<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">veterinary</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Ветеринария сегодня</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Veterinary Science Today</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2304-196X</issn><issn pub-type="epub">2658-6959</issn><publisher><publisher-name>"Veinard"</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.29326/2304-196X-2024-13-2-124-135</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">veterinary-810</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОБЗОРЫ | БОЛЕЗНИ РЫБ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>REVIEWS | FISH DISEASES</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Инфекционный некроз гемопоэтической ткани лососевых рыб (обзор)</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Infectious hematopoietic necrosis (review)</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0009-0005-9068-1085</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Балахнина</surname><given-names>К. А.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Balakhnina</surname><given-names>K. A.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Балахнина Ксения Андреевна, аспирант, ведущий ветеринарный врач референтной лаборатории по болезням аквакультуры</p><p>мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901 </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Ksenia A. Balakhnina, Postgraduate Student, Leading Veterinarian, Laboratory for Aquaculture Diseases</p><p>Yur’evets, Vladimir 600901</p></bio><email xlink:type="simple">balahnina@arriah.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2766-2875</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Мельников</surname><given-names>В. П.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Melnikov</surname><given-names>V. P.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Мельников Владимир Петрович, канд. вет. наук, заведующий референтной лабораторией по болезням аквакультуры</p><p>мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901 </p></bio><bio xml:lang="en"><p>Vladimir P. Melnikov, Cand. Sci. (Veterinary Medicine), Head of Reference Laboratory for Aquaculture Diseases</p><p>Yur’evets, Vladimir 600901</p></bio><email xlink:type="simple">melnikov@arriah.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Federal Centre for Animal Health</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2024</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>12</day><month>06</month><year>2024</year></pub-date><volume>13</volume><issue>2</issue><fpage>124</fpage><lpage>135</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Балахнина К.А., Мельников В.П., 2024</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Балахнина К.А., Мельников В.П.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Balakhnina K.A., Melnikov V.P.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/810">https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/810</self-uri><abstract><p>Производство аквакультуры на территории Российской Федерации является неотъемлемой частью сельскохозяйственного сектора экономики страны. Страны с высоким уровнем и темпами развития аквакультуры (Норвегия, США, Китай, Япония, Канада и др.) и растущей эффективностью производства рыб являются центрами возникновения и распространения инфекционных заболеваний, которые при ненадлежащем контроле проникают на территорию других государств и распространяются в новых ареалах, угрожая в том числе и отечественной отрасли. В последние годы значительный ущерб рыбоводным хозяйствам наносит инфекционный некроз гемопоэтической ткани лососевых рыб. В 2020 г. большие потери понесла Эстония, где во время вспышки данного инфекционного заболевания погибло и было уничтожено более 65 тонн радужной форели, показатель смертности при этом составил 71%. Это был первый случай инфекционного некроза гемопоэтической ткани в этой стране. Обострение эпизоотической ситуации на рыбоводческих предприятиях Эстонии представляет угрозу северо-западным регионам Российской Федерации с развитой аквакультурой (в Ленинградской области и Республике Карелии). В 2022 г. вспышки инфекционного некроза гемопоэтической ткани отмечали во Франции, Италии, Финляндии, Германии, Дании и Македонии. А в 2023 г. впервые в Грузии отмечена гибель рыб от данного заболевания на речной форелевой ферме. Отечественное производство продукции аквакультуры зависит от импорта икры и посадочного материала из Норвегии, Дании, Финляндии и других стран, поэтому возникает необходимость в регулярном эпизоотологическом мониторинге. В статье дана краткая характеристика возбудителя инфекционного некроза гемопоэтической ткани, описаны эпизоотология, патогенез, клинические признаки, патолого-анатомические изменения, методы диагностики, профилактики и меры борьбы с инфекцией. Обзор составлен на основе анализа 88 источников.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>Aquaculture in the Russian Federation is an integral part of the agricultural industry of the state economy. Countries with high rates of aquaculture growth (Norway, USA, China, Japan, Canada, etc.) and increasing efficiency of fish farming are the cradles of infectious diseases, which, in case of improper control, invade the territory of other countries and spread to new areas, bearing the risks for the domestic industry too. In recent years, infectious hematopoietic necrosis (IHN) has caused significant damage to fish farms. In 2020, Estonia suffered heavy losses; more than 65 tons of rainbow trout died and were destroyed during the IHN outbreak with a mortality rate of 71%. This was the first IHN case in this country. The aggravation of the epidemic situation at Estonian fish farms poses a threat to the northwestern regions of the Russian Federation, where aquaculture is practiced (the Leningrad Oblast and the Republic of Karelia). In 2022, IHN outbreaks were reported in France, Italy, Finland, Germany, Denmark and Macedonia. IHN-caused deaths were reported at the river trout farm in Georgia in 2023 for the first time. The domestic aquaculture depends on the import of eggs and seed material from Norway, Denmark, Finland and other countries, therefore a regular disease monitoring is urgently needed. The paper provides a brief description of the IHN causative agent, describes its epidemiology, pathogenesis, clinical signs, post-mortem lesions, diagnostic tests, infection control and prevention measures. We have reviewed 88 literature sources to summarize the information.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>обзор</kwd><kwd>вирус инфекционного некроза гемопоэтической ткани</kwd><kwd>болезни рыб</kwd><kwd>эпизоотическая ситуация</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>review</kwd><kwd>infectious hematopoietic necrosis virus</kwd><kwd>fish diseases</kwd><kwd>disease situation</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">Работа выполнена за счет средств ФГБУ «ВНИИЗЖ» в рамках тематики научно-исследовательских работ «Ветеринарное благополучие».</funding-statement><funding-statement xml:lang="en">The study was funded by the Federal Centre for Animal Health within the research topic “Veterinary Welfare”</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><sec><title>ВВЕДЕНИЕ</title><p>Инфекционный некроз гемопоэтической ткани (ИНГТ, IHNV – infectious haematopoietic necrosis virus) – высококонтагиозное вирусное заболевание лососевых рыб, регистрирующееся в пресноводной и морской аквакультуре и характеризующееся высокой смертностью и ухудшением товарной кондиции выживших рыб. Болезнь, вызванная вирусом инфекционного некроза гемопоэтической ткани, исторически известна под разными названиями: вирусная болезнь нерки, болезнь нерки реки Колумбия, болезнь нерки Орегона и болезнь чавычи реки Сакраменто. Однако в настоящее время общепринятым названием заболевания является «инфекционный некроз гемопоэтической ткани лососевых рыб». ИНГТ внесен Всемирной организацией здравоохранения животных (ВОЗЖ) в список опасных и экономически значимых болезней, обязательных к уведомлению [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>]. Восприимчивыми к заболеванию является широкий спектр лососевых рыб, как выращиваемых в искусственных условиях, так и диких. Наиболее подвержена заболеванию молодь до 2–6-месячного возраста. Поражение большей части молоди приводит к значительному вреду и убыткам, грозящим практически полным разорением владельца рыбного хозяйства. Заболевание характеризуется высоким уровнем смертности (90–100%), снижением производительности и производства рыбы, а также ухудшением товарного вида продукции. Клиническое проявление болезни наблюдается как в пресноводной, так и в морской аквакультуре. Вспышки данного заболевания в наиболее развитых по аквакультуре странах наносят значительный экономический ущерб [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit4">4</xref>].</p></sec><sec><title>ХАРАКТЕРИСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЯ</title><p>Возбудителем ИНГТ является РНК-содержащий вирус из семейства Rhabdoviridae рода Novirhabdovirus, который был выделен в отдельную единицу Международным комитетом по таксономии вирусов в 2014 г.1 Основное различие между новирабдовирусами и везикуловирусами, послужившее основанием для выделения новой таксономической единицы, заключается в наличии у новирабдовирусов гена NV [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>]. Вирион представляет собой оболочечный спиральный нуклеокапсид, имеющий форму пули или конуса, длиной приблизительно 110 нм и диаметром 70 нм (рис. 1) [<xref ref-type="bibr" rid="cit6">6</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>]. Вирус ИНГТ представлен одним серотипом. Среди полевых изолятов встречаются как низковирулентные, так и высоковирулентные варианты вируса. Возбудитель ИНГТ выделяют и культивируют в перевиваемых клеточных культурах EPC, AS, BF-2, CHSE-214, FHM, ICO, RTH-149, RTG-2 и STE-137 [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>].</p><fig id="fig-1"><caption><p>Рис. 1. Снимок вируса ИНГТ, полученный с помощью электронного микроскопа [7]</p><p>Fig. 1. IHNV viewed under an electron microscope [7]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g001.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/Vnw11cEP99HWb0cVl1R46EYWprj7oHFe78DuH3yv.jpeg</uri></graphic></fig><p>Геном вируса ИНГТ представлен несегментированной одноцепочечной РНК отрицательной полярности размером примерно 11 000 нуклеотидов, которая кодирует 6 белков в следующем порядке: нуклеопротеин (N), фосфопротеин (P), матриксный белок (M), поверхностный гликопротеин (G), невирионный протеин (NV) и вирусную полимеразу (L) [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>].</p><p>Вирус состоит из капсида и оболочки, внутреннее спиральное ядро рибонуклеокапсида – из генома рибонуклеазы и белков N, M и L. Матричный белок (М) присоединяется как к рибонуклеокапсиду, так и к белку G на внутренней стороне оболочки. Внешняя оболочка состоит из липидной двухслойной мембраны и гликопротеина (G), который выступает наружу и образует нековалентно связанные шиповидные выступы [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].</p><p>Белок N возбудителя ИНГТ содержит 413 аминокислот и имеет молекулярную массу 40,5–44 кДа. Это самый ранний и наиболее распространенный белок, продуцируемый вирусом во время инфекции. Белок Р, который ранее назывался белком М1, состоит из 231 аминокислоты и имеет молекулярную массу 25,6 кДа, функция его неизвестна. Белок М ранее назывался белком М2, он является высокоосновным и содержит ряд основных аминокислот на N-конце, которые являются консервативными среди белков гомологичного матрикса других рабдовирусов рыб. Белок G молекулярной массой 67–70 кДа, состоящий из 508 аминокислотных остатков, образует шиповидные выступы на поверхности зрелого вириона. Данный протеин связывается с поверхностными рецепторами клетки и ответственен за прикрепление вируса к мембране клетки хозяина, слияние клеток, образование синцитий и формирование характерного цитопатического эффекта. Также белок G является мишенью для нейтрализующих антител [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>]. Белок L содержит 1986 аминокислот, имеет молекулярную массу приблизительно 225 кДа и демонстрирует сходство с генами РНК-зависимой РНК-полимеразы других рабдовирусов. Ген NV был сначала обнаружен у вируса ИНГТ между генами G и L, а затем подобный ген выявили у других рабдовирусов гидробионтов, таких как возбудитель вирусной геморрагической септицемии, рабдовирус Хирам, рабдовирус змееголова и у различных рабдовирусов угрей [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Ген NV кодирует неструктурный белок, который можно обнаружить в инфицированных клетках, но не в очищенных препаратах вируса. Данный белок необходим для эффективной репликации вируса ИНГТ in vivo [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>].