

284

509

264

357

1862

Патолого-анатомическое и микроскопическое исследования. Вскрытие тел умерших животных проводили в прозектуре лаборатории патологической анатомии ККМП. Для выявления патологических изменений исследовали внутренние органы и ткани погибших животных. При обнаружении макроскопических признаков воспаления легких образцы ткани отбирались для гистологического анализа. Образцы фиксировали в 10%-м нейтральном (рН 7,4) растворе формалина, далее проводили стандартную гистологическую обработку материала с последующей заливкой в парафиновую среду Histomix (ООО «БиоВитрум», Россия). Из полученных парафиновых блоков приготавливали гистологические срезы толщиной 4 мкм, которые окрашивали гематоксилином Ганзена (железотригематеиновый способ с квасцовым гематоксилином Ганзена / F. C. Ch. Hansen) и эозином, а также пикрофуксином по Ван Гизону (Van Gieson’s stain) [27].

Обзорный морфологический анализ (микроскопическое исследование) выполнен на биологическом микроскопе для лабораторных исследований Axiolab.A1 (Carl Zeiss Microscopy GmbH, Германия). Для микрофотографирования использовали цифровую камеру Axiocam 105 color (Carl Zeiss Microscopy GmbH, Германия).

Бактериологическое исследование проводили по общепринятой методике: делали мазок-отпечаток легкого на предметном стекле, окрашивали по Граму и производили посев на диагностические питательные среды с последующей биохимической идентификацией выросших колоний микроорганизмов, как описано ранее [28].

Вирусологическое исследование. В работе использованы сыворотки крови и образцы легких от 126 обезьян, погибших с диагнозом «пневмония» в 2021–2024 гг., из них: 48 – макаки-резусы, 22 – макаки яванские, 7 – зеленые мартышки, 38 – павианы гамадрилы и 11 – павианы анубисы. Суспензию из легких готовили с помощью гомогенизатора Minilys (Bertin Technologies, Франция) в соотношении 5–6 г материала на 1 мл 0,1М Na-фосфатного буфера с pH 7,4; центрифугировали 30 мин при 3000 об/мин на холодовой центрифуге Allegra (Beckman Coulter, США) для удаления осадка. Полученный 10%‑й супернатант применяли в дальнейшем исследовании.

Для детекции антител класса IgG, IgM и IgA к вирусу парагриппа типов 1 и 3, респираторно-синцитиальному вирусу (РСВ) и аденовирусу применяли тест-системы производства АО «ЭКОлаб» (Россия). Результаты иммуноферментного анализа (ИФА) учитывали на спектрофотометре лабораторном Immunochem-2100 (High Technology Inc., США) с использованием фильтра с длиной волны 450 нм. Реактивность сывороток в отношении респираторных вирусов оценивали по значениям ОП450 (оптическая плотность исследуемых образцов сывороток при длине волны 450 нм в ИФА). Результаты интерпретировали в соответствии с инструкциями производителя.

Выделение нуклеиновых кислот производили из полученного 10%‑го легочного супернатанта с использованием набора «РИБО-преп» (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия) согласно инструкции производителя. Комплементарные ДНК синтезировали на матрице суммарной РНК с использованием набора реагентов «Реверта-L» (ФБУН ЦНИИ Эпидемиологии Роспотребнадзора, Россия) в соответствии с инструкцией производителя. Полученные кДНК амплифицировали с использованием набора ПЦР-Real Time «АмплиСенс® ОРВИ-скрин-FL» для выявления возбудителей острых респираторных вирусных инфекций (РСВ; метапневмовирус; вирус парагриппа 1, 2, 3 и 4‑го типов; коронавирус; риновирус; аденовирус групп B, C и Е; бокавирус) согласно инструкции производителя. Проведение амплификации и анализ результатов осуществляли с помощью прибора Rotor-Gene Q (QIAGEN GmbH, Германия).

Статистическая обработка данных. Статистическую обработку и подсчет данных осуществляли при помощи программы GraphPadPrism 8. Для определения изменений частотных показателей в зависимости от года исследования или возраста применяли тренд-тест на основе критерия χ2 (критерий согласия Пирсона). Все различия интерпретировали как достоверные при р < 0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

По результатам патолого-анатомических исследований за шестилетний период было выявлено 865 случаев пневмонии (табл. 2), что составило 46,5% от общего числа погибших животных. Пневмонию у самцов выявляли чаще, чем у самок (52,8 и 42,4% соответственно). Смертность от заболевания у разных видов обезьян приблизительно одинаковая, за исключением павианов гамадрилов и макаков лапундеров. У этих видов обезьян пневмония явилась причиной смерти более 50% животных от общего числа погибших.

