<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE article PUBLIC "-//NLM//DTD JATS (Z39.96) Journal Publishing DTD v1.3 20210610//EN" "JATS-journalpublishing1-3.dtd">
<article article-type="research-article" dtd-version="1.3" xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">veterinary</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="ru">Ветеринария сегодня</journal-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Veterinary Science Today</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn pub-type="ppub">2304-196X</issn><issn pub-type="epub">2658-6959</issn><publisher><publisher-name>"Veinard"</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="doi">10.29326/2304-196X-2024-13-1-20-26</article-id><article-id custom-type="elpub" pub-id-type="custom">veterinary-786</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Research Article</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="ru"><subject>ОБЗОРЫ | БОЛЕЗНИ КРС</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="section-heading" xml:lang="en"><subject>REVIEWS | BOVINE DISEASES</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Вирус гриппа D у крупного рогатого скота (обзор)</article-title><trans-title-group xml:lang="en"><trans-title>Influenza D virus in cattle (review)</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-2649-7505</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Котенева</surname><given-names>С. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Koteneva</surname><given-names>S. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Котенева Светлана Владимировна, канд. вет. наук, ведущий научный сотрудник</p><p>р. п. Краснообск, Новосибирская обл.</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Svetlana V. Koteneva, Cand. Sci. (Veterinary Medicine), Leading Researcher</p><p>Krasnoobsk, Novosibirsk Oblast</p></bio><email xlink:type="simple">koteneva-sv@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-2006-0196</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Глотов</surname><given-names>А. Г.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Glotov</surname><given-names>A. G.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Глотов Александр Гаврилович, д-р вет. наук, профессор, главный научный сотрудник</p><p>р. п. Краснообск, Новосибирская обл.</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Alexander G. Glotov, Dr. Sci. (Veterinary Medicine), Professor, Chief Researcher</p><p>Krasnoobsk, Novosibirsk Oblast</p></bio><email xlink:type="simple">glotov_vet@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-3538-8749</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Глотова</surname><given-names>Т. И.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Glotova</surname><given-names>T. I.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Глотова Татьяна Ивановна, д-р биол. наук, профессор, главный научный сотрудник</p><p>р. п. Краснообск, Новосибирская обл.</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Tatyana I. Glotova, Dr. Sci. (Biology), Professor, Chief Researcher</p><p>Krasnoobsk, Novosibirsk Oblast</p></bio><email xlink:type="simple">t-glotova@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author" corresp="yes"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-4181-4268</contrib-id><name-alternatives><name name-style="eastern" xml:lang="ru"><surname>Нефедченко</surname><given-names>А. В.</given-names></name><name name-style="western" xml:lang="en"><surname>Nefedchenko</surname><given-names>A. V.</given-names></name></name-alternatives><bio xml:lang="ru"><p>Нефедченко Алексей Васильевич, д-р вет. наук, доцент, ведущий научный сотрудник</p><p>р. п. Краснообск, Новосибирская обл.</p></bio><bio xml:lang="en"><p>Alexey V. Nefedchenko, Dr. Sci. (Veterinary), Associate Professor Leading Researcher</p><p>Krasnoobsk, Novosibirsk Oblast</p></bio><email xlink:type="simple">homeovet@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff-1"><aff xml:lang="ru"><institution>Сибирский федеральный научный центр агробиотехнологий Российской академии наук, Институт экспериментальной ветеринарии Сибири и Дальнего Востока (ИЭВСиДВ СФНЦА РАН)</institution><country>Россия</country></aff><aff xml:lang="en"><institution>Siberian Federal Scientific Centre of Agro-BioTechnologies, Russian Academy of Sciences, Institute of Experimental Veterinary Science of Siberia and the Far East</institution><country>Russian Federation</country></aff></aff-alternatives><pub-date pub-type="collection"><year>2024</year></pub-date><pub-date pub-type="epub"><day>15</day><month>03</month><year>2024</year></pub-date><volume>13</volume><issue>1</issue><fpage>20</fpage><lpage>26</lpage><permissions><copyright-statement>Copyright &amp;#x00A9; Котенева С.В., Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В., 2024</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year><copyright-holder xml:lang="ru">Котенева С.В., Глотов А.Г., Глотова Т.И., Нефедченко А.В.</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="en">Koteneva S.V., Glotov A.G., Glotova T.I., Nefedchenko A.V.</copyright-holder><license license-type="creative-commons-attribution" xlink:href="https://creativecommons.org/licenses/by/4.0/" xlink:type="simple"><license-p>This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.</license-p></license></permissions><self-uri xlink:href="https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/786">https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/786</self-uri><abstract><p>Вирус гриппа D впервые был обнаружен и идентифицирован в 2011 г. Его аминокислотная последовательность примерно на 50% идентична аминокислотной последовательности вируса гриппа С, что предполагает наличие общего предка у обоих патогенов. Основной резервуар вируса гриппа D – крупный рогатый скот. Установлено участие данного возбудителя в комплексе респираторных болезней крупного рогатого скота. Вирус вызывает у телят заболевание легкой и умеренной степени тяжести и реплицируется как в верхних, так и в нижних отделах дыхательных путей, способствуя возникновению бронхопневмонии. Возбудитель гриппа D передается контактным и воздушно-капельным путем на короткие расстояния, имеет высокую частоту передачи и может усиливать действие других патогенов. На сегодняшний день вакцин или специфического лечения не существует. Агент способен размножаться и передаваться при прямом контакте в организме хорьков и морских свинок, являющихся суррогатными моделями для изучения человеческого гриппа, а также в культурах высокодифференцированных эпителиальных клеток дыхательных путей человека hAEC. В настоящее время определены пять генетических групп вируса гриппа D, циркулирующих в популяциях крупного рогатого скота и свиней во всем мире, что может способствовать генетической рекомбинации между различными штаммами. Возбудитель обладает зоонозным потенциалом и, если произойдет резкое изменение его патогенности для человека, может явиться серьезной проблемой для общественного здравоохранения. Сообщалось о высоком уровне серопозитивности к вирусу среди персонала животноводческих ферм в США и Италии. В доступной литературе нет данных о циркуляции возбудителя гриппа D на территории Российской Федерации. Необходимы исследования, направленные на изучение этого нового вируса, а также проведение мониторинга распространения и циркуляции патогена в нашей стране для понимания его роли в комплексе респираторных заболеваний крупного рогатого скота и зоонозного потенциала.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="en"><p>The influenza D virus was first detected and identified in 2011. The overall amino acid sequence of influenza D virus shares approximately 50% identity with that of influenza C virus, suggesting that both viruses had a common ancestor. Cattle is considered to be the primary natural reservoir for influenza D virus. The involvement of this virus into the bovine respiratory disease complex has been confirmed. The virus causes mild to moderate disease in calves and replicates in both the upper and lower respiratory tracts, promoting bronchopneumonia. The influenza D virus can be transmitted by contact or aerosol over short distances, has a high transmission rate and can potentiate the effects of other respiratory pathogens. There are currently no vaccines or specific treatment for influenza D virus. This virus can replicate and be transmitted by direct contact in ferrets and guinea pigs, which are surrogate models of human influenza infection, as well as in well-differentiated human airway epithelial cells (hAECs). Currently five