</p><p>На основе генетических отличий по поверхностному гликопротеину G североамериканские штаммы вируса были разделены на три основные генетические подгруппы, или геногруппы, обозначенные как U, M и L [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>]. Представители данных геногрупп циркулируют в определенных географически изолированных популяциях диких лососевых. Изоляты вируса геногруппы U наиболее распространены на Аляске и в Британской Колумбии, также их выделяли от рыб у побережья штата Вашингтон и в бассейне реки Колумбия – в штатах Вашингтон, Орегон и Айдахо. Вирусы геногруппы M встречаются у рыб в бассейнах рек Колумбия, Снейк и у побережья штата Вашингтон. Напротив, представители геногруппы L циркулируют среди рыб в Калифорнии и на южном побережье штата Орегон. С помощью молекулярно-генетических методов было доказано, что европейские и азиатские изоляты вируса ИНГТ имеют североамериканское происхождение [<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]. Исследования показали, что различные геногруппы возбудителя имеют видовую специфичность. Например, изоляты вируса ИНГТ геногруппы U обладают высокой патогенностью для нерки, а при поражении изолятами вируса геногруппы M смертность данного вида значительно ниже. Однако для радужной форели вирусы геногруппы М высокопатогенны, а при заражении изолятами возбудителя геногруппы U регистрируется низкий уровень смертности [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>]. Изоляты вируса геногруппы L наиболее патогенны для чавычи [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>].</p></sec><sec><title>ЭПИЗООТОЛОГИЯ</title><p>Устойчивость к воздействию физико-химических факторов и дезинфектантов. Возбудитель ИНГТ сохраняет жизнеспособность в пресной воде при температуре 15 °С в течение 1 месяца, особенно при наличии органического вещества. Вирус термолабилен, неустойчив к действию кислот и эфиров, быстро инактивируется обычными дезинфектантами и высушиванием. Возбудитель данного заболевания чувствителен к высоким температурам и почти полностью инактивируется за 15 мин при температуре 45 °С, а полностью разрушается при 60 °С [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>].</p><p>Восприимчивые виды хозяев. Наиболее восприимчивой к заболеванию возрастной группой является молодь. С возрастом резистентность рыбы к инфекции повышается, но в нерестовый период взрослые особи опять становятся восприимчивыми к заболеванию.</p><p>Восприимчивость к разным штаммам вируса ИНГТ у рыб в пределах одного вида может сильно отличаться, и один и тот же штамм вируса может вызывать инфекцию различной интенсивности у разнообразных видов рыб.</p><p>Вирус заражает широкий спектр лососевых, включая арктического гольца (Salvelinus alpinus), атлантического лосося (Salmo salar), американского гольца (Salvelinus fontinalis), кунджу (Salvelinus leucomaenis), кумжу (Salmo trutta), чавычу (Oncorhynchus tshawytscha), кету (Oncorhynchus keta), кижуча (Oncorhynchus kisutch), лосося Кларка (Oncorhynchus clarkii), озерного гольца-кристивомера (Salvelinus namaycush), симу (Oncorhynchus masou), мраморную форель (Salmo marmoratus), радужную форель (Oncorhynchus mykiss), горного валька (Prosopium williamsoni) и нерку (Oncorhynchus nerka). Наиболее восприимчивыми к заболеванию являются радужная форель, чавыча, нерка и кета. Молодь нерки высоковосприимчива к вирусу ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit1">1</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit35">35</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit36">36</xref>].</p><p>Считается, что к заболеванию также восприимчивы белый осетр (Acipenser transmontanus), европейский угорь (Anguilla anguilla), длиннорылая колюшка (Aulorhynchus flavidus), тихоокеанская сельдь (Clupea pallasii), шайнер (Cymatogaster aggregata), тюрбо (Scophthalmus maximus), налим (Lota lota), сибирский хариус (Thymallus arcticus), желтый окунь (Perca flavescens) и все разновидности и виды обыкновенного карпа (Cyprinus carpio) [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>], но для подтверждения этого факта доказательств недостаточно. Несмотря на то, что эти виды менее восприимчивы к ИНГТ, они могут служить естественным резервуаром инфекции [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>].</p><p>Географическое распространение. Впервые вирус ИНГТ был обнаружен на рыбоводных заводах западного побережья Северной Америки в 1940-х годах [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>]. Исторически географический ареал данного возбудителя был ограничен западной (тихоокеанской) частью Северной Америки на территориях США и Канады, энзоотичных по заболеванию диких лососевых рыб [<xref ref-type="bibr" rid="cit7">7</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>].</p><p>Однако с экспортом инфицированной рыбы и икры в конце 1980-х годов болезнь была занесена в Европу и Азию. На данный момент заболевание распространено по всему миру, включая Японию, Южную Корею, Чили, Китай, Тайвань, Турцию и многие страны Европейского союза [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit43">43</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit44">44</xref>]. В России вирус ИНГТ выделяли в Краснодарском крае и Республике Карелии [<xref ref-type="bibr" rid="cit45">45</xref>].</p><p>С 2021 по 2023 г. вспышки ИНГТ были отмечены в Эстонии, Дании, Финляндии, Германии, Франции и Италии (рис. 2).</p><fig id="fig-2"><caption><p>Рис. 2. Распространение инфекционного некроза гемопоэтической ткани в мире в 2021–2023 гг. (данные ВОЗЖ) [46]</p><p>Fig. 2. The IHN spread in the world in 2021–2023 (WOAH data) [46]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g002.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/FXF5k6uXPRWQbAOmnSb8sCk9HLUOTIjOdjnqFZTZ.jpeg</uri></graphic></fig><p>В 2023 г. в Грузии впервые отмечена гибель рыб от инфекционного некроза гемопоэтической ткани на речной форелевой ферме недалеко от г. Гори. К 12 июля 2023 г. в хозяйстве из 40 тыс. особей 1,1 тыс. погибли и 1,5 тыс. были вынужденно уничтожены.</p><p>Механизм передачи инфекции. Источником инфекции являются больные рыбы, вирусоносители и свежепогибшие особи. Возбудитель ИНГТ проникает в организм через жабры, поврежденные кожные покровы, плавники и начальный отдел пищеварительного тракта. Передача патогена между рыбами происходит преимущественно горизонтально, большие количества вируса выделяются во внешнюю среду инфицированной молодью. В нерестовый период, когда взрослая рыба опять становится восприимчивой к инфекции, вирус выделяется в окружающую среду с половыми продуктами. При этом были зарегистрированы случаи вертикальной передачи через зараженную икру, хотя вероятность реализации данного способа передачи незначительна из-за распространенной практики дезинфекции икры раствором йодофора [<xref ref-type="bibr" rid="cit47">47</xref>]. Вирус передается при прямом контакте с больными особями, через воду, ил, рыбоводный инвентарь. Возможен оральный путь передачи при каннибализме, скармливании инфицированных рыб. Также распространению возбудителя способствуют бесконтрольные перевозки икры и рыб из неблагополучных по заболеванию хозяйств [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit48">48</xref>]. Занос возбудителя ИНГТ в разводимую на ферме популяцию приводит к циркуляции вируса в водоеме среди восприимчивых видов дикой рыбы. Продолжительность инфицирования вирусом ИНГТ отдельных особей варьирует в зависимости от температуры воды. После эпизоотии часть переболевших рыб становятся вирусоносителями, они приобретают стойкий иммунитет, вследствие чего в крови появляются антитела [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>]. Рыба с клиническими признаками заболевания и скрытые вирусоносители формируют естественный резервуар инфекции среди аквакультурной и дикой рыбы, однако состояние истинного пожизненного носительства возбудителя ИНГТ встречается редко. Зараженные рыбы выделяют вирус с мочой, слизью кишечника (реже – с фекалиями), с продуктами репродуктивной системы, через жабры, кожу и ткани плавников [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>].</p><p>Переносчики. Было выдвинуто предположение, что в некоторых случаях определенную роль в передаче вируса ИНГТ играют беспозвоночные организмы. Потенциальными механическими переносчиками вируса являются кровососущие паразиты рыб (пиявки, колеподы и др.), а также рыбоядные птицы [<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>].</p><p>Исследования, проведенные E. Jakob et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit51">51</xref>], показали, что в лабораторных условиях лососевая вошь – Lepeophtheirus salmonis (рис. 3) – может передавать вирус. Хотя считается, что данный паразит не передается от одного хозяина к другому, в условиях рыбоводческих ферм и лабораторных условиях такие передачи наблюдались, особенно когда плотность посадки рыб была высокой [<xref ref-type="bibr" rid="cit52">52</xref>]. При проведении опыта вшей, которых погружали в содержащую вирус ИНГТ воду, а также которые паразитировали на экспериментально зараженном атлантическом лососе, помещали в разные резервуары с нативным атлантическим лососем. Через 7–9 дней начали регистрировать гибель рыб в обоих аквариумах, по окончании эксперимента смертность составила 70,6 и 66,6% соответственно. Вирус ИНГТ был обнаружен у большинства подвергшихся воздействию рыб. По результатам исследования авторы сделали вывод, что лососевая вошь является механическим переносчиком возбудителя [<xref ref-type="bibr" rid="cit51">51</xref>].</p><fig id="fig-3"><caption><p>Рис. 3. Лососевая вошь (Lepeophtheirus salmonis) на атлантическом лососе (фото сотрудников референтной лаборатории по болезням аквакультуры ФГБУ «ВНИИЗЖ»)</p><p>Fig. 3. Salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) on Atlantic salmon (photo made by the staff of the Reference Laboratory for Aquaculture Diseases, FGBI “ARRIAH”)</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g003.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/mCzbRgztAdA7rZFST5cJ577oNkZornmyx2kF8Rb7.jpeg</uri></graphic></fig><p>Вирус ИНГТ был выделен из взрослых поденок (Callibaetis sp.), собранных в ручьях и на заброшенном рыбоводном заводе [<xref ref-type="bibr" rid="cit53">53</xref>].</p><p>Возможными переносчиками возбудителя ИНГТ считаются гидробионты, выращиваемые как в пресной, так и морской воде Северной Европы, а также в Средиземном море, но в меньшей степени. Кроме того, имеются доказательства потенциальной передачи вируса беспозвоночными, рыбоядными птицами и другими животными.</p><p>Карповые и другие пресноводные рыбы, а также морские рыбы и пресноводные ракообразные являются потенциальными переносчиками ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit54">54</xref>].</p><p>Смертность и заболеваемость. Вспышки ИНГТ-инфекции могут быть как острыми, так и хроническими в зависимости от вида, возраста, условий выращивания рыбы, температуры и в некоторой степени от штамма вируса. Потери при острой форме болезни могут составлять несколько процентов в день, а совокупный уровень смертности достигать 90–95% или выше [<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>]. Хроническая форма течения болезни характеризуется менее ярко выраженными признаками и умеренной, растянутой во времени гибелью рыб, при этом в прудах можно наблюдать рыбу на различных стадиях болезни.</p><p>Падеж может наступать непосредственно после выклева личинок и составлять 80–90%. Взрослые особи погибают реже, смертность среди годовиков чаще всего находится на уровне 20–30%. Гибель рыбы от заболевания происходит при температуре воды от 3 до 18 °C. На Аляске при температуре воды 1–2 °С у нерки ИНГТ вызывает 100%-ю смертность [<xref ref-type="bibr" rid="cit55">55</xref>].</p><p>Факторы, влияющие на развитие заболевания. Взрослая рыба менее подвержена риску развития острой формы болезни. Однако у отдельных особей отмечены значительные колебания восприимчивости к ИНГТ. Хорошее состояние рыбы, по-видимому, снижает степень восприимчивости к ИНГТ, тогда как одновременное бактериальное заражение (например, возбудителем бактериальной холодноводной болезни) может приводить к переходу субклинической в клиническую форму инфекций.