ВЛИЯНИЕ УМЕРЕННО ВИРУЛЕНТНОГО ВИРУСА АЧС НА ПРОДУКЦИЮ ИНТЕРЛЕЙКИНА-10


https://doi.org/10.29326/2304-196X-2019-3-30-23-28

Полный текст:


Аннотация

Характерной особенностью вируса африканской чумы свиней является способность избегать иммунного ответа организма хозяина, поражая макрофаги и размножаясь в  них. Кроме того, специфические антитела к  вирусу африканской чумы свиней его полностью не нейтрализуют. Важными факторами в протекании различных инфекционных вирусных патологий являются цитокины. Вирулентность изолятов вируса африканской чумы свиней может быть обусловлена возможностью регуляции экспрессии цитокинов макрофагами. Так, при сравнении продукции цитокинов макрофагами in vitro и in vivo установлено, что заражение низковирулентными изолятами вируса приводит к иммунному ответу с преобладанием цитокинов, вовлеченных в клеточный иммунитет, такими как ИНФ-α и ИЛ-12p40, в отличие от заражения высоковирулентными изолятами. Целью данной работы являлось изучение влияния вируса африканской чумы свиней на продукцию ИЛ-10 – плейотропного цитокина, ингибирующего синтез цитокинов и  проявляющего сильный противовоспалительный эффект. Для этого проводили экспериментальное заражение 12 поросят адаптированным к перевиваемой клеточной культуре изолятом вируса африканской чумы свиней Vero25 внутримышечно в дозе 10 ГАдЕ/гол. с последующим контрольным заражением выживших животных референтным изолятом вируса Аrm 07 в дозе 1000 ГАдЕ/гол. В течение всего опыта проводили термометрию и отбор проб крови для получения сыворотки. Определение содержания ИЛ-10 в сыворотке крови проводили с использованием тест-систем Invitrogen (Thermo Fisher, США). У погибших животных после заражения умеренно вирулентным вирусом в сыворотке крови наблюдался более высокий уровень ИЛ-10 (15,8–173 пг/мл) по сравнению с выжившими поросятами (4–5 пг/мл). Зависимости скорости появления специфических антител от уровня ИЛ-10 в сыворотке крови не установлено. Заметного влияния уровня содержания ИЛ-10 в сыворотке крови до заражения на выживаемость животных не установлено. Для установления причинно-следственной связи необходимы дальнейшие исследования, включающие изучение экспрессии различных цитокинов при заражении как низко-, так и высоковирулентными изолятами вируса.


Об авторах

А. C. Першин
ФГБУ «ВНИИЗЖ»
Россия
Старший научный сотрудник, кандидат ветеринарных наук


И. В. Шевченко
ФГБУ «ВНИИЗЖ»
Россия
Научный сотрудник, кандидат биологических наук


А. С. Иголкин
ФГБУ «ВНИИЗЖ»
Россия
Заведующий лабораторией, кандидат ветеринарных наук


Е. В. Аронова
ФГБУ «ВНИИЗЖ»
Россия
Старший научный сотрудник, кандидат биологических наук


Н. Н. Власова
ФГБУ «ВНИИЗЖ»
Россия
Главный научный сотрудник, доктор биологических наук


Список литературы

1. Влияние пассивной иммунизации на клинические и патологоанатомические изменения у свиней, зараженных изолятом Мартинс-Крым 01/16 вируса АЧС / А. С. Першин, С. Г. Ремыга, И. В. Шевченко [и др.] // Ветеринария. – 2018. – № 1. – С. 25–31.

2. African swine fever virus infection induces tumor necrosis factor alpha production: implications in pathogenesis / M. Gómez del Moral, E. Ortuño, P. Fernández-Zapatero [et al.] // J. Virol. – 1999. – Vol. 73 (3). – P. 2173–2180; PMCID: PMC104462.

3. African swine fever virus: a B cell-mitogenic virus in vivo and in vitro / H. Takamatsu, M. S. Denyer, C. Oura [et al.] // J. Gen. Virol. – 1999. – Vol. 80 (Pt. 6). – P. 1453–1461; DOI: 10.1099/0022-1317-80-6-1453.

4. African swine fever: Expression of interleukin-1 alpha and tumour necrosis factor-alpha by pulmonary intravascular macrophages / L. Carrasco, A. Núñez, F. J. Salguero [et al.] // J. Comp. Pathol. – 2002. – Vol. 126 (2–3). – P. 194–201; DOI: 10.1053/jcpa.2001.0543.

5. Autocrine deactivation of macrophages in transgenic mice constitutively overexpressing IL-10 under control of the human CD68 promoter / R. Lang, R. L. Rutschman, D. R. Greaves, P. J. Murray // J. Immunol. – 2002. – Vol. 168 (7). – P. 3402–3411; DOI: 10.4049/jimmunol.168.7.3402.

