Preview

Ветеринария сегодня

Расширенный поиск

Базовая скорость репродукции для некоторых инфекционных заболеваний свиней: оценка необходимого уровня вакцинации или депопуляции восприимчивого поголовья животных

https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-3-34-179-185

Полный текст:

Аннотация

Одной из основных количественных характеристик в эпидемиологии/эпизоотологии инфекционных заболеваний человека и животных является базовая скорость репродукции (R0). Данный показатель отражает как биологические свойства самого инфекционного агента, социально-экономические способы ведения животноводства, природные факторы обитания той популяции животных, в которую внедряется вирус (микроб), так и эффективность выбора методов борьбы с инфекцией, включая проведение профилактических мероприятий, а также позволяет предвидеть количество и вероятность возможного появления новых вторичных очагов инфекции в зоне риска распространения заболевания. В работе представлены данные по оценке базовой скорости репродукции (R0) для ряда инфекционных болезней свиней. Проведен систематический анализ имеющихся публикаций по оценке этого показателя для различных изолятов вирусов африканской чумы свиней, классической чумы свиней, ящура, репродуктивно-респираторного синдрома свиней, болезни Ауески, гепатита Е, энцефаломиокардита, цирковируса типа 2, а также актинобациллезной плевропневмонии и заболеваний, вызываемых патогенными изолятами Mycoplasma hyopneumoniae. На основе полученных количественных значений показателя R0 даны рекомендации ветеринарным службам по проведению профилактической вакцинации свиней от перечисленных заболеваний в зонах риска распространения инфекции. Определены необходимые условия по депопуляции дикого кабана для предотвращения возникновения новых очагов африканской чумы свиней: уничтожение за время, равное одному инфекционному периоду, не менее 75% обитающей в угрожаемой зоне популяции животных.

Об авторах

В. М. Гуленкин
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Гуленкин Владимир Михайлович, кандидат биологических наук, заведующий сектором ИАЦ

г. Владимир, мкр. Юрьевец



Ф. И. Коренной
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Коренной Федор Игоревич, кандидат географических наук, научный сотрудник ИАЦ

г. Владимир



А. К. Караулов
ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)
Россия

Караулов Антон Константинович, кандидат ветеринарных наук, руководитель ИАЦ

г. Владимир



Список литературы

1. Бейли Н. Математика в биологии и медицине. М.: Мир; 1970. 326 с.

2. Basic reproduction number. Available at: https://en.wikipedia.org/wiki/Basic_reproduction_number.

3. Plotkin S. A., Orenstein W. A., Offin P. A. eds. Vaccines. 5 th ed. Philadelphia: Saunders Company; 2008. 1725 p.

4. Guberti V., Khomenko S., Masiulis M., Kerba S. African swine fever in wild boar ecology and biosecurity. Rome. FAO Animal Production and Health Manual. 2019; No. 22. Rome: FAO, OIE and EC. Available at: http://www.fao.org/3/ca5987en/CA5987EN.pdf.

5. Африканская чума свиней в странах мира. ИАЦ ФГБУ «ВНИИЗЖ». 27.02.2020. Режим доступа: http://fsvps.ru/fsvps-docs/ru/iac/foreign/2020/february/asf_world.pdf.

6. Белянин С. А., Васильев А. П., Колбасов Д. В., Цыбанов С. Ж., Балышев В. М., Куриннов В. В., Черных О. Ю. Вирулентность изолятов вируса АЧС. Ветеринария Кубани. 2011; 5: 9–10. eLIBRARY ID: 16911088.

7. Guinat C., Porphyre T., Gogin A., Dixon L., Pfeiffer D. U. Inferring withinherd transmission parameters for African swine fever virus using mortality data from outbreaks in the Russian Federation. Transbound. Emerg. Dis. 2018; 65 (2): e264–e271. DOI: 10.1111/tbed.12748.

8. Guinat C., Gubbins S., Vergne T., Gonzales J. L., Dixon L., Pfeiffer D. U. Experimental pig-to-pig transmission dynamics for African swine fever virus, Georgia 2007/1 strain. Epidemiol. Infect. 2016; 144 (1): 25–34. DOI: 10.1017/S0950268815000862.

