Динамика эпизоотического процесса эмфизематозного карбункула животных на территории Республики Казахстан

В 2012–2021 гг. на территории Республики Казахстан было зарегистрировано 2030 очагов острых инфекционных болезней животных, доля эмфизематозного карбункула животных из их числа составила20,7% (421очаг), что указывает на важное эпизоотологическое значение данной нозоединицы в инфекционной патологии животных в стране. Результаты анализа количества зарегистрированных очагов эмкара за 10 лет свидетельствуют о ежегодном значительном распространении заболевания (от 19 до 81 очага) на территории Республики Казахстан и о его стационарности. За этот период показатель очаговости по эмкару составил в среднем от 1 до 3 животных на один очаг, что свидетельствует о неконтагиозности эмкарной инфекции. Результаты исследований указывают на то, что эмкар в Республике Казахстан имеет сезонный характер с подъемом заболеваемости в осенние месяцы года, анализ данных за 2012–2022 гг. периодичности эпизоотий не выявил. Проведенное эпизоотологическое зонирование позволило установить, что в 6 областях, площадь которых составляет 42,8% площади всей территории республики, наблюдался высокий уровень напряженности эпизоотической ситуации по эмкару; в 5 областях, занимающих 35,7% территории страны, отмечена низкая степень напряженности эпизоотической ситуации; остальные 3 (21,5%) являются благополучными по заболеванию. Таким образом, зонирование территории республики по эмкару дает возможность дифференцированно планировать профилактические ветеринарные мероприятия и меры борьбы с ним по отдельным территориям (зонам) в зависимости от напряженности эпизоотической ситуации. Полученные результаты исследований позволят усовершенствовать систему эпизоотологического надзора за эмкарной инфекцией, прогнозировать возможное территориальное расширение распространения заболеваемости животных и могут быть использованы при разработке противоэпизоотических мероприятий.

1. ДанилюкА.В., КапустинА.В. Распространенность и видовое разнообразие клостридий– возбудителей анаэробных инфекций крупного рогатого скота. Труды Всероссийского НИИэкспериментальной ветеринарии им.Я.Р.Коваленко. 2019; 81: 19–26. DOI:10.30917/ATT-PRINT-2019-10.

2. DattaS., Karmakar U. K. Black quarter in a cow: A case report. Explor. Anim. Med. Res. 2017; 7 (1): 113–115. Режим доступа: https://animalmedicalresearch.org/Vol.7_Issue-1_June_2017/Sanjoy%20Dutta.pdf.

3. Ziech R. E., Gressler L. T., Frey J., de Vargas A. C. Blackleg in cattle: current understanding and future research needs. Ciênc. Rural. 2018; 48:e20170939. DOI: 10.1590/0103-8478cr20170939.

4. DalyR. F., MiskiminsD. W., GoodR. G., StenbergT. Blackleg (Clostridium chauvoei infection) in beef calves: a review and presentation of two cases with uncommon pathologic presentations. Bov. Pract. 2009; 43 (2): 153–158. DOI: 10.21423/bovine-vol43no2p153-158.

5. HarwoodD. G., HigginsR. J., AggettD. J. Outbreak of intestinal and lingual Clostridium chauvoei infection in two-year-old Friesian heifers. Vet. Rec. 2007; 161(9): 307–308. DOI: 10.1136/vr.161.9.307.

6. KriekN. P. J., OdendaalM. W. Clostridium chauvoei infections. In: Infectious diseases of livestock. Ed. by R. Coetzer, R. C. Tustin. 2nded. Oxford: Oxford University Press; 2004; 1856–1862.

7. Useh N. M., Nok A. J., Esievo K. A. N. Blackleg in ruminants. CABI Reviews. 2006; 1 (040): 1–8. DOI: 10.1079/PAVSNNR20061040.

8. MinettF. C. Pathogenesis of black quarter; tissue damage and spore latency. J. Comp. Pathol. Ther. 1948; 58 (3): 201–209. DOI: 10.1016/s0368-1742(48)80020-2.

9. Pires P. S., Santos R. L., da Paixão T. A., de Oliveira Bernardes L. C., de Macêdo A. A., Gonçalves L. A., et al. Intracellular survival of Clostridium chauvoei in bovine macrophages. Vet. Microbiol. 2017; 199: 1–7. DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.11.027.

10. Rychener L., In-Albon S., Djordjevic S. P., Chowdhury P. R., Nicholson P., Ziech R. E., et al. Clostridium chauvoei, an evolutionary dead-end pathogen. Front. Microbiol. 2017; 8:1054. DOI: 10.3389/fmicb.2017.01054.

11. Schocken-IturrinoR. P., et al. Presence of viable spores of bacteria of the genus Clostridium in muscle and liver of bovine slaughtered for consumption. ARS Veterinária. 2000; 16: 109–111.

12. Колесникова Ю. Н., Пименов Н. В., Капустин А. В. Этиология анаэробных инфекций у крупного рогатого скота и сравнительная характеристика выделенных штаммов клостридий. Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. 2016; 8(56): 39–48. DOI:10.18551/rjoas.2016-08.07.

13. Useh N. M., Nok A. J., Esievo K. A. N. Pathogenesis and pathology of blackleg in ruminants: the role of toxins and neuraminidase. A short review. Vet. Q. 2003; 25 (4): 155–159. DOI: 10.1080/01652176.2003.9695158.