</p><p>Наиболее важным фактором окружающей среды, который влияет на развитие инфекции, является температура воды. В естественных условиях заболевание развивается при температуре воды от 3 до 15 °С и затухает при дальнейшем ее повышении. Эпизоотии ИНГТ обычно имеют два пика: весенний (конец зимы – начало лета) и реже – осенний (конец лета и осень), но при соответствующей температуре могут наблюдаться в любое время года. Наиболее остро болезнь протекает при 10–12 °С. При этом может погибнуть до 80–100% молоди [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>]. У рыб массой 100–500 г заболевание, как правило, протекает в хронической форме и гибель не превышает 10–25%. Чем меньше возраст рыб, тем при более высокой температуре может развиться заболевание. Это связано с несовершенством системы иммунитета у ранней молоди рыб.</p><p>Даже при циркуляции вируса в популяции рыб вспышки ИНГТ может не возникнуть. Заболевание у рыбы провоцируется стрессовыми состояниями, которые вызваны различными манипуляциями и нарушением технологического режима выращивания (перевозки, сортировка, колебания температуры, ухудшение кислородного режима, резкие изменения рН, накопление в воде метаболитов и т. п.) [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit56">56</xref>].</p></sec><sec><title>ПАТОГЕНЕЗ</title><p>Инкубационный период при естественной инфекции у сеголетков при температуре воды 10–15 °С составляет около 7–12 дней [<xref ref-type="bibr" rid="cit57">57</xref>].</p><p>Считается, что воротами инфекции являются жабры, кожные покровы, плавники и начальный отдел пищеварительного тракта. Harmache A. et al. в 2006 г. доказали, что основания плавников являются основным местом проникновения вируса ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit58">58</xref>]. Вирус обладает повышенным тропизмом в отношении соединительной ткани, однако наиболее тяжело поражаются органы гемопоэза – почки и селезенка. Эти же органы являются местами наибольшего накопления вируса при острой форме инфекции [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>].</p><p>Размножение вируса в эндотелиальных клетках кровеносных капилляров, гемопоэтической ткани и экскреторных клетках почек предопределяет характер клинических признаков. Заболевание проявляется в форме экссудативно-геморрагического синдрома. Нарушение водно-электролитного баланса организма ведет к выходу плазмы из клеток крови в интерстициальное пространство и полость тела, клинически проявляющееся отеками и геморрагиями [<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>]. Эта форма заболевания прогрессирует до некроза кроветворных тканей почек и селезенки с генерализованной виремией и некрозом во всех тканях. Смерть наступает от почечной недостаточности, вызванной дисбалансом электролитов [<xref ref-type="bibr" rid="cit60">60</xref>].</p></sec><sec><title>ПАТОЛОГИЯ</title><p>Заболевание характеризуется развитием септического процесса, тяжелым поражением органов гемопоэза, кровоизлияниями в органы и ткани.</p><p>При классической (острой) форме ИНГТ, которая проявляется у молоди весом около 0,2–8,0 г, первыми признаками инфекции являются: анорексия и угнетение, утрата реакции на внешние раздражители. Больные рыбы приобретают темную окраску (рис. 4), ложатся на дно или поднимаются к поверхности воды и перемещаются к краям бассейна или канала, где течение слабее.</p><fig id="fig-4"><caption><p>Рис. 4. Мальки радужной форели. Особь слева, инфицированная вирусом ИНГТ, имеет темную окраску [61]</p><p>Fig. 4. Rainbow trout fry. IHNV infected fish (left) shows darker colouring [61]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g004.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/l15fCwpZO4OUgRy9bEPf0klOLkqdA5Iogf02Rcex.jpeg</uri></graphic></fig><p>Острая вспышка ИНГТ начинается с внезапной массовой гибели, причем первые рыбы могут погибать без внешних признаков заболевания [<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>]. У больных рыб отмечают апатию (вялость) вперемежку с приступами аномальной чрезмерной активности (плавание по спирали, рывки, судорожное плавание и плескание), потемнение кожи, пучеглазие, бледность жабр, петехиальные геморрагии в периокулярной соединительной ткани глаз, в межлучевой ткани оснований плавников, реже – на брюшке и позади головы, асцит (растянутое брюшко). Из ануса отдельных больных рыб свисают нитевидные слизистые тяжи кала с сероватым оттенком (иногда с примесью крови). У личинок наблюдаются множественные кровоизлияния в желточный мешок и гидроцефалия – припухлость на голове в форме шапочки (рис. 5). У мальков в области основания плавников и на поверхности слизистых оболочек полости тела, а также в желточном мешке наблюдаются геморрагии.</p><fig id="fig-5"><caption><p>Рис. 5. Характерная для ИНГТ опухоль на голове личинок нерки [55]</p><p>Fig. 5. Cephalic bumps on sockeye salmon fry, characteristic of IHN disease [55]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g005.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/kFyjnggRZFkiX6NfMHlK0BllwyRiFgj8iPtSPPP0.jpeg</uri></graphic></fig><p>При патолого-анатомическом вскрытии в полости тела обнаруживают скопление прозрачного желтоватого (иногда кровянистого) экссудата, множественные петехиальные кровоизлияния в перивисцеральной жировой ткани, мускулатуре, на брюшине, стенках кишечника и плавательного пузыря (рис. 6). В почках и печени наблюдают некротические изменения и геморрагии. Селезенка бледная. Отмечается отек печени, почек и селезенки (рис. 7). Желудочно-кишечный тракт свободен от пищи, иногда наполнен слизеподобным содержимым молочно-белого цвета с примесью крови [<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>].</p><fig id="fig-6"><caption><p>Рис. 6. Кровоизлияния на плавательном пузыре, кишечнике и жировой ткани у инфицированной вирусом ИНГТ рыбы [63]</p><p>Fig. 6. Haemorrhages on the swim bladder, intestine and fat tissue of IHNV infected fish [63]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g006.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/pp4YNUzKCYWn3sUifo3MnIm0uRtXrErVjHdP0571.jpeg</uri></graphic></fig><fig id="fig-7"><caption><p>Рис. 7. Увеличение селезенки у инфицированной вирусом ИНГТ рыбы [63]</p><p>Fig. 7. Spleenomegaly in IHNV infected fish [63]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g007.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/iPqxcrla2uSsA1Yob2zxCNcQV0sEc4Sl5Pudjdta.jpeg</uri></graphic></fig><p>У небольшой части рыб весом более 8 г обычно на завершающей стадии эпизоотии развивается нервная форма заболевания, проявляющаяся в нарушении поведения (чередование фаз повышенной возбудимости и угнетения). Внешние признаки заболевания, за исключением более темной окраски тела, у таких рыб, как правило, отсутствуют. Эта форма ИНГТ обусловлена поражением центральной нервной системы, поэтому вирус у этих рыб может быть обнаружен только в головном мозге. Предполагается, что попавший в организм вирус концентрируется в центральной нервной системе, где иммунологический надзор меньше, размножается примерно до 10⁶ БОЕ/г и разрушает ткани мозга, что приводит к искривлению позвоночника – сколиозным деформациям (рис. 8), развивающимся у 1–5% переболевших рыб.</p><fig id="fig-8"><caption><p>Рис. 8. Искривление позвоночника у смолта нерки, выжившего после переболевания ИНГТ [55]</p><p>Fig. 8. Scoliosis in sockeye salmon smolts surviving IHNV infection [55]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g008.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/eM2af8y50DmvDO2NCchP1HZ90SYcMS6GkiYsxPbW.jpeg</uri></graphic></fig><p>Третья форма ИНГТ – эпителиотропная, или жаберная, – встречается у более крупных рыб весом около 50–100 г. Крупные рыбы могут заразиться вирусом ИНГТ, но инфекция не становится системной из-за возраста рыбы или какого-либо другого фактора. Однако возбудитель очень эффективно реплицируется в эпителиальных клетках плавников, кожи и жабр и может вызывать серьезные проблемы с дыханием, что обусловлено анемичностью жабр, нередко кровоизлияниями (рис. 9). Смертность носит спорадический характер, но из-за того, что поражается более крупная рыба, потери (в массе продукции) могут быть высокими. Это в конечном итоге снижает показатели экономической эффективности предприятия (уменьшает привесы и увеличивает конверсию корма) [<xref ref-type="bibr" rid="cit64">64</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit65">65</xref>].</p><fig id="fig-9"><caption><p>Рис. 9. Анемия и кровоизлияния в жабрах у инфицированной вирусом ИНГТ рыбы [63]</p><p>Fig. 9. Anemia and hemorrhages in the gills of IHNV-infected fish [63]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g009.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/bzSbe03nWcnK4T6LF6MoOEoWvRO0yqDqf0u8cfUb.jpeg</uri></graphic></fig><p>У больных рыб обычно наблюдаются те или иные признаки заболевания из вышеописанного комплекса. Лишь у немногих пораженных особей в период эпизоотии можно встретить весь набор характерных клинических признаков и патолого-анатомических изменений. Ни один из указанных признаков не является патогномоничным. В крови пораженной молоди регистрируются пониженные уровни гематокрита и лейкоцитов, дегенерация лейкоцитов и тромбоцитов, а также большое количество продуктов распада клеток. Как и при других вирусных болезнях рыб с геморрагическим синдромом, в тяжелых случаях биохимический состав крови изменен.</p><p>При проведении гистологических исследований выявляют дегенеративный некроз в кроветворных тканях, почках, селезенке, печени, поджелудочной железе и пищеварительном тракте. Некроз эозинофильных гранулярных клеток в стенке кишечника является патогномоничным признаком инфекции, вызванной вирусом ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>].</p></sec><sec><title>ДИАГНОСТИКА</title><p>Предварительный диагноз ставят на основании анализа эпизоотологических данных, обнаруженных клинических признаков и патолого-анатомических изменений. Окончательный диагноз базируется на результатах вирусологических исследований, включающих выделение и серологическую идентификацию вируса, а при необходимости – постановку биопробы [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>].</p><p>Оптимальным патологическим материалом для лабораторных исследований являются селезенка, головная почка, сердце, головной мозг. В некоторых случаях необходимо исследовать овариальную жидкость и молоки.</p><p>Золотым стандартом для обнаружения возбудителя ИНГТ является вирусовыделение в культуре клеток с последующей его серологической и молекулярно-генетической идентификацией.</p><p>Для выделения вируса используют различные перевиваемые клеточные линии рыб: EPC, AS, BF-2, CHSE-214, FHM, ICO, RTH-149, RTG-2 и STE-137 [<xref ref-type="bibr" rid="cit8">8</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>]. Специфический цитопатический эффект в культуре клеток обнаруживается через 48–72 ч после инокуляции вируса (рис. 10).</p><fig id="fig-10"><caption><p>Рис. 10. Цитопатический эффект в культуре клеток CHSE-214 на 72-й час после заражения вирусом ИНГТ [66]</p><p>Fig.10. Cytopathic effect (CPE) on CHSE-214 cell line 72 hours post-inoculation [66]</p></caption><graphic xlink:href="veterinary-13-2-g010.jpeg"><uri content-type="original_file">https://cdn.elpub.ru/assets/journals/veterinary/2024/2/frA6ZKd9zpsqbfy3SfBiTrcGhooRKZAiDihRsJYc.jpeg</uri></graphic></fig><p>Серологическую идентификацию вируса ИНГТ проводят с помощью иммуноферментного анализа (ИФА), реакции иммунофлуоресценции (РИФ) и реакции нейтрализации (РН). Преимуществами ИФА является высокая чувствительность и специфичность, меньшая трудоемкость и длительность постановки [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit59">59</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit67">67</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit68">68</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit69">69</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit70">70</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit71">71</xref>]. Среди различных методов обнаружения возбудителя ИНГТ молекулярно-генетические методы диагностики являются наиболее быстрыми и чувствительными. К ним относятся полимеразная цепная реакция с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) и ОТ-ПЦР в реальном времени с применением праймеров для генов G и N для выявления РНК вируса [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit72">72</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit73">73</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit74">74</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit75">75</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit76">76</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit77">77</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit78">78</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit79">79</xref>].