9. Pietschmann J., Guinat C., Beer M., Pronin V., Tauscher K., Petrov A., et al. Course and transmission characteristics of oral low-dose infection of domestic pigs and European wild boar with a Caucasian African swine fever virus isolate. Arch. Virol. 2015; 160: 1657–1667. DOI: 10.1007/s00705-015-2430-2.

10. Gulenkin V. M., Korennoy F. I., Karaulov A. K., Dudnikov S. A. Cartographical analysis of African swine fever outbreaks in the territory of the Russian Federation and computer modeling of the basic repro duction ratio. Prev. Vet. Med. 2011; 102 (3): 167–174. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2011.07.004.

11. De Carvalho Ferreira H. C., Backer J. A., Weesendorp E., Klinkenberg D., Stegeman J. A., Loeffen W. L. A. Transmission rate of African swine fever virus under experimental conditions. Vet. Microbiol. 2013; 165 (3–4): 296–304. DOI: 10.1016/j.vetmic.2013.03.026.

12. Korennoy F. I., Gulenkin V. M., Gogin A. E., Vergne T. Estimating the basic reproductive number for African swine fever using the Ukrainian historical epidemic of 1977. Transbound. Emerg. Dis. 2017; 64 (6): 1858–1866. DOI: 10.1111/tbed.12583.

13. Barongo M. B., Stahl K., Bett B., Bishop R. P., Fevre E. M., Aliro T., et al. Estimating the basic reproductive number (R0 ) for African swine fe ver virus (ASFV) transmission between pig herds in Uganda. PLoS One. 2015; 10 (5):e0125842. DOI: 10.1371/journal.pone.0125842.

14. Об утверждении ветеринарных правил осуществления профилактических, диагностических, ограничительных и иных мероприятий, установления и отмены карантина и иных ограничений, направленных на предотвращение распространения и ликвидацию очагов африканской чумы свиней: приказ МСХ РФ от 31.05.2016 № 213. Режим доступа: https://www.garant.ru/products/ipo/prime/doc/71373924/.

15. Iglesias I., Munoz M., Montes F., Perez A., Gogin A., Kolbasov D., de la Torre A. Reproductive ratio for the local spread of African swine fever in wild boars in the Russian Federation. Transbound. Emerg. Dis. 2016; 63 (6): e237e245. DOI: 10.1111/tbed.12337.

16. Marcon A., Linden A., Satran P., Gervasi V., Licoppe A., Guberti V. R 0 estimation for the African swine fever epidemics in wild boar of Czech Republic and Belgium. Vet. Sci. 2020; 7:2. DOI: 10.3390/vetsci7010002.

17. Garza S. J., Tabak M. A., Miller R. S., Farnsworth M. L., Burdett C. L. Abiotic and biotic influences on home-range size of wild pigs (Sus scrofa). J. Mammal. 2018; 99 (1): 97–107. DOI: 10.1093/jmammal/gyx154.

18. De Jong M. C. M., Kimman T. G. Experimental quantification of vaccine-induced reduction in virus transmission. Vaccine. 1994; 12 (8): 761–766. DOI: 10.1016/0264-410X(94)90229-1.

19. Eble P. L., De Koeijer A. A., De Jong M. C. M., Engel B., Dekker A. A meta-analysis quantifying transmission parameters of FMDV strain O Taiwan among non-vaccinated and vaccinated pigs. Prev. Vet. Med. 2008; 83 (1): 98–106. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2007.06.004.

20. Klinkenberg D., De Bree J., Laevens H., De Jong M. C. M. Within-and between-pen transmission of classical swine fever virus: a new method to estimate the basic reproduction ratio from transmission experiments. Epidemiol. Infect. 2002; 128 (2): 293–299. DOI: 10.1017/s0950268801006537.

21. Velthuis A. G. J., De Jong M. C. M., Kamp E. M., Stockhofe N., Verheijden J. H. M. Design and analysis of an Actinobacillus pleuropneumoniae transmission experiment. Prev. Vet. Med. 2003; 60 (1): 53–68. DOI: 10.1016/s0167-5877(03)00082-5.