Таблица 2

Характеристика погибших обезьян с диагнозом «пневмония»

Table 2

Characterization of fatal pneumonia cases in monkeys

Вид обезьян

Количество/%

всего

самки

самцы

Макак-резус

249/41,2

156/40,7

93/42,1

Макак яванский

221/44,1

129/39,5

92/52,9

Макак лапундер

33/62,3

21/70,0

12/52,2

Африканская зеленая мартышка

32/42,7

22/44,0

10/40,0

Павиан анубис

74/49,0

37/40,2

37/62,7

Павиан гамадрил

236/53,2

109/45,8

127/61,7

Другие виды

20/58,8

8/50,0

12/66,7

Всего

865/46,5

482/42,4

383/52,8

Согласно полученным данным, наиболее высокую смертность от пневмоний наблюдали у обезьян в первый месяц жизни (табл. 3).

Таблица 3

Характеристика возрастных групп обезьян, погибших с диагнозом «пневмония»

Table 3

Characterization of monkeys died of pneumonia by age groups

Вид обезьян

Возрастные группы

p, χ² for trend*

до 1 мес.

до 11 мес.

1–3 года

4–10 лет

11–15 лет

16+ лет

кол-во

%

кол-во

%

кол-во

%

кол-во

%

кол-во

%

кол-во

%

Макак-резус

47

90,4

25

55,6

46

39,7

62

35,2

24

27,9

45

34,9

0,0005↑↓

Макак яванский

72

98,6

22

68,8

22

28,2

41

27,7

23

30,3

41

43,6

0,7675

Макак лапундер

14

93,3

1

20,0

1

50,0

6

75,0

4

66,7

7

41,2

0,9643

Африканская зеленая мартышка

9

81,8

1

14,3

1

14,3

5

27,8

6

42,9

10

55,6

0,0258↓↑

Павиан анубис

27

90,0

9

69,2

9

33,3

13

32,5

8

38,1

8

40,0

0,1357

Павиан гамадрил

100

91,7

40

81,6

29

61,7

25

22,7

17

29,3

25

35,2

< 0,0001

Другие виды

5

100,0

2

100

5

71,4

4

44,4

1

33,3

3

37,5

0,9648

Всего

274

92,9

100

65,4

113

39,8

156

30,6

83

31,4

139

38,9

0,0001↑↓

* p < 0,05 (критерий χ² – статистические различия выявления диагноза «пневмония» по отношению к видам обезьян). Стрелками указано направление тренда изменений частоты выявляемости по возрастам при статистической значимости теста.

* p < 0.05 (χ² test – statistical difference in pneumonia diagnosis rates between monkey species). Arrows indicate the trend in detection frequency by age, providing that the test result was statistically significant.

Общее число погибших от пневмонии обезьян в среднем колеблется в диапазоне от 126 до 166 случаев в год и в процентном отношении остается приблизительно на одинаковом уровне в течение шести лет (табл. 4).

Таблица 4

Количество погибших от пневмонии обезьян по годам

Table 4

Number of monkeys died of pneumonia by year

Вид

Годы исследований

p, χ² for trend*

2019

2020

2021

2022

2023

2024

Макак-резус

42

32

43

36

44

52

0,0075↑↓

Макак яванский

42

44

39

27

32

37

0,4535

Макак лапундер

6

9

3

3

8

4

0,7173

Африканская зеленая мартышка

5

5

2

6

10

4

0,3061

Павиан анубис

20

8

15

7

14

10

0,3494

Павиан гамадрил

43

42

40

45

38

28

0,3828

Другие виды

8

4

3

2

1

2

0,0177

Всего

166/46,6%

144/45,4%

145/38,2%

126/49,2%

147/51,9%

137/50,8%

0,0910

* p < 0,05 (критерий χ²– статистические различия выявления диагноза «пневмония» по отношению к видам обезьян). Стрелками указано направление тренда изменений частоты выявляемости с годами при статистической значимости теста.

* p < 0.05 (χ² test – statistical difference in pneumonia diagnosis rates between monkey species). Arrows indicate the trend in detection frequency by year, providing that the test result was statistically significant.

За последние шесть лет смертность обезьян первого месяца жизни неуклонно росла, и уже в 2024 г. причиной их гибели в 100% случаев явилась пневмония.

Анализируя сезонность гибели обезьян от пневмоний, отмечено, что более 50% случаев регистрировали в осенне-зимний период в 2020 и 2024 гг., а в летне-весенний – в 2023 г. В течение 2022 г. гибель животных от пневмоний была высока на протяжении всех сезонов.

Патоморфологические особенности пневмонии. У обезьян, живущих в условиях питомника, чаще регистрировали полисегментарную бронхопневмонию и намного реже – долевую фибринозную пневмонию, напоминающую крупозную пневмонию у человека. Анатомически наиболее часто патологический процесс характеризовался двусторонним поражением легких, преимущественно правого. При одностороннем поражении пневмонию чаще наблюдали только в правом легком (рис. 1).