distinctive lineages of influenza D virus have been identified, co-circulating in worldwide bovine and pig populations that may facilitate genetic re-assortment between different viral strains. The virus has a zoonotic potential, and if its pathogenicity for humans changes, its importance for public health will be great. Very high seropositivity rates among persons working with cattle in the USA and Italy have been reported. There is no data in the available literature on the circulation of the influenza D virus in the Russian Federation. Research is needed to study this new virus, as well as monitoring of the virus spread and circulation in our country to understand its role in bovine respiratory disease complex and its zoonotic potential.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>обзор</kwd><kwd>вирус гриппа D</kwd><kwd>крупный рогатый скот</kwd><kwd>комплекс респираторных заболеваний</kwd><kwd>генетические линии</kwd><kwd>зоонозный потенциал</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="en"><kwd>review</kwd><kwd>influenza D virus</kwd><kwd>cattle</kwd><kwd>respiratory disease complex</kwd><kwd>genetic lineages</kwd><kwd>zoonotic potential</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">Исследование выполнено за счет бюджетных средств в рамках выполнения государственного задания № 0533-2021-0018 (СФНЦА РАН).</funding-statement><funding-statement xml:lang="en">The study was funded from the budget as part of the fulfillment of state task No. 0533-2021-0018 (Siberian Federal Scientific Centre of Agro-BioTechnologies, Russian Academy of Sciences).</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body><sec><title>ВВЕДЕНИЕ</title><p>Комплекс респираторных болезней крупного рогатого скота является одним из наиболее экономически значимых многофакторных заболеваний, поражающих преимущественно молодняк крупного рогатого скота (КРС) во всем мире. Патогенами, наиболее часто вызывающими респираторные патологии, являются вирусы инфекционного ринотрахеита, вирусной диареи – болезни слизистых оболочек, респираторно-синцитиальной инфекции, парагриппа-3, коронавирусной инфекции КРС, бактерии Pasteurella multocida (P. multocida), Mannheimia haemolytica (M. haemolytica), Mycoplasma bovis (M. bovis), Histophilus somni (H. somni) [1-4].</p><p>Крупный рогатый скот считался невосприимчивым к вирусам гриппа до открытия вируса гриппа D (Influenza D virus, IDV). Этот вид был идентифицирован как новый этиологический агент комплекса респираторных заболеваний КРС [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Интерес к IDV растет, что подчеркивает необходимость изучения глобального воздействия, которое может иметь этот новый вирус, поражающий в основном КРС, хотя существует широкий спектр других видов, которые могут выступать в качестве хозяев.</p><p>Возбудители гриппа – РНК-содержащие вирусы, относящиеся к семейству Orthomyxoviridae, в котором выделяют четыре монотипных рода, классифицирующиеся на основе антигенных различий между их нуклеопротеиновыми (NP) и матриксными (М) белками: Alphainfluenzavirus, Betainfluenzavirus, Gammainfluenzavirus и Deltainfluenzavirus, каждый из которых имеет по одному виду – Influenza A virus (IAV), Influenza В virus (IBV), Influenza С virus (ICV) и Influenza D virus (IDV). Известно, что вирусы гриппа A, B и C вызывают респираторные заболевания у человека [<xref ref-type="bibr" rid="cit5">5</xref>].</p><p>В отличие от других типов вируса гриппа, поражающих широкий спектр млекопитающих и птиц и вызывающих эпидемии и пандемии, резервуаром возбудителя гриппа D служит КРС, однако не исключена его циркуляция среди других видов млекопитающих [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>][6-9].</p><p>Впервые IDV выделили в 2011 г. от больной свиньи с тяжелыми респираторными симптомами в штате Оклахома (США), примерно на 50% он был идентичен человеческому ICV, поэтому сначала его считали новым подтипом этого вируса [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Впоследствии были установлены генетические, антигенные и биологические различия [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>]. В августе 2016 г. Международный комитет по таксономии вирусов (ICTV) классифицировал этот вирус как вид Influenza D virus нового рода Deltainfluenzavirus семейства Orthomyxoviridae. Дальнейшие исследования показали, что основным резервуаром IDV является КРС [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>]. Специфические антитела к вирусу были также обнаружены у лошадей, мелких жвачных животных, диких свиней, буйволов, верблюдов и людей, особенно у тех, кто контактировал с КРС [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][13-16], что не исключает широкого спектра хозяев и распространение от КРС к человеку или другим видам животных.