Agr-типирование метициллин-чувствительных Staphylococcus aureus (MSSA), выделенных у низших приматов
https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-127-131
Аннотация
Об авторе
В. А. КалашниковаРоссия
Калашникова Виктория Алексеевна, кандидат биологических наук, ведущий научный сотрудник
Список литературы
1. Zhang Y., Xu D., Shi L., Cai R., Li C., Yan H. Association between agr type, virulence factors, biofilm formation and antibiotic resistance of Staphylococcus aureus isolates from pork production. Front. Microbiol. 2018; 9: 1876. DOI: 10.3389/fmicb.2018.01876.
2. Dufour P., Jarraud S., Vandenesch F., Greenland T., Novick R. P., Bes M., et al. High genetic variability of the agr locus in Staphylococcus species. J. Bacteriol. 2002; 184 (4): 1180–1186. DOI: 10.1128/jb.184.4.1180- 1186.2002.
3. Javdan S., Narimani T., Shahini Shams Abadi M., Gholipour A. Agr typing of Staphylococcus aureus species isolated from clinical samples in training hospitals of Isfahan and Shahrekord. BMC Res. Notes. 2019; 12:363. DOI: 10.1186/s13104-019-4396-8.
4. Shopsin B., Mathema B., Alcabes P., Said-Salim B., Lina G., Matsuka A., et al. Prevalence of agr specificity groups among Staphylococcus aureus strains colonizing children and their guardians. J. Clin. Microbiol. 2003; 41 (1): 456–459. DOI: 10.1128/jcm.41.1.456-459.2003.
5. Monecke S., Gavier-Widén D., Hotzel H., Peters M., Guenther S, Lazaris A., et al. Diversity of Staphylococcus aureus isolates in European wildlife. PloS One. 2016; 11 (12):e0168433. DOI: 10.1371/journal.pone.0168433.
6. Gilot P., Lina G., Cochard T., Poutrel B. Analysis of the genetic variability of genes encoding the RNA III-activating components agr and TRAP in a population of Staphylococcus aureus strains isolated from cows with mastitis. J. Clin. Microbiol. 2002; 40 (11): 4060–4067. DOI: 10.1128/JCM.40.11.4060-4067.2002.
7. Alves P. D., McCulloch J. A., Even S., Le Maréchal C., Thierry A., Grosset N., et al. Molecular characterisation of Staphylococcus aureus strains isolated from small and large ruminants reveals a host rather than tissue specificity. Vet. Microbiol. 2009; 137 (1–2): 190–195. DOI: 10.1016/j.vetmic.2008.12.014.
8. Vautor E., Magnone V., Rios G., Le Brigand K., Bergonier D., Lina G., et al. Genetic differences among Staphylococcus aureus isolates from dairy ruminant species: a single-dye DNA microarray approach. Vet. Microbiol. 2009; 133 (1–2): 105–114. DOI: 10.1016/j.vetmic.2008.06.006.
9. De Almeida L. M., De Almeida M. Z., De Mendonça C. L., Mamizuka E. M. Comparative analysis of agr groups and virulence genes among subclinical and clinical mastitis Staphylococcus aureus isolates from sheep flocks of the Northeast of Brazil. Braz. J. Microbiol. 2013; 44 (2): 493–498. DOI: 10.1590/S1517-83822013000200026.
10. Bardiau M., Caplin J., Detilleux J., Graber H., Moroni P., Taminiau B., Mainil J. G. Existence of two groups of Staphylococcus aureus strains isolated from bovine mastitis based on biofilm formation, intracellular survival, capsular profile and agr-typing. Vet. Microbiol. 2016; 185: 1–6. DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.01.003.
11. Khoramrooz S. S., Mansouri F., Marashifard M., Malek Hosseini S. A. A., Akbarian Chenarestane-Olia F., Ganavehei B., et al. Detection of biofilm related genes, classical enterotoxin genes and agr typing among Staphylococcus aureus isolated from bovine with subclinical mastitis in southwest of Iran. Microb. Pathog. 2016; 97: 45–51. DOI: 10.1016/j.micpath.2016.05.022.
12. Калашникова В. А., Дмитренко О. А., Стасилевич З. К., Джикидзе Э. К. Молекулярно-генетическое типирование Staphylococci aureus, выделенных от обезьян. Вестник ветеринарии. 2012; 1 (60): 73–77. eLIBRARY ID: 20888807.
13. Калашникова В. А., Султанова О. А. Место Staphylococcus aureus в этиологической структуре возбудителей пневмоний у обезьян, содержащихся в адлерском питомнике. Астраханский медицинский журнал. 2017; 17 (2): 36–43. eLIBRARY ID: 29922139.
14. Калашникова В. А. Молекулярное типирование метициллинчувствительных Staphylococcus aureus (MSSA), изолированных от обезьян, на основе полиморфизма коагулазного гена. Ветеринария сегодня. 2019; 3: 57–62. DOI: 10.29326/2304-196X-2019-3-30-57-62.
15. Jarraud S., Mougel C., Thioulouse J., Lina G., Meugnier H., Forey F., et al. Relationships between Staphylococcus aureus genetic background, virulence factors, agr groups (alleles), and human disease. Infect. Immun. 2002; 70 (2): 631–641. DOI: 10.1128/IAI.70.2.631-641.2002.
16. Kolawole D. O., Adeyanju A., Schaumburg F., Akinyoola A. L., Lawal O. O., Amusa Y. B., et al. Characterization of colonizing Staphylococcus aureus isolated from surgical wards’ patients in a Nigerian University Hospital. PloS One. 2013; 8 (7):e68721. DOI: 10.1371/journal.pone.0068721.
17. Гостев В. В., Гончаров А. Е., Грачева М. А., Сидоренко С. В. Распространение генов комплекса Immune Evasion Cluster и других факторов вирулентности у Staphylococcus aureus. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2013; 15 (4): 270–278. eLIBRARY ID: 20879495.
18. Moreno-Flores A., Potel-Alvarellos C., Francisco-Tomé M., ConstenlaCaramés L., Pérez-Roth E., López-Cotón C., et al. Methicillin-resistant Staphylococcus aureus in swine housed indoors in Galicia, Spain. Enferm. Infecc. Microbiol. Clin. 2020; 38 (1): 16 –20. DOI: 10.1016/j.eimc.2019.03.009.
Рецензия
Для цитирования:
Калашникова В.А. Agr-типирование метициллин-чувствительных Staphylococcus aureus (MSSA), выделенных у низших приматов. Ветеринария сегодня. 2020;(2):127-131. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-127-131
For citation:
Kalashnikova V.A. Agr-typing of methicillin-susceptible Staphylococcus aureus (MSSA) isolated from non-human primates. Veterinary Science Today. 2020;(2):127-131. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2020-2-33-127-131