Рис. 1. Макрофотография органокомплекса «сердце – легкие» при полисегментарной бронхопневмонии (макак яванский, , 3 года):
А – общий вид; B – поражение всех долей правого легкого; П – правое легкое; Л – левое легкое

Fig. 1. Macrophotography of heart – lung complex in the monkey with poly-segmental bronchopneumonia (Macaca fascicularis,, 3 years old):
A – general view; B – all lobes of the right lung are affected; П – right lung; Л – left lung

Крупозная пневмония у обезьян характеризуется лобарным фибринозным воспалением с поражением плевры. Помимо лобарного поражения, выявляли крупнофокусные очаги пневмонии в центре долей или с выходом под плевру. Пораженная легочная ткань безвоздушная, серо-красного цвета, плотной консистенции. С поверхности разреза пораженного легкого при сдавлении отделялась мутная пенистая жидкость. Лимфатические узлы легких имели увеличенные размеры. Зарегистрированы случаи тотального поражения всех долей правого и левого легких (рис. 2), где альвеолы были заполнены преимущественно фибринозно-лейкоцитарным экссудатом с увеличением содержания серозной жидкости.

Рис. 2. Макрофотография органокомплекса «сердце – легкие» при фибринозной пневмонии, тотальное поражение всех долей правого и левого легких (мартышка-гусар,, 10 лет):
А – общий вид; B – нити фибрина на висцеральной плевре правого легкого

Fig. 2. Macrophotography of heart – lung complex in the monkey with fibrinous pneumonia (Erythrocebus patas,, 10 years old), all lobes of the right and left lungs are completely affected:
A – general view; B – fibrin threads on the visceral pleura of the right lung

В альвеолах при крупозной пневмонии выявляли фибрин, дегенерированные лейкоциты и другие продукты клеточного распада. Встречались участки легочной ткани, содержащие в альвеолах исключительно эритроциты. Наблюдали выраженную гиперемию кровеносных сосудов с пристеночным накоплением лейкоцитов и стазы в капиллярах межальвеолярных перегородок (рис. 3).

Рис. 3. Микроскопические изменения в легких при лобарной пневмонии (макак-резус,, 5 лет):
А – альвеолярный отек, в просвете альвеол нити фибрина, дегенерированные лейкоциты (окраска гематоксилином и эозином, увеличение 200×); B – альвеолярный отек, скопления эритроцитов и лейкоцитов в просвете альвеол (окраска гематоксилином и эозином, увеличение 400×)

Fig. 3. Microscopic lesions in lungs of the monkey with lobar pneumonia (Macaca mulatta,, 5 years old):
A – alveolar edema, fibrin threads in the alveolar lumen, degenerated leukocytes (hematoxylin and eosin staining, magnification 200×); B – alveolar edema, erythrocyte and leukocyte accumulations in alveolar lumen (hematoxylin and eosin staining, magnification 400×)

Во всех случаях крупозной пневмонии отмечены очаги гнойного расплавления ткани, локализующиеся, как правило, вокруг пораженных бронхов. В просвете бронхов содержался гнойный экссудат и кокковая микрофлора.

Бронхопневмонии встречались как самостоятельно, так и в качестве сопутствующего заболевания, осложняющего патологии желудочно-кишечного тракта. При бронхопневмонии в легких обнаруживали множественные мелкофокусные, нередко сливающиеся очаги воспаления серо-красной или синюшно-багровой окраски, локализующиеся по ходу ветвления бронхов. Вокруг участков воспаления легочная ткань отечная, с гиперемией или выраженной эмфиземой, что придает поверхности разреза пестрый вид (рис. 4).

Рис. 4. Макроскопические изменения в легких при бронхопневмонии (павиан анубис,, 5 лет):
А, B – альвеолярный отек (выделение пенистой жидкости на разрезе),
пестрый рисунок ткани легкого

Fig. 4. Macroscopic lesions in lungs of the monkey with bronchopneumonia (Papio anubis,, 5 years old):
A, B – alveolar edema (foamy fluid on section), mottled pattern in lung tissue

Микроскопическая картина воспаления, так же как при крупозной пневмонии, характеризовалась разнообразием экссудата. Наблюдали очаги ткани, содержащие в альвеолах серозную жидкость с примесью эритроцитов и полиморфный клеточный экссудат. Часто в экссудате преобладали лейкоциты и слизь с большим количеством бактериальной микрофлоры. Во всех случаях воспалительные изменения в легких сочетались с развитием очаговых ателектазов и очаговой эмфиземы (рис. 5).

Рис. 5. Микроскопические изменения в легких при бронхопневмонии (павиан анубис,, 5 лет):
А – очаговая эмфизема (расширенные альвеолы, истонченные и местами разорванные стенки альвеол), полиморфный клеточный экссудат в просвете альвеол (окраска гематоксилином и эозином, увеличение 100×); B – полиморфный клеточный экссудат в просвете альвеол (окраска гематоксилином и эозином, увеличение 200×)

Fig. 5. Microscopic lesions in lungs of the monkey with bronchopneumonia (Papio anubis,, 5 years old):
A – focal emphysema (dilated alveoli, thinned and partly disrupted alveolar walls), polymorphic cellular exudate in the alveoli lumen (hematoxylin and eosin staining, magnification 100×); B – polymorphic cellular exudate in the alveoli lumen (hematoxylin and eosin staining, magnification 200×)

Таким образом, крупозная пневмония и бронхопневмония у обезьян, содержащихся в питомнике ККМП, характеризовались разнообразием морфологических изменений в легких. По-видимому, это связано с различными свойствами возбудителей заболевания.