</p><p>В данном обзоре представлена информация о последних достижениях в изучении IDV, распространенности вируса и его роли в комплексе респираторных заболеваний КРС.</p></sec><sec><title>ХАРАКТЕРИСТИКА ВИРУСА ГРИППА D</title><p>Вирус гриппа D – оболочечный вирус с сегментированным геномом, состоящим из одноцепочечной отрицательно заряженной РНК, разделенной на семь фрагментов. У IDV, также как и у ICV, отсутствует нейраминидаза. Вирионы имеют диаметр 80–120 нанометров [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>]. Сегментированный геном IDV кодирует девять белков [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]. Три самых меньших сегмента содержат полимеразы PB2, PB1 и P3, которые необходимы для репликации и синтеза вирусной мРНК. Четвертый сегмент кодирует гликопротеин слияния гемагглютининэстеразу (hemagglutinin-esterase-fusion, HEF), который способствует проникновению вируса в клетки, а также является основной мишенью для вируснейтрализующих антител. Более широкий клеточный тропизм вируса гриппа D по сравнению с вирусом гриппа С обусловлен наличием у белка HEF IDV рецепторсвязывающего кармана, что позволяет связываться с различными молекулами клеточной поверхности [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit20">20</xref>]. Пятый сегмент кодирует нуклеопротеин (NP), который образует вирусный рибонуклеопротеиновый комплекс [<xref ref-type="bibr" rid="cit19">19</xref>]. Шестой сегмент кодирует матриксные белки M1 и M2, выстилающие вирусную мембрану изнутри и формирующие ионные каналы [<xref ref-type="bibr" rid="cit21">21</xref>]. Седьмой сегмент содержит неструктурные белки NS1 и NS2, которые участвуют в нейтрализации клеточного иммунного ответа, активированного интерфероном, и опосредуют ядерный экспорт рибонуклеопротеина [<xref ref-type="bibr" rid="cit22">22</xref>].</p><p>Вирусы гриппа выработали различные стратегии продуцирования вирусных белков для максимального использования потенциала кодирования генома. Сплайсинг был продемонстрирован в сегментах NS и/или M вирусов гриппа. Все типы вирусов гриппа обладают сходным механизмом генерации белков NS1 и NS2. Однако каждый тип вирусов использует уникальную стратегию для продуцирования белков M1 и/или M2. При этом IDV демонстрирует новую стратегию при продуцировании белка M1 в сравнении с ICV. Он использует стратегию протеолитического расщепления, аналогичную стратегии ICV, для получения белка M2 из белка P42, в то время как в отличие от сегмента ICVM, генерирующего белок M1 посредством сплайсинга, который вводит только терминирующий кодон, сплайсинг сегмента IDVM продуцирует дополнительный 4-аминокислотный пептид в предыдущий экзон [<xref ref-type="bibr" rid="cit11">11</xref>].</p><p>Исследования J. Yu et al. показали, что IDV обладает устойчивостью к высоким температурам и кислотности среды благодаря роли белка HEF и считается наиболее стабильным из четырех вирусов гриппа [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>]. IDV сохраняет инфекционную активность даже после воздействия температуры 53 °C в течение 2 ч. Кроме того, агент теряет только 20% инфекционной активности при рН 3,0 в течение 30 мин, в то время как все остальные типы вирусов гриппа полностью инактивируются. Стабильность HEF при чрезвычайно низком рН подчеркивает новый аспект репликации IDV, который требует дальнейшего изучения [<xref ref-type="bibr" rid="cit23">23</xref>].</p></sec><sec><title>ПАТОГЕНЕЗ</title><p>Возбудитель гриппа D обладает тропизмом к эпителию верхних и нижних дыхательных путей и может вызывать легкую или умеренную интерстициальную/бронхоинтерстициальную пневмонию. Вирус также обнаруживали в слизистых оболочках носа, трахеи, бронхиолах и тканях легких через 8 дней после заражения телят. Его выявляли в трахеобронхиальных и медиастинальных лимфатических узлах [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Наибольшая концентрация вируса наблюдалась в полости носа. Высокие концентрации РНК IDV были также обнаружены в обонятельных луковицах и миндалинах животных, инфицированных аэрозольно, но тропизм IDV к этим тканям не был подтвержден с помощью методов иммуногистохимии и выделения вируса [<xref ref-type="bibr" rid="cit24">24</xref>].