22. Charpin C., Mahé S., Keranflec’h A., Belloc C., Cariolet R., Le Potier M.-F., Rose N. Infectiousness of pigs infected by the porcine re productive and respiratory syndrome virus (PRRSV) is time-dependent. Vet. Res. 2012; 43:69. DOI: 10.1186/1297-9716-43-69.

23. Laevens H., Koenen F., Deluyker H., De Kruif A. Experimental infection of slaughter pigs with classical swine fever virus: Transmission of the virus, course of the disease and antibody response. Vet. Rec. 1999; 145 (9): 243–248. DOI: 10.1136/vr.145.9.243.

24. Weesendorp E., Backer J., Stegeman A., Loeffen W. Effect of strain and inoculation dose of classical swine fever virus on within-pen transmission. Vet. Res. 2009; 40:59. DOI: 10.1051/vetres/2009041.

25. Stegeman A., Elbers A. R. W., Bouma A., De Smit H., De Jong M. C. M. Transmission of classical swine fever virus within herds during the 19971998 epidemic in the Netherlands. Prev. Vet. Med. 1999; 42 (3–4): 201–218. DOI: 10.1016/S0167-5877(99)00076-8.

26. Pileri E. Transmission of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV): Assessment of the reproduction rate (R) in different conditions: PhD Thesis. Bellaterra: Universitat Autonoma de Barcelona, 2015. 130 p. Available at: https://pdfs.semanticscholar.org/a65c/8ebc1dfc3ff3402867816d5a35bcfdda0f2f.pdf.

27. Andraud M., Glasland B., Durand B., Cariolet R., Jestin A., Madec F., et al. Modeling the time-dependent transmission rate for porcine circovirus type 2 (PCV2) in pigs using data from serial transmission expe riments. J. R. Soc. Interface. 2008; 6 (30): 39–50. DOI: 10.1098/rsif.2008.0210.

28. Kluivers M., Maurice H., Vyt P., Koenen F., Nielen M. Transmission of encephalomyocarditis virus in pigs estimated from field data in Belgium by means of R0 . Vet. Res. 2006; 37 (6): 757–766. DOI: 10.1051/vetres:2006035.

29. Maurice H., Nielen M., Stegeman J. A., Vanderhallen H., Koenen F. Transmission of encephalomyocarditis virus (EMCV) among pigs experimentally quantified. Vet. Microbiol. 2002; 88: 301–314. DOI: 10.1016/S03781135(02)00127-X.

30. Maurice H., Thulke H. H., Schmid J. S., Stegeman A., Nielen M. Impact of compartmentalised housing on direct encephalomyocarditis virus (EMCV) transmission among pigs; insight from a model. Prev. Vet. Med. 2016; 127: 105–112. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2016.03.006.

31. Spyrou V., Maurice H., Billinis C., Papanastassopoulou M., Psalla D., Nielen M., et al. Transmission and pathogenicity of encephalomyocarditis virus (EMCV) among rats. Vet. Res. 2004; 35 (1): 113–122. DOI: 10.1051/vetres:2003044.

32. Bouwknegt M., Frankena K., Rutjes S. A., Wellenberg G. J., De Roda Husman A. M., Van der Poel W. H. M., De Jong M. C. M. Estimation of hepatitis E virus transmission among pigs due to contact-exposure. Vet. Res. 2008; 39 (5):40. DOI: 10.1051/vetres:2008017.

33. Meyns T., Maes D., Dewulf J., Vicca J., Haesebrouck F., De Kruif A. Quantification of the spread of Mycoplasma hyopneumoniae in nursery pigs using transmission experiment. Prev. Vet. Med. 2004; 66 (1–4): 265–275. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2004.10.001.


Для цитирования:


Гуленкин В.М., Коренной Ф.И., Караулов А.К. Базовая скорость репродукции для некоторых инфекционных заболеваний свиней: оценка необходимого уровня вакцинации или депопуляции восприимчивого поголовья животных. Ветеринария сегодня. 2020;(3):179-185. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-3-34-179-185

For citation:


Gulenkin V.M., Korennoy F.I., Karaulov A.K. Basic reproduction number for certain infectious porcine diseases: estimation of required level of vaccination or depopulation of susceptible animals. Veterinary Science Today. 2020;(3):179-185. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-3-34-179-185

Просмотров: 270


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)