У большинства погибших животных отмечали бессимптомное течение пневмонии, диагноз установили лишь на вскрытии. Дифференцировать крупозную пневмонию от бронхопневмонии иногда не представлялось возможным из-за стертости симптомов. В некоторых случаях наблюдали внутрилегочные осложнения – гнойные бронхиты, лимфангоиты, очаги гнойного воспаления, крайне редко – эмпиему плевры. Регистрировали внелегочные осложнения – гнойный менингит, серозно-гнойный перикардит.

Микробный пейзаж легких. Исследование микрофлоры легких обезьян показало, что во всех мазках-отпечатках были обнаружены грамположительные кокки. В результате бактериологического исследования за шесть лет было выделено 1660 микроорганизмов, из которых большую часть составляли представители семейства Enterobacteriaceae (58,5%), грамположительная кокковая микрофлора обнаружена в 36,6% случаев, доля неферментирующих бактерий, в том числе Pseudomonas aeruginosa, была равна 1,0%, недифференцированных грамположительных палочек – 3,8% (табл. 5).

Таблица 5

Количество выделенных культур микроорганизмов из легких обезьян, погибших от пневмонии (2019–2024 гг.)

Table 5

Number of microorganisms isolated from lungs of the monkeys died of pneumonia (2019–2024)

Микроорганизм

Годы исследований

p, χ² for trend

Всего

2019

2020

2021

2022

2023

2024

E. coli

112

100

106

85

87

82

0,2274

572

Представители Proteeae

51

50

52

42

62

44

0,0002↑↓

301

Klebsiella spp.

18

8

5

4

3

3

0,0048

41

Enterobacter spp.

7

4

4

1

4

6

0,5613

26

Citrobacter spp.

7

4

0

2

2

0

0,0344↑↓

15

Другие энтеробактерии

4

5

1

4

4

1

0,9126

19

Ps. aeruginosa

1

2

2

0

1

1

0,9926

7

Другие неферментирующие бактерии

0

0

1

0

2

6

0,0001

9

Bacillus spp.

1

1

6

4

3

7

0,0024↓↑

22

Другие грамположительные палочки

27

10

0

0

3

2

0,0001

42

Staphylococcus spp.

123

64

41

40

62

25

0,0001

355

Enterococcus spp.

53

49

40

31

36

29

0,9856

238

Другие грамположительные кокки, в том числе Streptococcus pneumoniae

6

3

0

1

2

0

0,0503

12

Candida spp.

0

0

1

0

0

0

0,9320

1

Всего

410

300

259

214

271

206

0,0001

1660

* p < 0,05 (критерий χ² – статистические различия выявляемости по отношению к видам микроорганизмов). Стрелками указано направление тренда изменений частоты выявляемости с годами при статистической значимости теста.

* p < 0.05 (χ² test – statistical difference in detection frequency between microorganism species). Arrows indicate the trend in detection frequency by year, where the test result was statistically significant.

Статистический анализ показал значимые изменения в выявляемости некоторых микроорганизмов за годы исследования (p < 0,0001), что свидетельствовало о сдвигах в составе микрофлоры легких.

Количество представителей трибы Proteeae варьировало без явной тенденции к росту или снижению, что указывает на динамическое изменение роли этих микроорганизмов (p = 0,0002). Число выявлений Klebsiella spp. с годами сократилось (p = 0,0048), что может свидетельствовать об уменьшении значения данного возбудителя в развитии пневмонии. Количество случаев обнаружения Citrobacter spp. (p = 0,0344) и Bacillus spp. (p = 0,0024) варьировало в разные годы. Несмотря на высокую частоту выделения Staphylococcus spp., отмечается тенденция к заметному снижению (p < 0,0001) в последние годы (от 123 до 25). Также наблюдали сокращение случаев выявляемости грамположительных палочек (p < 0,0001). Неферментирующие грамотрицательные палочки из легких выделяли редко, однако в 2024 г. они были обнаружены в 6 случаях (p < 0,0001). Общий уровень изолированных микроорганизмов снижался с годами (от 410 в 2019 г. до 206 в 2024 г.), что было подтверждено статистическими данными (p < 0,0001).