</p><p>Salem E. et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>], Ferguson L. et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>] показали, что IDV вызывает легкое респираторное заболевание у телят в экспериментах с прямым заражением. IDV-инфекция может изменять структурную целостность респираторного эпителия и, как следствие, вызывать значительное повышение количества нейтрофилов в трахее животных [<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>]. Этот патологический эффект, по-видимому, предполагает этиологическую роль IDV в комплексе респираторных заболеваний КРС. Дальнейшее изучение патогенеза гриппа у телят показало, что инфекция приводит к возникновению умеренной бронхопневмонии с ограниченным поражением интерстиция и значительной активацией рецепторов распознавания патогена и хемокинов CCL2, CCL3 и CCL4 [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>]. Сигнальный путь, опосредованный интерфероном I типа, практически не активировался в клетках нижних дыхательных путей телят, инфицированных IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>].</p><p>Выявление генома IDV в образцах сыворотки крови тяжелобольного КРС позволило предположить, что вирус способен вызывать временную виремию и распространяться на другие органы. IDV был обнаружен с помощью полимеразной цепной реакции с обратной транскрипцией (ОТ-ПЦР) в фекалиях на 5-й день и в тощей кишке на 6-й день после заражения, что соответствует времени максимальной репликации вирусной РНК в дыхательных путях. Yu J. et al. предположили, что IDV может размножаться в кишечном тракте аналогично IAV и IBV. Этот возможный энтеральный тропизм IDV может быть связан с его высокой кислотоустойчивостью [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>]. Высокая термическая и кислотная стабильность вируса означает, что IDV обладает большим потенциалом резистентности, объясняющим высокую эффективность его передачи [<xref ref-type="bibr" rid="cit3">3</xref>].</p><p>Рядом исследователей продемонстрировано, что экспериментальная инфекция гриппа D у морских свинок и хорьков протекает бессимптомно [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. У морских свинок вирус был обнаружен как в верхних, так и в нижних дыхательных путях. В легких наблюдались обширные макроскопические изменения в альвеолярном пространстве с инфильтрацией клетками воспалительного происхождения, периваскулярным сужением и разрушением бронхиолярного эпителия с экссудацией [<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. У животных регистрировали также апоптоз эпителиальных клеток легких. У хорьков IDV реплицировался в клетках носовых раковин и в легких не выявлялся [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. Инфицированные мыши также не имели клинических признаков болезни. Репликация IDV у мышей наблюдалась главным образом в верхних дыхательных путях, реже – в нижних. Вирус в низких титрах был обнаружен в кишечнике животных [<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>]. У инфицированных мышей наблюдалось значительное увеличение количества нейтрофилов и лимфоцитов в тканях легких [<xref ref-type="bibr" rid="cit28">28</xref>]. Репликация IDV у мышей приводила к активации провоспалительных генов, включая гамма-интерферон (IFN-γ) и хемокин CCL2 [<xref ref-type="bibr" rid="cit27">27</xref>].</p><p>Таким образом, по результатам экспериментальных заражений КРС можно сделать вывод, что IDV является возбудителем легких и умеренных форм респираторных заболеваний КРС и действует как кофактор в патогенезе комплекса респираторных болезней КРС.</p></sec><sec><title>РАСПРОСТРАНЕНИЕ IDV В МИРЕ</title><p>Вирус гриппа D широко распространен среди КРС в Северной и Южной Америке [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit18">18</xref>][29-32], Европе [33-37], Азии [38-40] и Африке [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>].