14. Frey J., Johansson A., Bürki S., Vilei E. M., Redhead K. Cytotoxin CctA, a major virulence factor of Clostridium chauvoei conferring protective immunity against myonecrosis. Vaccine. 2012; 30 (37): 5500–5505. DOI: 10.1016/j.vaccine.2012.06.050.

15. Mudenda Hang’ombe B., Kohda T., Mukamoto M., Kozaki S. Purification and sensitivity of Clostridium chauvoei hemolysin to various erythrocytes. Comp. Immunol. Microbiol. Infect. Dis. 2006; 29 (4): 263–268. DOI: 10.1016/j.cimid.2006.06.002.

16. CortiñasT. I., MattarM. A., deGuzmánA. M. S. Alpha and beta toxin activities in local strains of Clostridium chauvoei. Anaerobe. 1999; 5: 297–299. DOI: 10.1006/anae.1999.0211.

17. AbreuC. C., BlanchardP. C., AdaskaJ. M., MoellerR. B., AndersonM., NavarroM. A., etal. Pathology of blackleg incattle in California, 1991–2015. J. Vet. Diagn. Invest. 2018; 30: 894–901. DOI: 10.1177/1040638718808567.

18. HecklerR. F., deLemosR. A. A., GomesD. C., DutraI. S., SilvaR. O. S., LobatoF.C.F.,etal. Blackleg in cattle in the state Mato Grosso do Sul, Brazil: 59 cases. Pesq. Vet. Bras. 2018; 38 (1): 6–14. DOI: 10.1590/1678-5150-pvb-4964.

19. HussainR., Ehtisham-ul-HaqueS., KhanI., JabeenG., SiddiqueA. B., Ghaffar A., et al. Clinico-hematological, patho-anatomical and molecular based investigation of blackleg disease in Cholistani cattle. Pak. J. Agri. Sci. 2021; 58 (3): 1017–1025. DOI: 10.21162/PAKJAS/21.1240.

20. Gacem F., Madadi M. A., Khecha N., Bakour R. Study of vaccinal properties of Clostridium chauvoei strains isolated during a blackleg outbreak in cattle in Algeria. Kafkas Univ. Vet. Fak. Derg. 2015; 21 (6): 825–829. DOI: 10.9775/kvfd.2015.13616.

21. Wolf R., Hiesel J., Kuchling S., Deutz A., Kastelic J., Barkema H. W., Wagner P. Spatial-temporal cluster analysis of fatal Clostridium chauvoei cases among cattle in Styria, Austria between 1986 and2013. Prev. Vet. Med. 2017; 138: 134–138. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2017.01.019.

22. BlokhinA. A., ToropovaN. N., BurovaO. A., IashinI. V., ZakharovaO. I. Blackleg in cattle in the Irkutsk Region. Front. Vet. Sci. 2022; 9:872386. DOI: 10.3389/fvets.2022.872386.

23. Капустин А. В., Алипер Т. И. Эпизоотология и профилактика клостридиозов крупного рогатого скота. Единый мир – единое здоровье: материалы конгресса (Уфа, 19–21 апреля 2017 г.). Уфа: Российская ветеринарная ассоциация; 2017; 106–108. EDN: ZARMNR.

24. Максимович В. В., Багрецов В. Ф., Билецкий О. Р., Бублов А. В., Вербицкий А. А., Гайсенок С. Л. и др. Эпизоотология и инфекционные болезни: учебник. 2-еизд., перераб. и доп. Минск: ИВЦ Минфина; 2017; 106–108.

25. Кайырболат А. С. Эпизоотическая ситуация по эмфизематозному карбункулу в Казахстане. Сейфуллинские чтения – 16: Молодежная наука новой формации – будущее Казахстана: материалы международной научно-теоретической конференции (24 апреля 2020 г.). Нур-Султан: Казахский агротехнический университет им. С. Сейфуллина; 2020; 1 (1): 278–280. Режим доступа: https://kazatu.edu.kz/assets/i/science/sf16-animal-130.pdf.

26. ОдаренкоК.И., ГрязинВ.И. Реакция агглютинации(РА) при эмфизематозном карбункуле. Труды Казахского научно-исследовательского ветеринарного института. 1976; 16: 180–184.

27. Айтжанов Б. Д. Эффективность метода иммунофлюоресценции при выявлении возбудителей и специфических антител эмфизематозного карбункула и злокачественного отека крупного рогатого скота и овец: дис. … канд. вет. наук. Алма-Ата; 1986. 183 с.

28. Бакулов И. A., Книзе A. B., Котляров В. М. Методические рекомендации по ведению эпизоотологического мониторинга экзотических особо опасных и малоизученных болезней животных. Покров: ВНИИВВиМ; 2005; 26–50.

29. Макаров В. В., Святковский А. В., Кузьмин В. А., Сухарев О. И. Эпизоотологический метод исследования: учебное пособие. СПб.: Лань; 2009; 13–29.

30. Коваленко Я. Р. Анаэробные инфекции сельскохозяйственных животных. М.: Сельхозгиз; 1954. 360 с.

31. Abutalip A., Laskavy V., Aitzhanov B., Baikadamova G., AbubekovaA. Еpizootic situation of animal emcar (blackleg) on the territory of the Repulic of Kazakhstan for 2010–2020. Вестник науки Казахского агротехнического университета им. С. Сейфуллина. 2022; 3 (114): 167–180. DOI: 10.51452/kazatu.2022.3(114).1173.