</p></sec><sec><title>ПРОФИЛАКТИКА И МЕРЫ БОРЬБЫ</title><p>Так как лечение ИНГТ на сегодняшний день не разработано и на рынке Российской Федерации отсутствуют коммерчески доступные вакцинные препараты, основными стратегиями борьбы с заболеванием являются обеспечение биобезопасности и выращивание генетически резистентных к заболеванию объектов аквакультуры.</p><p>Профилактика ИНГТ основана на предупреждении возникновения и распространения болезни в благополучных хозяйствах, обязательном выполнении ветеринарно-санитарных и рыбоводно-мелиоративных мероприятий, строгом соблюдении рыбоводных и ветеринарных требований, что исключает или существенно снижает риски заноса возбудителя ИНГТ в рыбоводческие хозяйства [<xref ref-type="bibr" rid="cit9">9</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>].</p><p>Завоз икры и рыбопосадочного материала осуществляется из хозяйств, благополучных по инфекционным заболеваниям, в число которых входит инфекционный некроз гемопоэтической ткани. В водоемах создаются оптимальные экологические и зоогигиенические условия для выращивания молоди. Кормовая база должна быть из доброкачественного сырья и являться свободной от вирусов [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>].</p><p>При поступлении новой партии посадочный материал и икра должны быть изолированы и содержаться в отдельных водоемах и лотках. Дезинфекция икринок – очень эффективный метод блокирования ассоциированной с икринками передачи ИНГТ в местах разведения аквакультуры. Данный метод широко используется в районах, где заболевание является эндемичным [<xref ref-type="bibr" rid="cit80">80</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit81">81</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit82">82</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit83">83</xref>].</p><p>При вспышке ИНГТ хозяйство признают неблагополучным по данному заболеванию и на него накладывается карантин (согласно приказу Минсельхоза России от 29 сентября 2005 г. № 173 «Об утверждении перечня карантинных и особо опасных болезней рыб»). Вся заболевшая рыба уничтожается. Рыбоводные емкости, водоснабжающие канавы дезинфицируют хлорной или негашеной известью. Инвентарь обрабатывают формалином, а малоценный уничтожают. Если в течение года у рыб не наблюдаются клинические признаки ИНГТ, а результаты вирусологических исследований отрицательные, карантин снимают [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit62">62</xref>].</p><p>Еще одной стратегией борьбы с болезнью является выращивание резистентных к вирусу популяций. В эндемичных районах применяется практика использования менее восприимчивых видов рыб (кижуч, гольцы, лосось Кларка, кумжа и др.) для снижения степени воздействия ИНГТ в аквакультуре.</p><p>Экспериментальные испытания триплоидных или внутривидовых гибридов рыб показали обнадеживающие результаты, и в последнее время исследователями активно изучаются генетические основы резистентности к ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit84">84</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit85">85</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit86">86</xref>].</p><p>В течение последних 50 лет проводятся научно-исследовательские работы по созданию экспериментальных вакцин для защиты лососевых от ИНГТ. В США, Германии и Канаде ведутся исследования по разработке генно-инженерных (рекомбинантных) вакцин для профилактики ИНГТ [<xref ref-type="bibr" rid="cit87">87</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit88">88</xref>].</p></sec><sec><title>ЗАКЛЮЧЕНИЕ</title><p>Инфекционный некроз гемопоэтической ткани является высококонтагиозным заболеванием, которое внесено в список опасных и экономически значимых болезней, обязательных к уведомлению ВОЗЖ. Данное заболевание способно поражать широкий спектр лососевых рыб и характеризуется высоким уровнем смертности (до 100%), а также ухудшением товарного вида продукции.</p><p>Анализируя ситуацию, следует отметить, что ИНГТ стабильно вызывает вспышки заболевания в странах с наиболее развитой аквакультурой, нанося значительный экономический ущерб. Эпизоотическая ситуация в мире продолжает быть напряженной, особенно в странах, граничащих с Российской Федерацией. Профилактика является единственным способом борьбы с болезнью.</p><p>1. International Committee on Taxonomy of Viruses (ICTV). https://ictv.global/taxonomy
</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Infection with infectious haematopoietic necrosis virus. Chapter 10.6. In: WOAH. Aquatic Animal Health Code. https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/aahc/current/chapitre_ihn.pdf</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Infection with infectious haematopoietic necrosis virus. Chapter 10.6. In: WOAH. Aquatic Animal Health Code. https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/aahc/current/chapitre_ihn.pdf</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Infection with infectious haematopoietic necrosis virus. Chapter 2.3.5. In: WOAH. Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/aahm/current/2.3.05_IHN.pdf</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Infection with infectious haematopoietic necrosis virus. Chapter 2.3.5. In: WOAH. Manual of Diagnostic Tests for Aquatic Animals. https://www.woah.org/fileadmin/Home/eng/Health_standards/aahm/current/2.3.05_IHN.pdf</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л. Некроз гемопоэтической ткани у производителей нерки и предполагаемые источники инфекции. Вопросы рыболовства. 2003; 4 (1): 93–102. https://www.elibrary.ru/hneowo</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L. Nekroz gemopoeticheskoi tkani u proizvoditelei nerki i predpolagaemye istochniki infektsii = Infectious hematopoetic necrosis in sockeye salmon broodstock and potential infection sources. Problems of Fishiries. 2003; 4 (1): 93–102. https://www.elibrary.ru/hneowo (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Щелкунов И. С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням культивируемых рыб. Ветеринария. 2006; 4: 22–25. https://www.elibrary.ru/htbdbn</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shchelkunov I. S. Epizootic situation of viral diseases of breeding fish. Veterinariya. 2006; 4: 22–25. https://www.elibrary.ru/htbdbn (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurath G., Higman K. H., Björklund H. V. Distribution and variation of NV genes in fish rhabdoviruses. Journal of General Virology. 1997; 78 (1): 113–117. https://doi.org/10.1099/0022-1317-78-1-113</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kurath G., Higman K. H., Björklund H. V. Distribution and variation of NV genes in fish rhabdoviruses. Journal of General Virology. 1997; 78 (1): 113–117. https://doi.org/10.1099/0022-1317-78-1-113</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Family – Rhabdoviridae. In: Virus Taxonomy. Eds. A. M. Q. King, M. J. Adams, E. B. Carstens, E. J. Lefkowitz. Amsterdam: Elsevier; 2012; 686–713. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384684-6.00057-4</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Family – Rhabdoviridae. In: Virus Taxonomy. Eds. A. M. Q. King, M. J. Adams, E. B. Carstens, E. J. Lefkowitz. Amsterdam: Elsevier; 2012; 686–713. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-384684-6.00057-4</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dixon P., Paley R., Alegria-Moran R., Oidtmann B. Epidemiological characteristics of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV): a review. Veterinary Research. 2016; 47:63. https://doi.org/10.1186/s13567-016-0341-1</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dixon P., Paley R., Alegria-Moran R., Oidtmann B. Epidemiological characteristics of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV): a review. Veterinary Research. 2016; 47:63. https://doi.org/10.1186/s13567-016-0341-1</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Акиншина Г. Т., Белоконь В. С., Билько Н. М., Гулюкин М. И., Гальнбек Т. В., Дагданова А. В. и др. Животная клетка в культуре (методы и применение в биотехнологии). 2-е изд., доп. М.: Спутник+; 2009. 652 с.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Akinshina G. T., Belokon V. S., Bilko N. M., Gulyukin M. I., Galnbek T. V., Dagdanova A. V., et al. Animal cell in culture (methods and implementation in biotechnology). 2nd ed., supplemented. Moscow: Sputnik+; 2009. 652 p. (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Богданова Е. А. Болезни лососевых и сиговых рыб в аквакультуре. СПб.: ГосНИОРХ; 1994; 14–17.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bogdanova E. A. Diseases of Aquacultured Salmonids and Whitefish. Saint Petersburg: GosNIORKH; 1994; 14–17. (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Miller T. A., Rapp J., Wastlhuber U., Hoffmann R. W., Enzmann P. J. Rapid and sensitive reverse transcriptase-polymerase chain reaction based detection and differential diagnosis of fish pathogenic rhabdoviruses in organ samples and cultured cells. Diseases of Aquatic Organisms. 1998; 34 (1): 13–20. https://doi.org/10.3354/dao034013</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Miller T. A., Rapp J., Wastlhuber U., Hoffmann R. W., Enzmann P. J. Rapid and sensitive reverse transcriptase-polymerase chain reaction based detection and differential diagnosis of fish pathogenic rhabdoviruses in organ samples and cultured cells. Diseases of Aquatic Organisms. 1998; 34 (1): 13–20. https://doi.org/10.3354/dao034013</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л. Описательное моделирование распространения вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани в популяции нерки. Известия ТИНРО. 2008; 152: 173–185. https://www.elibrary.ru/jvuidn</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L. Descriptive model of the infectious hematopoietic necrosis virus distribution in a sockeye population. Izvestiya TINRO. 2008; 152: 173–185. https://www.elibrary.ru/jvuidn (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Доронин М. И., Пыльнов В. А., Назаров Н. А., Рыбаков С. С. Выявление антигенов вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб с помощью метода латекс-агглютинации. Ветеринария. 2014; 9: 56–61. https://www.elibrary.ru/slplcr</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Doronin M. I., Pylnov V. A., Nasarov N. A., Rybakov S. S. Latex-agglutination tests for detection of salmon infectious hematopoietic necrosis virus antigen. Veterinariya. 2014; 9: 56–61. https://www.elibrary.ru/slplcr (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hostnik P., Barlic-Maganja D., Strancar M., Jencic V., Toplak I., Grom J. Influence of storage temperature on infectious hematopoietic necrosis virus detection by cell culture isolation and RT-PCR methods. Diseases of Aquatic Organisms. 2002; 52 (3): 179–184. https://doi.org/10.3354/dao052179</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hostnik P., Barlic-Maganja D., Strancar M., Jencic V., Toplak I., Grom J. Influence of storage temperature on infectious hematopoietic necrosis virus detection by cell culture isolation and RT-PCR methods. Diseases of Aquatic Organisms. 2002; 52 (3): 179–184. https://doi.org/10.3354/dao052179</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nishizawa T., Savaş H., Işıdan H., Üstündağ C., Iwamoto H., Yoshimizu M. Genotyping and pathogenicity of viral hemorrhagic septicemia virus from free-living turbot (Psetta maxima) in a Turkish coastal area of the Black Sea. Applied and Environmental Microbiology. 2006; 72 (4): 2373–2378. https://doi.org/10.1128/AEM.72.4.2373-2378.2006</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nishizawa T., Savaş H., Işıdan H., Üstündağ C., Iwamoto H., Yoshimizu M. Genotyping and pathogenicity of viral hemorrhagic septicemia virus from free-living turbot (Psetta maxima) in a Turkish coastal area of the Black Sea. Applied and Environmental Microbiology. 2006; 72 (4): 2373–2378. https://doi.org/10.1128/AEM.72.4.2373-2378.2006</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bearzotti M., Delmas B., Lamoureux A., Loustau A.-M., Chilmonczyk S., Bremont M. Fish rhabdovirus cell entry is mediated by fibronectin. Journal of Virology. 1999; 73 (9): 7703–7709. https://doi.org/10.1128/JVI.73.9.7703-7709.1999</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bearzotti M., Delmas B., Lamoureux A., Loustau A.-M., Chilmonczyk S., Bremont M. Fish rhabdovirus cell entry is mediated by fibronectin. Journal of Virology. 1999; 73 (9): 7703–7709. https://doi.org/10.1128/JVI.73.9.7703-7709.1999</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Einer-Jensen K., Ahrens P., Forsberg R., Lorenzen N. Evolution of the fish rhabdovirus viral haemorrhagic septicaemia virus. Journal of General Virology. 