</p><p>Исследования образцов сыворотки крови показали, что IDV присутствовал в стадах КРС в США (Миссисипи и Небраска) еще в 2003 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit12">12</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit29">29</xref>]. При проведении в США общенационального серологического обследования на грипп D установили, что общий уровень серопозитивности КРС в 2014–2015 гг. составил 77,5%, при этом показатели распространенности варьировали от 47,7 до 84,6% по разным регионам. Положительные пробы сыворотки крови выявили в 41 из 42 обследованных штатов [<xref ref-type="bibr" rid="cit30">30</xref>]. Два исследования, проведенных с использованием метагеномного секвенирования образцов мазков из носовой полости КРС, собранных на откормочных площадках в США, Канаде и Мексике, показали связь IDV с респираторными болезнями [<xref ref-type="bibr" rid="cit43">43</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit44">44</xref>]. В Северной Америке антитела к IDV были выявлены также у овец и коз в 5,2 и 8,8% образцов сыворотки крови соответственно [<xref ref-type="bibr" rid="cit13">13</xref>]. Лошади также оказались носителями IDV – 15,7% (n = 364) проб сыворотки крови содержали специфические антитела к вирусу [<xref ref-type="bibr" rid="cit15">15</xref>]. Исследование по оценке серопревалентности к IDV диких свиней показало, что 57 из 256 (19,1%) животных были IDV-серопозитивными, что указывает на то, что дикие свиньи могут играть определенную роль в экологии IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit14">14</xref>].</p><p>В 85 (73%) из 116 обследованных ферм в Аргентине было обнаружено хотя бы одно положительное животное, при этом из 165 образцов сыворотки крови быков 112 (68%) оказались серопозитивными к IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit31">31</xref>]. Во время вспышки респираторного заболевания КРС в Бразилии выявляли РНК IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>].</p><p>Вирус гриппа D широко распространен в странах Европы, включая Францию, Италию, Люксембург, Ирландию и Великобританию.</p><p>Во Франции в 2015 г. геном IDV был обнаружен методом ПЦР в 6 (4,5%) пробах биоматериала (легкие, мазок из носа), отобранного от здоровых и клинически больных телят. В четырех из шести образцов, положительных на IDV, установили коинфицирование такими патогенами, как P. multocida, M. haemolytica, H. somni, а также вирусами РСИ КРС и/или ИРТ КРС. В двух других пробах тестируемые агенты, кроме IDV, выявлены не были [<xref ref-type="bibr" rid="cit33">33</xref>]. При исследовании сыворотки крови КРС (n = 3326), собранной с 2014 по 2018 г. в пяти регионах Франции, общая серопозитивность животных составила 47,2%, при этом результаты варьировали в зависимости от географического региона (31,0–70,0%) [<xref ref-type="bibr" rid="cit34">34</xref>].</p><p>В Италии в 2014–2016 гг. в мазках из носа и в образцах тканей легких, отобранных от КРС с признаками респираторных болезней, геном IDV выявили в 8,0% случаев, а в пробах от клинически здоровых животных – в 3,4% случаев. Из 48 IDV-положительных образцов, полученных от КРС при вспышках респираторных заболеваний, в 62,5% случаев IDV был единственным вирусным агентом, что подтверждает гипотезу о том, что IDV может играть основную роль в возникновении комплекса респираторных инфекций. В остальных 37,5% образцов IDV обнаруживали вместе с другими респираторными патогенами, но в большинстве случаев с коронавирусом КРС. РНК IDV чаще выявляли в мазках из носа (9,4%), чем в тканях легких (3,4%), что подтверждает вывод, сделанный по результатам воспроизведения на лабораторных моделях экспериментальной IDV-инфекции, о том, что верхние дыхательные пути являются предпочтительным местом для репликации этого вируса. Серологические исследования, проведенные в Италии в 2015 г., показали высокую распространенность IDV (92,4%) на молочных фермах [<xref ref-type="bibr" rid="cit2">2</xref>]. В Люксембурге серопозитивность обследованных в 2012–2016 гг. животных составила 80,2% [<xref ref-type="bibr" rid="cit35">35</xref>]. В Ирландии в период с 2014 по 2016 г. методом ОТ-ПЦР исследовали 320 проб носовых выделений животных. В результате РНК вируса выявили в 18 образцах (5,6%), полученных с 10 ферм (11,9%) [<xref ref-type="bibr" rid="cit36">36</xref>].