6. Biological properties of African swine fever virus Odintsovo 02/14 isolate and its genome analysis / A. A. Elsukova, I. V. Shevchenko, A. A. Varentsova [et al.] // Int. J. Environ. Agricult. Res. – 2017. – Vol. 3 (10). – P. 26–37; DOI: 10.25125/agriculture-journal-IJOEAR-OCT-2017-15.

7. Blome S., Gabriel C., Beer M. Pathogenesis of African swine fever in domestic pigs and European wild boar // Virus Res. – 2013. – Vol. 173 (1). – P. 122–130; DOI: 10.1016/j.virusres.2012.10.026.

8. Changes in macrophages in spleen and lymph nodes during acute African swine fever: expression of cytokines / F. J. Salguero, E. Ruiz-Villamor, M. J. Bautista [et al.] // Vet. Immunol. Immunopathol. – 2002. – Vol. 90 (1–2). – P. 11–22; DOI: 10.1016/S0165-2427(02)00225-8.

9. Characterization of the interaction of African swine fever virus with monocytes and derived macrophage subsets / G. Franzoni, S. P. Graham, S. D. Giudici [et al.] // Vet. Microbiol. – 2017. – Vol. 198. – P. 88–98; DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.12.010.

10. Comparative analysis of clinical and biological characteristics of African swine fever virus isolates from 2013 year Russian Federation / N. N. Vlasova, A. A. Varentsova, I. V. Shevchenko [et al.] // British Microbiol. Res. J. – 2015. – Vol. 5 (3). – P. 203–215; DOI: 10.9734/bmrj/2015/12941.

11. Defective humoral responses and extensive intravascular apoptosis are associated with fatal outcome of Ebola virus-infected patients / S. Baize, E. M. Leroy, M. C. Georges-Courbot [et al.] // Nat. Med. – 1999. – Vol. 5 (4). – P. 423–426; DOI: 10.1038/7422.

12. Evolution of African swine fever virus genes related to evasion of host immune response / M. Frączyk, G. Woźniakowski, A. Kowalczyk [et al.] // Vet. Microbiol. – 2016. – Vol. 193. – P. 133–144; DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.08.018.

13. Expression at mRNA level of cytokines and A238L gene in porcine blood-derived macrophages infected in vitro with African swine fever virus (ASFV) isolates of different virulence / S. Gil, M. Spagnuolo-Weaver, A. Canals [et al.] // Arch. Virol. – 2003. – Vol. 148 (11). – P. 2077–2097; DOI: 10.1007/ s00705-003-0182-x.

14. Genetic variation among African swine fever genotype II viruses, Eastern and Central Europe / C. Gallardo, J. Fernández-Pinero, V. Pelayo [et al.] // Emerg. Infect. Dis. – 2014. – Vol. 20 (9). – P. 1544–1547; DOI: 10.3201/eid2009.140554.

15. IL-10 enhances expression of the IL-2 receptor alpha chain on T cells / S. B. Cohen, P. D. Katsikis, M. Feldmann, M. Londei // Immunology. – 1994. – Vol. 83 (3). – P. 329–332; PMCID: PMC1415032.

16. IL-10, an inflammatory/inhibitory cytokine, but not always / P. Conti, D. Kempuraj, K. Kandere [et al.] // Immunol Lett. – 2003. – Vol. 86 (2). – P. 123–129; DOI: 10.1016/s0165-2478(03)00002-6.

17. In vivo depletion of CD8+ T lymphocytes abrogates protective immunity to African swine fever virus / C. A. Oura, M. S. Denyer, H. Takamatsu, R. M. Parkhouse // J. Gen. Virol. – 2005. – Vol. 86 (Pt. 9). – Р. 2445–2450; DOI: 10.1099/vir.0.81038-0.

18. Induction of IL-10 and inhibition of experimental arthritis are specific features of microbial heat shock proteins that are absent for other evolutionarily conserved immunodominant proteins / B. Prakken, U. Wendling, R. van der Zee [et al.] // J. Immunol. – 2001. – Vol. 167 (8). – P. 4147–4153; DOI: 10.4049/jimmunol.167.8.4147.

19. Inflammatory cytokines in animal health and disease / M. Murtaugh, M. J. Baarsch, Y. Zhou [et al.] // Vet. Immunol. Immunopathol. – 1996. – Vol. 54 (1–4). – P. 45–55; DOI: 10.1016/S0165-2427(96)05698-X.

20. Influence of age and dose of African swine fever virus infections on clinical outcome and blood parameters in pigs / J. Post, E. Weesendorp, M. Montoya, W. L. Loeffen // Viral Immunol. – 2017. – Vol. 30 (1). – Р. 58–69; DOI: 10.1089/vim.2016.0121.