2004; 85 (5): 1167–1179. https://doi.org/10.1099/vir.0.79820-0</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Einer-Jensen K., Ahrens P., Forsberg R., Lorenzen N. Evolution of the fish rhabdovirus viral haemorrhagic septicaemia virus. Journal of General Virology. 2004; 85 (5): 1167–1179. https://doi.org/10.1099/vir.0.79820-0</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Gaudin Y., de Kinkelin P., Benmansour A. Mutations in the glycoprotein of viral haemorrhagic septicaemia virus that affect virulence for fish and the pH threshold for membrane fusion. Journal of General Virology. 1999; 80 (5): 1221–1229. https://doi.org/10.1099/0022-1317-80-5-1221</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Gaudin Y., de Kinkelin P., Benmansour A. Mutations in the glycoprotein of viral haemorrhagic septicaemia virus that affect virulence for fish and the pH threshold for membrane fusion. Journal of General Virology. 1999; 80 (5): 1221–1229. https://doi.org/10.1099/0022-1317-80-5-1221</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nishizawa T., Iida H., Takano R., Isshiki T., Nakajima K., Muroga K. Genetic relatedness among Japanese, American and European isolates of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) based on partial G and P genes. Diseases of Aquatic Organisms. 2002; 48 (2): 143–148. https://doi.org/10.3354/dao048143</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nishizawa T., Iida H., Takano R., Isshiki T., Nakajima K., Muroga K. Genetic relatedness among Japanese, American and European isolates of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) based on partial G and P genes. Diseases of Aquatic Organisms. 2002; 48 (2): 143–148. https://doi.org/10.3354/dao048143</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Schütze H., Enzmann P. J., Kuchling R., Mundt E., Niemann H., Mettenleiter T. C. Complete genomic sequence of the fish rhabdovirus infectious haematopoietic necrosis virus. Journal of General Virology. 1995; 76 (10): 2519–2527. https://doi.org/10.1099/0022-1317-76-10-2519</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Schütze H., Enzmann P. J., Kuchling R., Mundt E., Niemann H., Mettenleiter T. C. Complete genomic sequence of the fish rhabdovirus infectious haematopoietic necrosis virus. Journal of General Virology. 1995; 76 (10): 2519–2527. https://doi.org/10.1099/0022-1317-76-10-2519</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Björklund H. V., Higman K. H., Kurath G. The glycoprotein genes and gene junctions of the fish rhabdoviruses spring viremia of carp virus and hirame rhabdovirus: analysis of relationships with other rhabdoviruses. Virus Research. 1996; 42 (1–2): 65–80. https://doi.org/10.1016/0168-1702(96)01300-7</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Björklund H. V., Higman K. H., Kurath G. The glycoprotein genes and gene junctions of the fish rhabdoviruses spring viremia of carp virus and hirame rhabdovirus: analysis of relationships with other rhabdoviruses. Virus Research. 1996; 42 (1–2): 65–80. https://doi.org/10.1016/0168-1702(96)01300-7</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hoffmann B., Schütze H., Mettenleiter T. C. Determination of the complete genomic sequence and analysis of the gene products of the virus of spring viremia of carp, a fish rhabdovirus. Virus Research. 2002; 84 (1–2): 89–100. https://doi.org/10.1016/s0168-1702(01)00441-5</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hoffmann B., Schütze H., Mettenleiter T. C. Determination of the complete genomic sequence and analysis of the gene products of the virus of spring viremia of carp, a fish rhabdovirus. Virus Research. 2002; 84 (1–2): 89–100. https://doi.org/10.1016/s0168-1702(01)00441-5</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Morzunov S. P., Winton J. R., Nichol S. T. The complete genome structure and phylogenetic relationship of infectious hematopoietic necrosis virus. Virus Research. 1995; 38 (2–3): 175–192. https://doi.org/10.1016/0168-1702(95)00056-v</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Morzunov S. P., Winton J. R., Nichol S. T. The complete genome structure and phylogenetic relationship of infectious hematopoietic necrosis virus. Virus Research. 1995; 38 (2–3): 175–192. https://doi.org/10.1016/0168-1702(95)00056-v</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lorenzen N., Lapatra S. E. Immunity to rhabdoviruses in rainbow trout: the antibody response. Fish and Shellfish Immunology. 1999; 9 (4): 345–360. https://doi.org/10.1006/fsim.1999.0194</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lorenzen N., Lapatra S. E. Immunity to rhabdoviruses in rainbow trout: the antibody response. Fish and Shellfish Immunology. 1999; 9 (4): 345–360. https://doi.org/10.1006/fsim.1999.0194</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hoffmann B., Beer M., Schütze H., Mettenleiter T. C. Fish rhabdoviruses: Molecular epidemiology and evolution. In: The World of Rhabdoviruses. Current Topics in Microbiology and Immunology. Berlin, Heidelberg: Springer; 2005; 292: 81–117. https://doi.org/10.1007/3-540-27485-5_5</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hoffmann B., Beer M., Schütze H., Mettenleiter T. C. Fish rhabdoviruses: Molecular epidemiology and evolution. In: The World of Rhabdoviruses. Current Topics in Microbiology and Immunology. Berlin, Heidelberg: Springer; 2005; 292: 81–117. https://doi.org/10.1007/3-540-27485-5_5</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurath G., Ahern K., Pearson G. D., Leong J. C. Molecular cloning of the six mRNA species of infectious hematopoietic necrosis virus, a fish rhabdovirus, and gene order determination by R-loop mapping. Journal of Virology. 1985; 53 (2): 469–476. https://doi.org/10.1128/JVI.53.2.469-476.1985</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kurath G., Ahern K., Pearson G. D., Leong J. C. Molecular cloning of the six mRNA species of infectious hematopoietic necrosis virus, a fish rhabdovirus, and gene order determination by R-loop mapping. Journal of Virology. 1985; 53 (2): 469–476. https://doi.org/10.1128/JVI.53.2.469-476.1985</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Garver K. A., Troyer R. M., Kurath G. Two distinct phylogenetic clades of infectious hematopoietic necrosis virus overlap within the Columbia River basin. Diseases of Aquatic Organisms. 2003; 55 (3): 187–203. https://doi.org/10.3354/dao055187</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Garver K. A., Troyer R. M., Kurath G. Two distinct phylogenetic clades of infectious hematopoietic necrosis virus overlap within the Columbia River basin. Diseases of Aquatic Organisms. 2003; 55 (3): 187–203. https://doi.org/10.3354/dao055187</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Troyer R. M., LaPatra S. E., Kurath G. Genetic analyses reveal unusually high diversity of infectious haematopoietic necrosis virus in rainbow trout aquaculture. Journal of General Virology. 2000; 81 (12): 2823–2832. https://doi.org/10.1099/0022-1317-81-12-2823</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Troyer R. M., LaPatra S. E., Kurath G. Genetic analyses reveal unusually high diversity of infectious haematopoietic necrosis virus in rainbow trout aquaculture. Journal of General Virology. 2000; 81 (12): 2823–2832. https://doi.org/10.1099/0022-1317-81-12-2823</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurath G., Garver K. A., Troyer R. M., Emmenegger E. J., Einer-Jensen K., Anderson E. D. Phylogeography of infectious haematopoietic necrosis virus in North America. Journal of General Virology. 2003; 84 (4): 803–814. https://doi.org/10.1099/vir.0.18771-0</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kurath G., Garver K. A., Troyer R. M., Emmenegger E. J., Einer-Jensen K., Anderson E. D. Phylogeography of infectious haematopoietic necrosis virus in North America. Journal of General Virology. 2003; 84 (4): 803–814. https://doi.org/10.1099/vir.0.18771-0</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Enzmann P. J., Kurath G., Fichtner D., Bergmann S. M. Infectious hematopoietic necrosis virus: monophyletic origin of European isolates from North American genogroup M. Diseases of Aquatic Organisms. 2005; 66 (3): 187–195. https://doi.org/10.3354/dao066187</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Enzmann P. J., Kurath G., Fichtner D., Bergmann S. M. Infectious hematopoietic necrosis virus: monophyletic origin of European isolates from North American genogroup M. Diseases of Aquatic Organisms. 2005; 66 (3): 187–195. https://doi.org/10.3354/dao066187</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yu Z.-H., Deng M.-L., Geng Y., Zhou Y., Wang K.-Y., Chen D.-F., et al. An outbreak of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection in cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Southwest China. Aquaculture Research. 2016; 47 (7): 2355–2362. https://doi.org/10.1111/are.12680</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yu Z.-H., Deng M.-L., Geng Y., Zhou Y., Wang K.-Y., Chen D.-F., et al. An outbreak of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) infection in cultured rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Southwest China. Aquaculture Research. 2016; 47 (7): 2355–2362. https://doi.org/10.1111/are.12680</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nishizawa T., Kinoshita S., Kim W.-S., Higashi S., Yoshimizu M. Nucleotide diversity of Japanese isolates of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) based on the glycoprotein gene. Diseases of Aquatic Organisms. 2006; 71 (3): 267–272. https://doi.org/10.3354/dao071267</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nishizawa T., Kinoshita S., Kim W.-S., Higashi S., Yoshimizu M. Nucleotide diversity of Japanese isolates of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) based on the glycoprotein gene. Diseases of Aquatic Organisms. 2006; 71 (3): 267–272. https://doi.org/10.3354/dao071267</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">LaPatra S. E., Groff J. M., Fryer J. L., Hedrick R. P. Comparative pathogenesis of three strains of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Diseases of Aquatic Organisms. 1990; 8: 105–112.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">LaPatra S. E., Groff J. M., Fryer J. L., Hedrick R. P. Comparative pathogenesis of three strains of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Diseases of Aquatic Organisms. 1990; 8: 105–112.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">LaPatra S. E., Fryer J. L., Rohovec J. S. Virulence comparison of different electrophero-types of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1993; 16: 115–120.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">LaPatra S. E., Fryer J. L., Rohovec J. S. Virulence comparison of different electrophero-types of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1993; 16: 115–120.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wolf K. Fish viruses and fish viral diseases. Ithaca, London: Comstock Publishing Associates; Cornell University Press; 1988. 476 p.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wolf K. Fish viruses and fish viral diseases. Ithaca, London: Comstock Publishing Associates; Cornell University Press; 1988. 476 p.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Traxler G. S., Roome J. R., Lauda K. A., LaPatra S. Appearance of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) and neutralizing antibodies in sockeye salmon Oncorhynchus nerka during their migration and maturation period. Diseases of Aquatic Organisms. 1997; 28 (1): 31–38. https://doi.org/10.3354/dao028031</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Traxler G. S., Roome J. R., Lauda K. A., LaPatra S. Appearance of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) and neutralizing antibodies in sockeye salmon Oncorhynchus nerka during their migration and maturation period. Diseases of Aquatic Organisms. 1997; 28 (1): 31–38. https://doi.org/10.3354/dao028031</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л. Влияние вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани на популяцию нерки Oncorhynchus nerka (Salmoniformes, Salmonidae) озера Начикинское. Вопросы ихтиологии. 2010; 50 (3): 411–416. https://www.elibrary.ru/msqohr</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L. The effect of the infectious hematopoietic necrosis virus on the population of sockeye salmon Oncorhynchus nerka (Salmoniformes, Salmonidae) from Lake Nachikinskoe. Journal of Ichthyology. 