</p><p>В Великобритании IDV обнаружили в 8,7% проб биоматериала от телят с признаками респираторных инфекций. Возбудитель гриппа во всех случаях выявляли в сочетании с бактериальными агентами и в некоторых – в составе вирусно-бактериальных ассоциаций. Вирусная РНК присутствовала как в верхних, так и в нижних дыхательных путях, а патологические изменения в тканях легких наблюдали наряду с признаками сопутствующих бактериальных инфекций. При секвенировании одного изолята из Великобритании установили его сходство со штаммами из Ирландии и Италии [<xref ref-type="bibr" rid="cit37">37</xref>].</p><p>Первые сообщения о выявлении IDV в Китае появились в 2014 г., где геном вируса был обнаружен в 0,7% проб, отобранных от клинически здорового КРС [<xref ref-type="bibr" rid="cit38">38</xref>]. Предположительно, IDV циркулирует среди азиатского КРС с 2011 г. В 2016–2017 гг. установили, что IDV широко распространен среди КРС, буйволов, свиней, овец и коз на юге Китая [<xref ref-type="bibr" rid="cit39">39</xref>].</p><p>В Японии вирус был выявлен у КРС в 2016 г., при этом он обладал высокой контагиозностью [<xref ref-type="bibr" rid="cit25">25</xref>]. Ретроспективный анализ проб сыворотки крови, собранной в 2009–2018 гг., показал, что серопозитивность животных в среднем составляла 57%. Доказана циркуляция вируса японской линии в стране с 2010 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit40">40</xref>]. Первое сообщение о регистрации заражения КРС IDV в Турции было опубликовано в 2020 г. [<xref ref-type="bibr" rid="cit45">45</xref>].</p><p>Bailey E. S. et al. [<xref ref-type="bibr" rid="cit46">46</xref>] сообщали о выявлении генома IDV в образцах биоаэрозолей, отобранных на птицефабриках в Юго-Восточной Азии. Частичное секвенирование М-сегмента генома показало, что IDV, обнаруженный в птицеводческих хозяйствах, отличается от штаммов вируса, циркулирующих среди КРС в Северной Америке. Отсутствие информации о последовательности полного генома, особенно последовательности HEF, не позволило установить, к какой генетической линии принадлежит выявленный IDV. Для выяснения наличия IDV-инфекции у домашней птицы требуются дальнейшие исследования по изучению восприимчивости данного вида к заражению.</p><p>В Африке циркуляция вируса среди КРС установлена с 2012 г. Антитела к вирусу выявлены у КРС и мелких жвачных животных в Марокко, Того, Кот-д’Ивуаре, Бенине и Кении. Высокий уровень серопозитивности (99,0%) был обнаружен у верблюдов-дромадеров в Кении, что указывает на то, что этот вид животных может быть новым хозяином IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit41">41</xref>]. Эти результаты были подтверждены другим серологическим исследованием, проведенным в Эфиопии, где также наблюдалась высокая серопозитивность верблюдов-дромадеров к IDV [<xref ref-type="bibr" rid="cit42">42</xref>]. Инфекция среди молодняка КРС в африканских странах распространена в меньшей степени, по-видимому, это связано с менее интенсивным типом ведения животноводства.</p><p>Способность IDV вызывать заболевание у людей в настоящее время недостаточно изучена, и неясно, может ли этот возбудитель передаваться от человека к человеку. Передача и репликация вируса при прямом контакте у хорьков и морских свинок, которые используются при моделировании человеческого гриппа, может косвенно свидетельствовать об этом [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>][<xref ref-type="bibr" rid="cit26">26</xref>]. Holwerda M. et al. доказали, что IDV эффективно реплицируется in vitro в суррогатной модели респираторного эпителия при температурах окружающей среды, соответствующих температуре верхних и нижних дыхательных путей человека. Также авторы продемонстрировали, что вирус способен размножаться в культурах высокодифференцированных эпителиальных клеток дыхательных путей человека (hAEC) при 33 и 37 °C [<xref ref-type="bibr" rid="cit47">47</xref>].</p><p>Проведенное в США ретроспективное исследование сывороток крови, собранных во время вспышек сезонного гриппа в 2007–2009 гг., показало наличие специфических антител к IDV у людей в 1,3% проб [<xref ref-type="bibr" rid="cit10">10</xref>]. В связи с этим считается, что IDV может представлять потенциальную угрозу для персонала, непосредственно контактирующего с КРС. Так, высокий уровень серопозитивности к IDV у работников ферм установлен в США (91%) [<xref ref-type="bibr" rid="cit48">48</xref>] и Италии (46%) [<xref ref-type="bibr" rid="cit16">16</xref>]. Выявление антител к IDV у людей означает, что вирус может инфицировать человека и стать проблемой для общественного здравоохранения.