Если рассматривать микробный пейзаж, то лидирующую позицию занимали E. coli, которые обнаружены в легких 66,1% обезьян, на втором месте – Staphylococcus spp., в том числе S. aureus (41,1%), далее – представители Proteeae (Proteus spp., Providencia spp., M. morganii) и Enterococcus spp. (34,8 и 27,5% соответственно). В редких случаях была выявлена другая микрофлора. За анализируемый период из основных бактериальных возбудителей пневмоний чаще выделяли S. aureus – у 267 обезьян (31,5%), другие обнаружены в единичных случаях, а именно: K. pneumoniae – у 19 обезьян (2,2%), Ps. aeruginosa – у 7 обезьян (0,8%), St. pneumoniae – у 5 обезьян (0,6%). В 7 случаях (0,8%) на питательных средах отсутствовал рост бактерий. Также у 17 обезьян с пневмонией не был взят материал для исследования в связи с трупным разложением. Имели место бактериальные ассоциации, однако за анализируемый период количество случаев их выявления уменьшилось. Так, в 2019 г. отмечено 89% ассоциаций, а в 2024 – 52%, при этом явно заметно снижение частоты обнаружения 4-компонентных микробных ассоциаций.

Анализируя возможную роль выделенных микроорганизмов в развитии пневмонии у обезьян, необходимо учитывать, что у большинства из них заболевание развивалось на фоне желудочно-кишечной патологии и при сниженном иммунитете. Об этом свидетельствует обнаружение представителей кишечной группы бактерий в легких, а также затяжной характер течения пневмонии с нечеткими клиническими симптомами. Исключение составляют S. aureus, так как ранее проведенные молекулярно-генетические исследования показали высокий патогенный потенциал этого возбудителя и тропность некоторых штаммов к легочной ткани [29][30].

При обследовании на наличие маркеров ОРВИ 126 обезьян, погибших в 2021–2024 гг. с диагнозом «пневмония», антитела класса G, свидетельствующие о постинфекционном иммунитете, были обнаружены к вирусу парагриппа 1‑го и 3‑го типа (14,3 и 4,0% соответственно), РСВ (1,2%), а также аденовирусу (8,7%). Антитела, указывающие на период острой инфекции (IgA, IgM), были обнаружены только к РСВ (35,3%). С помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) в паренхиме легких РНК/ДНК возбудителей ОРВИ обнаружено не было (табл. 6).

Таблица 6

Маркеры вирусных инфекций

Table 6

Indicators of viral infections

Маркеры

Вид обезьян

Вирус парагриппа 1‑го типа

Вирус парагриппа 3‑го типа

РСВ

Аденовирус

IgG

IgA

IgG

IgA

IgG

IgM

IgG

Обезьяны, погибшие в 2021–2022 гг.

Макак-резус

10/15*

66,7%

0/15

0%

0/15

0%

0/15

0%

н. д.

н. д.

2/15

13,3%

Макак яванский

3/4

75,0%

0/4

0%

0/4

0%

0/4

0%

н. д.

н. д.

0/4

0%

Африканская зеленая мартышка

1/3

33,3%

0/3

0%

0/3

0%

0/3

0%

н. д.

н. д.

0/3

0%

Павиан гамадрил

3/15

20,0%

0/15

0%

0/15

0%

0/15

0%

н. д.

н. д.

0/15

0%

Павиан анубис

0/4

0%

0/4

0%

0/4

0%

0/4

0%

н. д.

н. д.

0/4

0%

Всего

17/41

41,5%

0/41

0%

0/41

0%

0/41

0%

н. д.

н. д.

2/41

4,9%

Обезьяны, погибшие в 2023–2024 гг.

Макак-резус

0/33

0%

0/33

0%

0/33

0%

0/33

0%

0/33

0%

8/33

24,2%

4/33

12,1%

Макак яванский

1/18

5,6%

0/18

0%

0/18

0%

0/18

0%

0/18

0%

9/18

50,0%

1/18

5,6%

Африканская зеленая мартышка

0/4

0%

0/4

0%

2/4

50,0%

0/4

0%

1/4

25%

2/4

50,0%

1/4

25,0%

Павиан гамадрил

0/23

0%

0/23

0%

3/23

13,0%

0/23

0%

0/23

0%

8/23

34,8%

2/23

8,7%

Павиан анубис

0/7

0%

0/7

0%

0/7

0%

0/7

0%

0/7

0%

3/7

42,9%

1/7

14,3%

Всего

1/85

1,2%

0/85

0%

5/85

5,9%

0/85

0%

1/85

1,2%

30/85

35,3%

9/85

10,6%

ИТОГО

18/126

14,3%

0/126

0%

5/126

4,0%

0/126

0%

1/85

1,2%

30/85

35,3%

11/126

8,7%

* положительный результат (positive serum samples) / количество исследованных сывороток (number of tested serum samples); н. д. – нет данных (no data).

У погибших в 2021–2022 гг. обезьян (n = 41) антитела класса G были выявлены только к вирусу парагриппа 1‑го типа (41,5%) и аденовирусу (4,9%), а к вирусу парагриппа 3‑го типа обнаружены не были. Серологических маркеров, свидетельствующих об острой инфекции, также установлено не было.