2010; 50 (5): 402–407. https://doi.org/10.1134/S0032945210050061</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Воронин В. Н., Кузнецова Е. В., Стрелков Ю. А., Чернышёва Н. Б. Болезни рыб в аквакультуре России: практическое руководство. СПб.: ГосНИОРХ; 2011; 143–146.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Voronin V. N., Kuznetsova E. V., Strelkov Yu. A., Chernysheva N. B. Diseases of Aquacultured Fish in Russia: Manual. Saint Petersburg: GosNIORKH; 2011; 143–146. (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рахконен Р., Веннерстрем П., Ринтамяки П., Каннел Р. Здоровая рыба: профилактика, диагностикa и лечение болезней. 2-е изд., перераб. и доп. Хельсинки: НИИ охотничьего и рыбного хозяйства Финляндии; 2013; 43–44.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rahkonen R., Vennerström P., Rintamäki P., Kannel R. Terve kala: Tautien ennaltaehkäisy, tunnistus ja hoito. Toinen tarkistettu painos. Helsinki: Riistan-ja kalatalouden tutkimuslaitos; 2012; 38–39. (in Finnish)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Васильков Г. В., Грищенко Л. И., Енгашев В. Г., Канаев А. И., Ларькова З. И. Болезни рыб: справочник. Под ред. В. С. Осетрова. 2-е изд., перераб. и доп. М.: Агропромиздат; 1989. 288 с.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vasilkov G. V., Grishchenko L. I., Engashev V. G., Kanaev A. I., Larkova Z. I. Fish Diseases: Reference Guide. Ed. by V. S. Osetrov. 2nd ed., revised and supplemented. Moscow: Agropromizdat; 1989. 288 p. (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Scientific Opinion of the Panel on Animal Health and Welfare on a request from the European Commission on possible vector species and live stages of susceptible species not transmitting disease as regards certain fish diseases. EFSA Journal. 2007; 584: 1–163. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2007.584</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Scientific Opinion of the Panel on Animal Health and Welfare on a request from the European Commission on possible vector species and live stages of susceptible species not transmitting disease as regards certain fish diseases. EFSA Journal. 2007; 584: 1–163. https://doi.org/10.2903/j.efsa.2007.584</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Rexhepi A., Bërxholi K., Scheinert P., Hamidi A., Sherifi K. Study of viral diseases in some freshwater fish in the Republic of Kosovo. Veterinarski Arhiv. 2011; 81 (3): 405–413.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rexhepi A., Bërxholi K., Scheinert P., Hamidi A., Sherifi K. Study of viral diseases in some freshwater fish in the Republic of Kosovo. Veterinarski Arhiv. 2011; 81 (3): 405–413.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hill B., Reese A., Dixon P., Oidtmann B., Paley R., Peeler E., et al. Epidemiology of different agents causing disease in aquatic animals: EFSA Supporting Publications. 2010; 7 (1):37E. https://doi.org/10.2903/sp.efsa.2010.EN-37</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hill B., Reese A., Dixon P., Oidtmann B., Paley R., Peeler E., et al. Epidemiology of different agents causing disease in aquatic animals: EFSA Supporting Publications. 2010; 7 (1):37E. https://doi.org/10.2903/sp.efsa.2010.EN-37</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Апасова Л. Ю., Мороз Н. В., Рыбаков С. С., Еремеева Т. Б. Очистка и концентрирование вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб. Труды Федерального центра охраны здоровья животных. 2009; 7: 234–239. https://www.elibrary.ru/moujpj</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Apasova L. Yu., Moroz N. V., Rybakov S. S., Yeremeyeva T. B. Purification and concentration of salmon infectious hematopoietic necrosis virus. Proceedings of the Federal Centre for Animal Health. 2009; 7: 234–239. https://www.elibrary.ru/moujpj (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Завьялова Е. А., Дрошнев А. Е., Булина К. Ю., Карпова М. А. Мониторинг эпизоотической ситуации по болезням рыб: факты и перспективы. Труды ВИЭВ. 2018; 80 (1): 182–189. https://doi.org/10.30917/ATT-PRINT-2018-1</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zavyalova E. A., Droshnev A. E., Bulina K. Y., Carpova M. A. Monitoring of epizootic situation on fish diseases: facts and prospects. Trudi VIEV. 2018; 80 (1): 182–189. https://doi.org/10.30917/ATT-PRINT-2018-1 (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Завьялова Е. А., Дрошнев А. Е., Булина К. Ю., Гулюкин А. М. Эпизоотическая ситуация по болезням рыб: методы исследования, тенденции, перспективы. Российский журнал «Проблемы ветеринарной санитарии, гигиены и экологии». 2018; (1): 136–142. https://www.elibrary.ru/voiiay</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zavyalova E. A., Droshnev A. E., Bulina K. Yu., Gulyukin A. M. Epizootic situation on fish diseases: research methods, trends, prospects. Russian Journal “Problems of Veterinary Sanitation, Hygiene and Ecology”. 2018; (1): 136–142. https://www.elibrary.ru/voiiay (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">WOAH. World Animal Health Information System: Disease situation. https://wahis.woah.org/#/dashboards/country-or-disease-dashboard</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">WOAH. World Animal Health Information System: Disease situation. https://wahis.woah.org/#/dashboards/country-or-disease-dashboard</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Winton J. R. Recent advances in detection and control of infectious hematopoietic necrosis virus in aquaculture. Annual Review of Fish Diseases. 1991; 1: 83–93. https://doi.org/10.1016/0959-8030(91)90024-E</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Winton J. R. Recent advances in detection and control of infectious hematopoietic necrosis virus in aquaculture. Annual Review of Fish Diseases. 1991; 1: 83–93. https://doi.org/10.1016/0959-8030(91)90024-E</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Oidtmann B. C., Peeler E. J., Thrush M. A., Cameron A. R., Reese R. A., Pearce F. M., et al. Expert consultation on risk factors for introduction of infectious pathogens into fish farms. Preventive Veterinary Medicine. 2014; 115 (3–4): 238–254. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2014.03.017</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Oidtmann B. C., Peeler E. J., Thrush M. A., Cameron A. R., Reese R. A., Pearce F. M., et al. Expert consultation on risk factors for introduction of infectious pathogens into fish farms. Preventive Veterinary Medicine. 2014; 115 (3–4): 238–254. https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2014.03.017</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Lapatra S. E., Turner T., Lauda K. A., Jones G. R., Walker S. Characterization of the humoral response of rainbow trout to infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of Aquatic Animal Health. 1993; 5 (3): 165–171. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1993)005&lt;0165:COTHRO&gt;2.3.CO;2</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Lapatra S. E., Turner T., Lauda K. A., Jones G. R., Walker S. Characterization of the humoral response of rainbow trout to infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of Aquatic Animal Health. 1993; 5 (3): 165–171. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1993)005&lt;0165:COTHRO&gt;2.3.CO;2</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bootland L. M., Leong J. A. С. Infectious haematopoietic necrosis virus. In: Fish Diseases and Disorders. Vol. 3: Viral, Bacterial and Fungal Infections. Ed. by P. T. K. Woo, D. W. Bruno. 2nd ed. Wallingford: CABI; 2011; 66–109. https://doi.org/10.1079/9781845935542.0066</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bootland L. M., Leong J. A. С. Infectious haematopoietic necrosis virus. In: Fish Diseases and Disorders. Vol. 3: Viral, Bacterial and Fungal Infections. Ed. by P. T. K. Woo, D. W. Bruno. 2nd ed. Wallingford: CABI; 2011; 66–109. https://doi.org/10.1079/9781845935542.0066</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jakob E., Barker D. E., Garver K. A. Vector potential of the salmon louse Lepeophtheirus salmonis in the transmission of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV). Diseases of Aquatic Organisms. 2011; 97 (2): 155–165. https://doi.org/10.3354/dao02414</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jakob E., Barker D. E., Garver K. A. Vector potential of the salmon louse Lepeophtheirus salmonis in the transmission of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV). Diseases of Aquatic Organisms. 2011; 97 (2): 155–165. https://doi.org/10.3354/dao02414</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ritchie G. The host transfer ability of Lepeophtheirus salmonis (Copepoda: Caligidae) from farmed Atlantic salmon, Salmo salar L. Journal of Fish Diseases. 1997; 20 (3): 153–157. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1997.00285.x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ritchie G. The host transfer ability of Lepeophtheirus salmonis (Copepoda: Caligidae) from farmed Atlantic salmon, Salmo salar L. Journal of Fish Diseases. 1997; 20 (3): 153–157. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.1997.00285.x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Shors S. T., Winston V. Detection of infectious hematopoietic necrosis virus in an invertebrate (Callibaetis sp.). American Journal of Veterinary Research. 1989; 50 (8): 1307–1309. PMID: 2782712</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Shors S. T., Winston V. Detection of infectious hematopoietic necrosis virus in an invertebrate (Callibaetis sp.). American Journal of Veterinary Research. 1989; 50 (8): 1307–1309. PMID: 2782712</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yamamoto T., Arakawa C. K., Batts W. N., Winton J. R. Comparison of infectious hematopoietic necrosis in natural and experimental infections of spawning salmonids by infectivity and immunohistochemistry. In: Viruses of Lower Vertebrates. Ed. by W. Ahne, E. Kurstak. Berlin, Heidelberg: Springer; 1989; 411–429. https://doi.org/10.1007/978-3-642-83727-2_37</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yamamoto T., Arakawa C. K., Batts W. N., Winton J. R. Comparison of infectious hematopoietic necrosis in natural and experimental infections of spawning salmonids by infectivity and immunohistochemistry. In: Viruses of Lower Vertebrates. Ed. by W. Ahne, E. Kurstak. Berlin, Heidelberg: Springer; 1989; 411–429. https://doi.org/10.1007/978-3-642-83727-2_37</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit55"><label>55</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Meyers T., Burton T., Bentz C., Starkey N. Common disease of wild and cultured fishes in Alaska. Anchorage: Alaska Department of Fish and Game; 2008. 106 p. https://www.metabunk.org/attachments/fish_disease_book-pdf.16003</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Meyers T., Burton T., Bentz C., Starkey N. Common disease of wild and cultured fishes in Alaska. Anchorage: Alaska Department of Fish and Game; 2008. 106 p. https://www.metabunk.org/attachments/fish_disease_book-pdf.16003</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit56"><label>56</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л. Факторы, влияющие на превалентность вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани (IHNV) в популяциях половозрелой нерки в нерестовых озерах Камчатки. Исследования водных биологических ресурсов Камчатки и северо-западной части Тихого океана. 2009; (13): 88–94. https://www.elibrary.ru/knpueh</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L. Factors influenced on prevalence of infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) into adult sockeye salmon populations in spawning lakes of Kamchatka. The researches of the aquatic biological resources of Kamchatka and the North-West Part of the Pacific Ocean. 2009; (13): 88–94. https://www.elibrary.ru/knpueh (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit57"><label>57</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Павлов Д. К., Пичуева А. А. Анализ эпизоотической ситуации в мире по вирусным болезням рыб. Ветеринария сегодня. 2015; (2): 54–58. https://www.elibrary.ru/umtujt</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Pavlov D. K., Pichuyeva A. A. Analysis of fish viral disease epidemic situation worldwide. Veterinary Science Today. 