21. Interleukin (IL)-10 inhibits nuclear factor kappa B (NF kappa B) activation in human monocytes IL-10 and IL-4 suppress cytokine synthesis by different mechanisms / P. Wang, P. Wu, M. I. Siegel [et al.] // J. Biol. Chem. – 1995. – Vol. 270 (16). – P. 9558–9563; DOI: 10.1074/jbc.270.16.9558.

22. Interleukin-10 and the interleukin-10 receptor / K. W. Moore, R. de Waal Malefyt, R. L. Coffman, A. O’Garra // Ann. Rev. Immunol. – 2001. – Vol. 19. – Р. 683–765; DOI: 10.1146/annurev.immunol.19.1.683.

23. Manipulating IL-10 signalling blockade for better immunotherapy / G. Ni, T. Wang, S. Walton [et al.] // Cell. Immunol. – 2015. – Vol. 293 (2). – P. 126–129; DOI: 10.1016/j.cellimm.2014.12.012.

24. Markedly elevated levels of interferon (IFN)-γ, IFN-α, interleukin (IL)-2, IL-10, and tumor necrosis factor-α associated with fatal Ebola virus infection / F. Villinger, P. E. Rollin, S. S. Brar [et al.] // J. Infect. Dis. – 1999. – Vol. 179 (Suppl. 1). – P. 188–191; DOI: 10.1086/514283.

25. Molecular characterization and SNP development for the porcine IL6 and IL10 genes / E. Daniłowicz, M. Akouchekian, C. Drogemuller [et al.] // Anim. Biotechnol. – 2008. – Vol. 19 (3). – P. 159–165; DOI: 10.1080/10495390802088621.

26. Mosser D. M. The many faces of macrophage activation // J. Leukoc. Biol. – 2003. – Vol. 73 (2). – P. 209–212; DOI: 10.1189/jlb.0602325.

27. Pathology of African swine fever: the role of monocytemacrophage / J. C. Gómez-Villamandos, M. J. Bautista, P. J. Sánchez-Cordón, L. Carrasco // Virus. Res. – 2013. – Vol. 173 (1). – P. 140–149; DOI: 10.1016/j. virusres.2013.01.017.

28. Peters C. J. Viral hemorrhagic fevers // Viral Pathogenesis / ed. N. Nathanson [et al.]. – Philadelphia: Lippincott-Raven, 1997. – P. 779–799.

29. Regulatory activity of autocrine IL-10 on dendritic cell functions / S. Corinti, C. Albanesi, A. la Sala [et al.] // J. Immunol. – 2001. – Vol. 166 (7). – P. 4312–4318; DOI: 10.4049/jimmunol.166.7.4312.

30. The low-virulent African swine fever virus (ASFV/NH/P68) induces enhanced expression and production of relevant regulatory cytokines (IFNα, TNFα and IL12p40) on porcine macrophages in comparison to the highly virulent ASFV/L60 / S. Gil, N. Sepúlveda, E. Albina [et al.] // Arch. Virol. – 2008. – Vol. 153 (10). – P. 1845–1854; DOI: 10.1007/s00705-008- 0196-5.

31. The pathogenic role of pulmonary intravascular macrophages in acute African swine fever / L. Carrasco, F. C. de Lara, J. C. Gómez-Villamandos [et al.] // Res. Vet. Sci. – 1996. – Vol. 61 (3). – P. 193–198; PMID: 8938846.

32. Vaccination against tuberculosis: how can we better BCG? / J. M. Pitt, S. Blankley, H. McShane, A. O’Garra // Microb. Pathog. – 2013. – Vol. 58. – P. 2–16; DOI: 10.1016/j.micpath.2012.12.002.

33. Wardley R. C. Effect of African swine fever on lymphocyte mitogenesis // Immunology. – 1982. – Vol. 46 (1). – P. 215–220; PMCID: PMC1555335.


Дополнительные файлы

Для цитирования: Першин А.C., Шевченко И.В., Иголкин А.С., Аронова Е.В., Власова Н.Н. ВЛИЯНИЕ УМЕРЕННО ВИРУЛЕНТНОГО ВИРУСА АЧС НА ПРОДУКЦИЮ ИНТЕРЛЕЙКИНА-10. Ветеринария сегодня. 2019;(3):23-28. https://doi.org/10.29326/2304-196X-2019-3-30-23-28

For citation: Pershin A.S., Shevchenko I.V., Igolkin A.S., Aronova Y.V., Vlasova N.N. EFFECTS OF MODERATELY VIRULENT AFRICAN SWINE FEVER VIRUS ON INTERLEUKIN-10 PRODUCTION. Veterinary Science Today. 2019;(3):23-28. (In Russ.) https://doi.org/10.29326/2304-196X-2019-3-30-23-28

Просмотров: 22

Обратные ссылки

  • Обратные ссылки не определены.


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2304-196X (Print)
ISSN 2658-6959 (Online)