У животных, погибших в 2023–2024 гг. с диагнозом «пневмония» (n = 85), в сыворотках крови были выявлены IgM к РСВ (35,3%), а наличие IgA к вирусу парагриппа 1‑го и 3‑го типа не установлено. Кроме того, антитела класса G, свидетельствующие о постинфекционном иммунитете, были обнаружены к вирусу парагриппа 1‑го и 3‑го типа (1,2 и 5,9% соответственно), РСВ (1,2%), а также аденовирусу (10,6%).

ВЫВОДЫ

  1. Пневмония является наиболее распространенной причиной гибели обезьян в питомнике ККМП (46,5%) и часто возникает на фоне желудочно-кишечных заболеваний у ослабленных животных, что согласуется с ранее опубликованными данными.
  2. Наиболее высокая смертность от пневмоний наблюдалась у детенышей в возрасте до месяца (92,9%) и первого года жизни (65,4%). Следовательно, наиболее уязвимыми к развитию пневмонии являлись содержащиеся в неволе обезьяны от рождения до 1 года.
  3. Наиболее часто возникала двусторонняя полисегментарная бронхопневмония, реже – долевая фибринозная пневмония, напоминающая крупозную пневмонию у человека, с преимущественным поражением правого легкого.
  4. Спектр выделенной бактериальной микрофлоры из пораженных пневмонией легких в основном составляли представители энтеробактерий (58,5%) и грамположительной кокковой микрофлоры (36,6%), при этом S. aureus был выделен в 41,1% случаев. При микроскопическом исследовании в тканях легкого также была обнаружена кокковая микрофлора.
  5. Установлена циркуляция аденовируса, вируса парагриппа человека 1‑го и 3‑го типа, а также РСВ среди обезьян, погибших от пневмонии. Высокий процент IgM к РСВ свидетельствовал о возможной причастности этого вируса к патологии респираторного тракта у обезьян.

Вклад авторов: Калашникова В. А. – проведение бактериологического исследования, обработка результатов исследования, составление таблиц и диаграмм, подготовка текста, подбор и анализ литературных источников по теме; Радомская Е. Ю. – забор материала, пробоподготовка; Булгин Д. В. – подготовка текста, описание патоморфологических и микроскопических данных, фотографирование гистологических срезов; Полякова В. И. – забор материала, проведение бактериологического исследования, статистическая обработка данных; Догадов Д. И. – обработка результатов вирусологического исследования, подготовка текста, подбор и анализ литературных источников по теме; Демерчян А. В. – забор материала, проведение бактериологического исследования; Щербак Н. В. – изготовление гистологических микропрепаратов; Чуканов Д. В. – проведение патолого-анатомических вскрытий; Гончаренко А. М. – проведение иммуноферментного анализа; Миносян А. А. – постановка полимеразной цепной реакции; Аршба И. М. – проведение бактериологического исследования.

Contribution of the authors: Kalashnikova V. A. – bacteriological tests, study result processing, creation of tables and diagrams, paper text preparation, literature searching and analysis; Radomskaya E. Yu. – sampling, sample preparation; Bulgin D. V. – paper text preparation, description of postmortem and microscopic findings, histological section photographing; Polyakova V. I. – sampling, bacteriological tests, statistical processing of data; Dogadov D. I. – processing of virological test results, paper text preparation, literature searching and analysis; Demerchyan A. V. – sampling, bacteriological tests; Shcherbak N. V. – histological microslide preparation; Chukanov D. V. – necropsies; Goncharenko A. M. – ELISA-tests; Minosyan A. A. – PCR-tests; Arshba I. M. – bacteriological tests.

Список литературы

1. Костылева О. А. Стафилококкозы собак и кошек (клиника, лечение). Вестник Алтайского государственного университета. 2005; (2): 49–52. https://elibrary.ru/ircoun

2. Козлова С. В., Краснолобова Е. П., Веремеева С. А. К вопросу о грибково-бактериальных ассоциациях органов респираторной систем­ы птиц. Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2022; (8): 145–150. https://elibrary.ru/nizvrx

3. Кудряшов А. А., Балабанова В. И., Пудовкин Д. Н., Беляева Е. В. Патологоанатомическая диагностика инфекционных респираторных болезней крупного рогатого скота в агрохозяйствах. Актуальные вопросы ветеринарной биологии. 2017; (1): 59–65. https://elibrary.ru/ygroux

4. Шульга Н. Н., Шульга И. С., Дикунина С. С., Плавшак Л. П. Распространение респираторных болезней телят в Амурской области. Дальневосточный аграрный вестник. 2016; (3): 90–93. https://elibrary.ru/wxotyh

5. Полищук С. В., Белявцева Е. А. Диагностика энзооти­ ческой пневмонии свиней в ООО «Велес-Крым». Известия сельскохозяйственной науки Тавриды. 2015; (1): 164–171. https://elibrary.ru/wfdujf

6. Наумов М. М., Кононова Т. А. Инфекционные пневмонии кошек, анализ заболеваемости на базе Курского ветеринарного центра «Бетховен». Вестник Курской государственной сельскохозяйственной академии. 2022; (4): 82–85. https://elibrary.ru/bddknd