2015; (2): 54–58. https://www.elibrary.ru/umtujt (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit58"><label>58</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Harmache A., LeBerre M., Droineau S., Giovannini M., Brémont M. Bioluminescence imaging of live infected salmonids reveals that the fin bases are the major portal of entry for Novirhabdovirus. Journal of Virology. 2006; 80 (7): 3655–3659. https://doi.org/10.1128/JVI.80.7.3655-3659.2006</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Harmache A., LeBerre M., Droineau S., Giovannini M., Brémont M. Bioluminescence imaging of live infected salmonids reveals that the fin bases are the major portal of entry for Novirhabdovirus. Journal of Virology. 2006; 80 (7): 3655–3659. https://doi.org/10.1128/JVI.80.7.3655-3659.2006</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit59"><label>59</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Доронин М. И., Пыльнов В. А., Рыбаков С. С. Метод латексагглютинации для выявления антител к вирусу инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб. Вестник Удмуртского университета. Серия Биология. Науки о Земле. 2015; 25 (2): 135–144. https://www.elibrary.ru/uapuiv</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Doronin M. I., Pylnov V. A., Rybakov S. S. Method of latex agglutination for detecting antibodies to infectious hematopoietic necrosis virus in salmon fishes. Bulletin of Udmurt University. Series Biology. Earth Sciences. 2015; 25 (2): 135–144. https://www.elibrary.ru/uapuiv (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit60"><label>60</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Rodriguez Saint-Jean S., Borrego J. J., Perez-Prieto S. I. Infectious pancreatic necrosis virus: biology, pathogenesis, and diagnostic methods. Advances in Virus Research. 2003; 62: 113–165. https://doi.org/10.1016/s0065-3527(03)62003-8</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rodriguez Saint-Jean S., Borrego J. J., Perez-Prieto S. I. Infectious pancreatic necrosis virus: biology, pathogenesis, and diagnostic methods. Advances in Virus Research. 2003; 62: 113–165. https://doi.org/10.1016/s0065-3527(03)62003-8</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit61"><label>61</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Department of Agriculture, Water and the Environment. Aquatic Animal Diseases Significant to Australia: Identification Field Guide. 5th ed. Canberra: Australian Government; Department of Agriculture, Water and the Environment; 2020. 341 p. https://www.agriculture.gov.au/sites/default/files/documents/field-guide-5th-edition.pdf</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Department of Agriculture, Water and the Environment. Aquatic Animal Diseases Significant to Australia: Identification Field Guide. 5th ed. Canberra: Australian Government; Department of Agriculture, Water and the Environment; 2020. 341 p. https://www.agriculture.gov.au/sites/default/files/documents/field-guide-5th-edition.pdf</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit62"><label>62</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ванятинский В. Ф., Мирзоева Л. М., Поддубная А. В. Болезни рыб: учебник. Под ред. В. А. Мусселиус. М.: Пищевая промышленность; 1979. 232 с.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Vanyatinsky V. F., Mirzoeva L. M., Poddubnaya A. V. Fish Diseases: Study Guide. Ed. by V. A. Musselius. Moscow: Pishchevaya promyshlennost’; 1979. 232 p. (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit63"><label>63</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zrnčić S., Radosavljević V. West Balkans Regional Aquatic Animal Disease Diagnostic Manual (TCP/RER/3402). Rome: FAO; 2017. 78 p. https://www.fao.org/3/i6848e/i6848e.pdf</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zrnčić S., Radosavljević V. West Balkans Regional Aquatic Animal Disease Diagnostic Manual (TCP/RER/3402). Rome: FAO; 2017. 78 p. https://www.fao.org/3/i6848e/i6848e.pdf</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit64"><label>64</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bergmann S. M., Fichtner D., Skall H. F., Schlotfeldt H. J., Olesen N. J. Age- and weight-dependent susceptibility of rainbow trout Oncorhynchus mykiss to isolates of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) of varying virulence. Diseases of Aquatic Organisms. 2003; 55 (3): 205–210. https://doi.org/10.3354/dao055205</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bergmann S. M., Fichtner D., Skall H. F., Schlotfeldt H. J., Olesen N. J. Age- and weight-dependent susceptibility of rainbow trout Oncorhynchus mykiss to isolates of infectious haematopoietic necrosis virus (IHNV) of varying virulence. Diseases of Aquatic Organisms. 2003; 55 (3): 205–210. https://doi.org/10.3354/dao055205</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit65"><label>65</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">LaPatra S. E., Evilia C., Winston V. Positively selected sites on the surface glycoprotein (G) of infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of General Virology. 2008; 89 (3): 703–708. https://doi.org/10.1099/vir.0.83451-0</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">LaPatra S. E., Evilia C.,WinstonV. Positively selected sites on the surface glycoprotein (G) of infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of General Virology. 2008; 89 (3): 703–708. https://doi.org/10.1099/vir.0.83451-0</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit66"><label>66</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">LaPatra S. E. Infectious hematopoietic necrosis (2012). In: AFS-FHS (American Fisheries Society-Fish Health Section). FHS blue book: suggested procedures for the detection and identification of certain finfish and shellfish pathogens. 2020. https://units.fisheries.org/fhs/fish-health-section-bluebook-2020/section-1-diagnostic</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">LaPatra S. E. Infectious hematopoietic necrosis (2012). In: AFS-FHS (American Fisheries Society-Fish Health Section). FHS blue book: suggested procedures for the detection and identification of certain finfish and shellfish pathogens. 2020. https://units.fisheries.org/fhs/fish-health-section-bluebook-2020/section-1-diagnostic</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit67"><label>67</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jorgensen P. E. V., Olesen N. J., Lorenzen N., Winton J. R., Ristow S. S. Infectious hematopoietic necrosis (IHN) and viral hemorrhagic septicemia (VHS): Detection of the trout antibodies to the causative viruses by means of plaque neutralization, immunofluorescence, and enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Aquatic Animal Health. 1991; 3 (2): 100–108. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1991)003&lt;0100: IHNIAV&gt;2.3.CO;2</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jorgensen P. E. V., Olesen N. J., Lorenzen N., Winton J. R., Ristow S. S. Infectious hematopoietic necrosis (IHN) and viral hemorrhagic septicemia (VHS): Detection of the trout antibodies to the causative viruses by means of plaque neutralization, immunofluorescence, and enzyme-linked immunosorbent assay. Journal of Aquatic Animal Health. 1991; 3 (2): 100–108. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1991)003&lt;0100:IHNIAV&gt;2.3.CO;2</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit68"><label>68</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Апасова Л. Ю., Рыбаков С. С. Применение непрямого варианта иммуноферментного анализа для выявления вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых. Труды Федерального центра охраны здоровья животных. 2010; 8: 204–213. https://www.elibrary.ru/ndhhqd</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Apasova L. Yu., Rybakov S. S. Use of indirect enzyme-linked immunosorbent assay for detection of infectious hematopoietic necrosis virus. Proceedings of the Federal Centre for Animal Health. 2010; 8: 204–213. https://www.elibrary.ru/ndhhqd (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit69"><label>69</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Тарасов В. Е., Рудакова С. Л., Бочкова Е. В., Шепеляковская А. О. Сравнительный анализ ИФА и «золотого стандарта» при идентификации вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани у половозрелой нерки. Современные проблемы и перспективы развития рыбохозяйственного комплекса: сборник трудов IX Научно-практической конференции молодых ученых с международным участием, посвященной 140-летию ВНИРО (Москва, 11–12 ноября 2021 г.). М.: ВНИРО; 2021; 163–166. https://www.elibrary.ru/zgbpag</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tarasov V. E., Rudakova S. L., Bochkova E. V., Shepelyakovskaya A. O. Sravnitel’nyi analiz IFA i «zolotogo standarta» pri identifikatsii virusa infektsionnogo nekroza gemopoeticheskoi tkani u polovozreloi nerki = Comparative analysis of ELISA and the golden standard for infectious hematopoetic necrosis virus identification from adult sockeye salmon. Sovremennye problemy i perspektivy razvitiya rybokhozyaistvennogo kompleksa: sbornik trudov IX Nauchno-prakticheskoi konferentsii molodykh uchenykh s mezhdunarodnym uchastiem, posvyashchennoi 140-letiyu VNIRO (Moskva, 11–12 noyabrya 2021 g.) = Current challenges and prospects of aquaculture development: Proceedings of IXth Scientific and practical conference of earlycareer scientists with international participations, devoted to 140-anniversary of the Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (Moscow, 11–12 November, 2021). Moscow: VNIRO; 2021; 163–166. https://www.elibrary.ru/zgbpag (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit70"><label>70</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Arnzen J. M., Ristow S. S., Hesson C. P., Lientz J. Rapid fluorescent antibody tests for infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) utilizing monoclonal antibodies to the nucleoprotein and glycoprotein. Journal of Aquatic Animal Health. 1991; 3 (2): 109–113. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1991)003&lt;0109:RFATFI&gt;2.3.CO;2</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Arnzen J. M., Ristow S. S., Hesson C. P., Lientz J. Rapid fluorescent antibody tests for infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV) utilizing monoclonal antibodies to the nucleoprotein and glycoprotein. Journal of Aquatic Animal Health. 1991; 3 (2): 109–113. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1991)003&lt;0109:RFATFI&gt;2.3.CO;2</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit71"><label>71</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">LaPatra S. E., Roberti K. A., Rohovec J. S., Fryer J. L. Fluorescent antibody test for the rapid diagnosis of infectious hematopoietic necrosis. Journal of Aquatic Animal Health. 1989; 1 (1): 29–36. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1989)001&lt;0029:FATFTR&gt;2.3.CO;2</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">LaPatra S. E., Roberti K. A., Rohovec J. S., Fryer J. L. Fluorescent antibody test for the rapid diagnosis of infectious hematopoietic necrosis. Journal of Aquatic Animal Health. 1989; 1 (1): 29–36. https://doi.org/10.1577/1548-8667(1989)001&lt;0029:FATFTR&gt;2.3.CO;2</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit72"><label>72</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Доронин М. И., Пыльнов В. А., Мудрак Н. С. Разработка метода ОТ-ПЦР в режиме реального времени для выявления вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб. Научный альманах. 2015; 8 (10): 1052–1057. https://doi.org/10.17117/na.2015.08.1052</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Doronin M. I., Pilnov V. A., Mudrak N. S. Development of the method of RT-PCR in real time to detect a virus infectious hematopoietic necrosis tissue salmonids. Science Almanac. 2015; 8 (10): 1052–1057. https://doi.org/10.17117/na.2015.08.1052 (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit73"><label>73</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dhar A. K., Bowers R. M., Licon K. S., LaPatra S. E. Detection and quantification of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by SYBR Green real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods. 2008; 147 (1): 157– 166. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2007.08.026</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dhar A. K., Bowers R. M., Licon K. S., LaPatra S. E. Detection and quantification of infectious hematopoietic necrosis virus in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by SYBR Green real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction. Journal of Virological Methods. 