7. Stephenson T., Lee K., Griffith J. E., McLelland D. J., Wilkes A., Bird P. S., et al. Pulmonary actinomycosis in South Australian koalas (Phascolarctos cinereus). Veterinary Pathology. 2021; 58 (2): 416–422. https://doi.org/10.1177/0300985820973459

8. Black S. R., Barker I. K., Mehren K. G., Crawshaw G. J., Rosendal S., Ruhnke L., et al. An epizootic of Mycoplasma ovipneumoniae infection in captive Dall’s sheep (Ovis dalli dalli). Journal of Wildlife Diseases. 1988; 24 (4): 627–635. https://doi.org/10.7589/0090-3558-24.4.627

9. Zhao W., Tian Q., Luo Y., Wang Y., Yang Z.-X., Yao X.-P., et al. Isolation, identification, and genome analysis of lung pathogenic Klebsiella pneumoniae (LPKP) in forest musk deer. Journal of Zoo and Wildlife Medicine. 2017; 48 (4): 1039–1048. https://doi.org/10.1638/2016-0241.1

10. McClure S., Sibert G., Hallberg J., Bade D. Efficacy of a 2-dose regimen of a sustained release ceftiofur suspension in horses with Streptococcus equi subsp. zooepidemicus bronchopneumonia. Journal of Veterinary Pharmaco­ logy and Therapeutics. 2011; 34 (5): 442–447. https://doi.org/10.1111/j.1365-2885.2011.01267.x

11. Schmidt V., Marschang R. E., Abbas M. D., Ball I., Szabo I., Helmuth R., et al. Detection of pathogens in Boidae and Pythonidae with and without respiratory disease. Veterinary Record. 2013; 172 (9):236. https://doi.org/10.1136/vr.100972

12. Крылова Р. И. Сравнительная характеристика нозологического профиля людей и обезьян разных видов. Лабораторные приматы для решения актуальных проблем медицины и биологии: материалы симпозиума. М.: Издательство РАМН; 2004; 18–21.

13. Dick E. J. Jr., Owston M. A., David J. M., Sharp R. M., Rouse S., Hubbard G. B. Mortality in captive baboons (Papio spp.): a-23-year study. Journal of Medical Primatology. 2014; 43 (3): 169–196. https://doi.org/10.1111/jmp.12101

14. Bommineni Y. R., Dick E. J. Jr., Malapati A. R., Owston M. A., Hubbard G. B. Natural pathology of the baboon (Papio spp.). Journal of Medical Primatology. 2011; 40 (2): 142–155. https://doi.org/10.1111/j.1600-0684.2010.00463.x

15. Laurence H., Kumar S., Owston M. A., Lanford R. E., Hubbard G. B., Dick E. J. Jr. Natural mortality and cause of death analysis of the captive chimpanzee (Pan troglodytes): A 35-year review. Journal of Medical Primato­ logy. 2017; 46 (3): 106–115. https://doi.org/10.1111/jmp.12267

16. Лапин Б. А., Джикидзе Э. К., Крылова Р. И., Стасилевич З. К., Яковлева Л. А. Проблемы инфекционной патологии обезьян. М.: Издательство РАМН; 2004. 136 с.

17. Лапин Б. А., Джикидзе Э. К., Фридман Э. П. Руководство по медицинской приматологии. М.: Медицина; 1987. 188 с.

18. Li R., Li J., Zhou X. Lung microbiome: new insights into the pathogenesis of respiratory diseases. Signal Transduction and Targeted Therapy. 2024; 9:19. https://doi.org/10.1038/s41392-023-01722-y

19. Вечерковская М. Ф., Тец Г. В., Кардава К. М., Артеменко Н. К., Заславская Н. В., Михайлова Д. В. и др. Типичные и нетипичные бактериальные возбудители заболеваний дыхательной системы. Практическая пульмонология. 2021; (1): 87–94. https://elibrary.ru/fqlwez

20. Догадов Д. И., Кюрегян К. К., Миносян А. А., Гончаренко А. М., Шмат Е. В., Михайлов М. И. Острые респираторные вирусные инфекции у обезьян. Вопросы вирусологии. 2025; 70 (1): 7–24. https://doi.org/10.36233/0507-4088-293

21. Saputro S., Saepuloh U., Darusman H. S., Putriyani W., Permanawati, Ayuningsih E. D., et al. Klebsiella pneumoniae infection in cynomolgus monkeys at primate research center facility in Indonesia. Journal of Medical Primatology. 2023; 52 (6): 361–368. https://doi.org/10.1111/jmp.12665

22. Ihms E. A., Daniels J. B., Koivisto C. S., Barrie M. T., Russell D. S. Fatal Streptococcus anginosus-associated pneumonia in a captive Sumatran orangutan (Pongo abelii). Journal of Medical Primatology. 2014; 43 (1): 48–51. https://doi:10.1111/jmp.12085

23. Szentiks C. A., Köndgen S., Silinski S., Speck S., Leendertz F. H. Lethal pneumonia in a captive juvenile chimpanzee (Pan troglodytes) due to human-transmitted human respiratory syncytial virus (HRSV) and infection with Streptococcus pneumoniae. Journal of Medical Primatology. 2009; 38 (4): 236–240. https://doi.org/10.1111/j.1600-0684.2009.00346.x

24. Silva V. D., Shridhar P. B., Gonzalez O. D., Dick E. J. Jr., Shivanna V. Pseudomonas infections in the common marmoset (Callithrix jacchus): gross and histopathological findings. Journal of Medical Primatology. 2025; 54 (2):e70016. https://doi.org/10.1111/jmp.70016

25. Davis K. L., Gonzalez O., Kumar S., Dick E. J. Jr. Pathology associated with Streptococcus spp. infection in baboons (Papio spp.). Veterinary Patho­ logy. 2020; 57 (5): 714–722. https://doi.org/10.1177/0300985820941496

26. Корзая Л. И., Догадов Д. И., Гончаренко А. М., Карлсен А. А., Кюрегян К. К., Михайлов М. И. Распространение маркёров респираторных вирусов человека среди обезьян Адлерского приматологического центра. Вопросы вирусологии. 2021; 66 (6): 425–433. https://doi.org/10.36233/0507-4088-77

27. Меркулов Г. А. Курс патологогистологической техники. 5-е изд., испр. и доп. Л.: Медицина; 1969. 423 с.

28. Калашникова В. А., Султанова О. А. Место Staphylococcus aureus в этиологической структуре возбудителей пневмоний у обезьян, содержащихся в Адлерском питомнике. Астраханский медицинский журнал. 2017; 12 (2): 36–43. https://elibrary.ru/zeulez

29. Калашникова В. А. Молекулярное типирование метициллинчувствительных Staphylococcus aureus (MSSA), изолированных от обезьян, на основе полиморфизма коагулазного гена. Ветеринария сегодня. 2019; (3): 57–62. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2019-3-30-57-62

30. Калашникова В. А. Вирулентные характеристики Staphylococcus aureus, выделенных при пневмониях у обезьян, живущих в условиях неволи. Лабораторные животные для научных исследований. 2020; (3): 25–33. https://doi.org/10.29296/2618723X-2020-03-04


Об авторах

В. А. Калашникова
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Калашникова Виктория Алексеевна, канд. биол. наук, ведущий научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Е. Ю. Радомская
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Радомская Елена Юрьевна, врач-патологоанатом лаборатории патологической анатомии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Д. В. Булгин
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Булгин Дмитрий Викторович, канд. мед. наук, начальник лаборатории патологической анатомии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



В. И. Полякова
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Полякова Вероника Игоревна, младший научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Д. И. Догадов
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Догадов Дмитрий Игоревич, канд. биол. наук, начальник лаборатории инфекционных вирусов

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



А. В. Демерчян
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Демерчян Алвард Варткесовна, научный сотрудник лаборатории инфекционной патологии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Н. В. Щербак
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Щербак Наталья Валерьевна, лаборант лаборатории патологической анатомии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Д. В. Чуканов
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Чуканов Дмитрий Викторович, врач-патологоанатом лаборатории патологической анатомии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



А. М. Гончаренко
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Гончаренко Александра Михайловна, научный сотрудник лаборатории инфекционных вирусов

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



А. А. Миносян
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Миносян Альберт Артурович, лаборант-исследователь лаборатории инфекционных вирусов

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



И. М. Аршба
Курчатовский комплекс медицинской приматологии ФГБУ Национальный исследовательский центр «Курчатовский институт» (ККМП НИЦ «Курчатовский институт»)
Россия

Аршба Илона Мурмановна, канд. биол. наук, начальник лаборатории инфекционной патологии

ул. Академика Лапина, 177, с. Веселое, Адлерский район, г. Сочи, 354376, Краснодарский край



Рецензия

Для цитирования:


Калашникова В.А., Радомская Е.Ю., Булгин Д.В., Полякова В.И., Догадов Д.И., Демерчян А.В., Щербак Н.В., Чуканов Д.В., Гончаренко А.М., Миносян А.А., Аршба И.М. Патоморфологические, бактериологические и вирусологические особенности пневмоний у обезьян, содержащихся в неволе. Ветеринария сегодня. 2026;15(1):28-37. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-1-28-37

For citation:


Kalashnikova V.A., Radomskaya E.Yu., Bulgin D.V., Polyakova V.I., Dogadov D.I., Demerchyan A.V., Shcherbak N.V., Chukanov D.V., Goncharenko A.M., Minosyan A.A., Arshba I.M. Pathomorphological, bacteriological and virological features of pneumonia in captive monkeys. Veterinary Science Today. 2026;15(1):28-37. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2026-15-1-28-37

Просмотров: 1044

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)