2008; 147 (1): 157– 166. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2007.08.026</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit74"><label>74</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Overturf K., LaPatra S., Powell M. Real-time PCR for the detection and quantitative analysis of IHNV in salmonids. Journal of Fish Diseases. 2001; 24 (6): 325–333. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2001.00296.x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Overturf K., LaPatra S., Powell M. Real-time PCR for the detection and quantitative analysis of IHNV in salmonids. Journal of Fish Diseases. 2001; 24 (6): 325–333. https://doi.org/10.1046/j.1365-2761.2001.00296.x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit75"><label>75</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Purcell M. K., Hart S. A., Kurath G., Winton J. R. Strand-specific, realtime RT-PCR assays for quantification of genomic and positive-sense RNAs of the fish rhabdovirus, Infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of Virological Methods. 2006; 132 (1–2): 18–24. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2005.08.017</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Purcell M. K., Hart S. A., Kurath G., Winton J. R. Strand-specific, realtime RT-PCR assays for quantification of genomic and positive-sense RNAs of the fish rhabdovirus, Infectious hematopoietic necrosis virus. Journal of Virological Methods. 2006; 132 (1–2): 18–24. https://doi.org/10.1016/j.jviromet.2005.08.017</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit76"><label>76</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Purcell M. K., Thompson R. L., Garver K. A., Hawley L. M., Batts W. N., Sprague L., et al. Universal reverse-transcriptase real-time PCR for infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV). Diseases of Aquatic Organisms. 2013; 106 (2): 103–115. https://doi.org/10.3354/dao02644</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Purcell M. K., Thompson R. L., Garver K. A., Hawley L. M., Batts W. N., Sprague L., et al. Universal reverse-transcriptase real-time PCR for infectious hematopoietic necrosis virus (IHNV). Diseases of Aquatic Organisms. 2013; 106 (2): 103–115. https://doi.org/10.3354/dao02644</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit77"><label>77</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Arakawa C. K., Deering R. E., Higman K. H., Oshima K. H., O’Hara P. J., Winton J. R. Polymerase chain reaction (PCR) amplification of a nucleoprotein gene sequence of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1990; 8: 165–170.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Arakawa C. K., Deering R. E., Higman K. H., Oshima K. H., O’Hara P. J., Winton J. R. Polymerase chain reaction (PCR) amplification of a nucleoprotein gene sequence of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1990; 8: 165–170.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit78"><label>78</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Deering R. E., Arakawa C. K., Oshima K. H., O’Hara P. J., Landolt M. L., Winton J. R. Development of a biotinylated DNA probe for detection and identification of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1991; 11: 57–65. https://doi.org/10.3354/DAO011057</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Deering R. E., Arakawa C. K., Oshima K. H., O’Hara P. J., Landolt M. L., Winton J. R. Development of a biotinylated DNA probe for detection and identification of infectious hematopoietic necrosis virus. Diseases of Aquatic Organisms. 1991; 11: 57–65. https://doi.org/10.3354/DAO011057</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit79"><label>79</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Winton J. R., Einer-Jensen K. Molecular diagnosis of infectious hematopoietic necrosis and viral hemorrhagic septicemia. In: Molecular Diagnosis of Salmonid Diseases. Eds. C. O. Cunningham. Dordrecht: Springer; 2002; 49–79. https://doi.org/10.1007/978-94-017-2315-2_3</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Winton J. R., Einer-Jensen K. Molecular diagnosis of infectious hematopoietic necrosis and viral hemorrhagic septicemia. In: Molecular Diagnosis of Salmonid Diseases. Eds. C. O. Cunningham. Dordrecht: Springer; 2002; 49–79. https://doi.org/10.1007/978-94-017-2315-2_3</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit80"><label>80</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л. Профилактика и контроль распространения вирусных болезней на предприятиях аквакультуры. Современное состояние и развитие аквакультуры: экологическое и ихтиопатологическое состояние водоемов и объектов разведения, технологии выращивания: материалы международной конференции (Новосибирск, 11–13 ноября 2020 г.). Новосибирск: НГАУ; 2020; 134–136. https://www.elibrary.ru/mvyfbl</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L. Prevention and control of viral diseases in aquaculture. Current state and development of aquaculture: ecological and ichthyopathological state of reservoirs and breeding facilities, cultivation technologies: proceedings of the international conference (Novosibirsk, November 11–13, 2020).Novosibirsk: Novosibirsk SAU; 2020; 134–136. https://www.elibrary.ru/mvyfbl (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit81"><label>81</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л., Щелкунова Ю. П., Новоселова Ю. А., Рекордатова С. А., Кропочева И. Ю. Предварительные результаты по использованию йодинола для профилактики инфекционного некроза гемопоэтической ткани у радужной форели (экспериментальные данные). Водные биологические ресурсы России: состояние, мониторинг, управление: сборник материалов II Всероссийской научной конференции, посвященной 90-летию Камчатского филиала Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (Петропавловск-Камчатский, 4–6 апреля 2022 г.). Петропавловск-Камчатский: КамчатНИРО; 2022; 195–199. https://www.elibrary.ru/jhcfaq</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L., Schelkunova U. P., Novoselova U. A., Recordatova S. A., Kropocheva I. U. Preliminary results of the iodinol use for prevention of infectious hematopoetic necrosis in rainbow trout (experimental data). Vodnye biologicheskie resursy Rossii: sostoyanie, monitoring, upravlenie: sbornik materialov II Vserossiiskoi nauchnoi konferentsii, posvyashchennoi 90-letiyu Kamchatskogo filiala Vserossiiskogo nauchno-issledovatel’skogo instituta rybnogo khozyaistva i okeanografii (Petropavlovsk-Kamchatskii, 4–6 aprelya 2022 g.) = Aquatic biological resources of Russia: conditions, monitoring, management: Proceedings of the IInd All-Russia Scientific Conference, devoted to 90th anniversary of the Kamchatka Branch of the Russian Federal Research Institute of Fisheries and Oceanography (Petropavlovsk-Kamchatsky, 4–6 April, 2022). Petropavlovsk-Kamchatsky: KamchatNIRO; 2022; 195–199. https://www.elibrary.ru/jhcfaq (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit82"><label>82</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Рудакова С. Л., Бочкова Е. В., Волкова Т. В., Сахаровская Л. В. Модификация метода профилактической обработки икры нерки йодинолом от вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани на ЛРЗ Камчатки. Труды ВНИРО. 2020; 182: 128–138. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2020-182-128-138</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rudakova S. L., Bochkova E. V., Volkova T. V., Saharovskaja L. V. Modification of the method of sockeye salmon egg treatment with iodinol from infectious hematopoietic necrosis virus in Kamchatka Hatchery. Trudy VNIRO. 2020; 182: 128–138. https://doi.org/10.36038/2307-3497-2020-182-128-138 (in Russ.)</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit83"><label>83</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bovo G., Håstein T., Hill B., LaPatra S. E., Michel C., Olesen N. J., et al. Work package 1 report: Hazard identification for vertical transfer of fish disease agents. Oslo: VESO; 2005. 35 p.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bovo G., Håstein T., Hill B., LaPatra S. E., Michel C., Olesen N. J., et al. Work package 1 report: Hazard identification for vertical transfer of fish disease agents. Oslo: VESO; 2005. 35 p.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit84"><label>84</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Purcell M. K., LaPatra S. E., Woodson J. C., Kurath G., Winton J. R. Early viral replication and induced or constitutive immunity in rainbow trout families with differential resistance to Infectious hematopietic necrosis virus (IHNV). Fish &amp; Shellfish Immunology. 2010; 28 (1): 98–105. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.10.005</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Purcell M. K., LaPatra S. E., Woodson J. C., Kurath G., Winton J. R. Early viral replication and induced or constitutive immunity in rainbow trout families with differential resistance to Infectious hematopietic necrosis virus (IHNV). Fish &amp; Shellfish Immunology. 2010; 28 (1): 98–105. https://doi.org/10.1016/j.fsi.2009.10.005</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit85"><label>85</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Barroso R. M., Wheeler P. A., LaPatra S. E., Drew R. E., Thorgaard G. H. QTL for IHNV resistance and growth identified in a rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) × Yellowstone cutthroat (Oncorhynchus clarki bouvieri) trout cross. Aquaculture. 2008; 277 (3–4): 156–163. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.03.001</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Barroso R. M., Wheeler P. A., LaPatra S. E., Drew R. E., Thorgaard G. H.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit86"><label>86</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Miller K. M., Winton J. R., Schulze A. D., Purcell M. K., Ming T. J. Major histocompatibility complex loci are associated with susceptibility of Atlantic salmon to infectious hematopoietic necrosis virus. Environmental Biology of Fishes. 2004; 69 (1): 307–316. https://doi.org/10.1023/B:EBFI.0000022874.48341.0f</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">QTL for IHNV resistance and growth identified in a rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) × Yellowstone cutthroat (Oncorhynchus clarki bouvieri) trout</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit87"><label>87</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Winton J. R. Immunization with viral antigens: infectious hematopoietic necrosis. Developments in Biological Standardization. 1997; 90: 211–220. PMID: 9270850</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">cross. Aquaculture. 2008; 277 (3–4): 156–163. https://doi.org/10.1016/j.aquaculture.2008.03.001</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit88"><label>88</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurath G. Biotechnology and DNA vaccines for aquatic animals. Revue Scientifique et Technique (International Office of Epizootics). 2008; 27 (1): 175–196. http://dx.doi.org/10.20506/rst.27.1.1793</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Miller K. M., Winton J. R., Schulze A. D., Purcell M. K., Ming T. J. Major histocompatibility complex loci are associated with susceptibility of Atlantic salmon to infectious hematopoietic necrosis virus. Environmental Biology of Fishes. 2004; 69 (1): 307–316. https://doi.org/10.1023/B:EBFI.0000022874.48341.0f</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit89"><label>89</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Winton J. R. Immunization with viral antigens: infectious hematopoietic necrosis. Developments in Biological Standardization. 1997; 90: 211–220. PMID: 9270850</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Winton J. R. Immunization with viral antigens: infectious hematopoietic necrosis. Developments in Biological Standardization. 1997; 90: 211–220. PMID: 9270850</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit90"><label>90</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kurath G. Biotechnology and DNA vaccines for aquatic animals. Revue Scientifique et Technique (International Office of Epizootics). 2008; 27 (1): 175–196. http://dx.doi.org/10.20506/rst.27.1.1793</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kurath G. Biotechnology and DNA vaccines for aquatic animals. Revue Scientifique et Technique (International Office of Epizootics). 2008; 27 (1): 175–196. http://dx.doi.org/10.20506/rst.27.1.1793</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