</p><p>Геном IDV был обнаружен с помощью ОТ-ПЦР в образце смыва из полости носа у рабочего свинофермы в Малайзии [<xref ref-type="bibr" rid="cit49">49</xref>]. В ходе другого исследования, проведенного в США, генетический материал IDV выявили в пробах биоаэрозолей, собранных в отделении неотложной помощи больницы в Северной Каролине [<xref ref-type="bibr" rid="cit50">50</xref>] и международном аэропорту Роли-Дарем [<xref ref-type="bibr" rid="cit51">51</xref>]. Эти результаты показывают, что IDV обладает зоонозным потенциалом. В целом у людей к этому новому вирусу гриппа иммунитет отсутствует.</p></sec><sec><title>ГЕНЕТИЧЕСКОЕ РАЗНООБРАЗИЕ IDV</title><p>С 2011 г. в США, Франции, Италии, Ирландии, Японии и Китае были секвенированы полные геномы более 50 штаммов IDV, выделенных от КРС, и 5 штаммов от свиней. Согласно последним исследованиям, вирусы гриппа D можно разделить на пять генетических групп (линий) на основе гена HEF [<xref ref-type="bibr" rid="cit52">52</xref>]:</p><p>1) D/ОК – обнаружен в Европе (Франция, Италия и Ирландия), Америке (США и Мексика) и Азии (Китай);</p><p>2) D/660 – обнаружен в Европе (Италия) и Америке (США и Мексика);</p><p>3) D/Yama2016 – обнаружен в Азии (Япония);</p><p>4) D/Yama2019 – обнаружен в Азии (Япония и Китай);</p><p>5) D/CA2019 – обнаружен в Америке (США).</p><p>Вирусы, относящиеся к линиям D/OK и D/660 и совместно циркулирующие в настоящее время в популяциях КРС США и Европы, способны к рекомбинации и проявляют перекрестную реактивность, что может привести к образованию новых антигенных вариантов, которые смогут преодолеть ранее существовавший коллективный иммунитет и представлять дальнейшую угрозу здоровью сельскохозяйственных животных [<xref ref-type="bibr" rid="cit17">17</xref>]. Китайские штаммы вируса гриппа D, принадлежащие к группе D/OK, отличаются от штаммов этой же генетической линии из США и Италии и подразделяются в каждой стране на сублинии. Штаммы линии D/OK, выделенные от свиней и КРС в США и Италии, сгруппированы в один кластер, что говорит о более широком распространении данной генетической линии в мире и передаче возбудителя между этими видами животных. Результаты молекулярно-генетического анализа изолятов IDV линии D/OK, выделенных от молочных коров, свиней и коз в китайской провинции Гуандун, показали очень низкое генетическое разнообразие. Штаммы линии D/660 из Франции и США отличались друг от друга в большей степени, чем штаммы внутри каждой страны, это позволяет предположить, что эта линия также разделилась на сублинии в разных странах. Интересно, что изоляты линий D/Yama2016 и D/Yama2019 до недавнего времени выявлялись только в Японии, при этом они имеют низкий уровень гомологии с вирусами линий D/OK и D/660, циркулирующими в других странах. Но в 2022 г. IDV, идентичный вирусу генетической линии D/Yama2019, был обнаружен в Китае. Недавно во время вспышки респираторного заболевания КРС в Южной Америке зарегистрирован первый случай выявления IDV и установлено, что циркулирующий в бразильских стадах вирус филогенетически отличается от известных IDV из Северной Америки, Европы и Азии [<xref ref-type="bibr" rid="cit32">32</xref>]. Кроме того, сообщалось о появлении новой генетический линии вируса в Турции (D/Bursa2013) [<xref ref-type="bibr" rid="cit53">53</xref>] и нового реассортанта в Намибии [<xref ref-type="bibr" rid="cit54">54</xref>]. Эти результаты подчеркивают необходимость проведения мониторинга распространенности IDV для лучшего понимания эпизоотологии и эволюции вируса.</p></sec><sec><title>ЗАКЛЮЧЕНИЕ</title><p>Анализ литературных данных показывает глобальное распространение IDV среди животных во всем мире. Крупный рогатый скот – основной резервуар вируса – играет значимую роль в распространении возбудителя. Вирус гриппа D является важным кофактором в развитии комплекса респираторных заболеваний КРС, так как способен самостоятельно вызывать респираторную патологию легкой и средней степени тяжести с высокой скоростью передачи и может усиливать эффекты других респираторных патогенов за счет синергетического эффекта. Увеличивающееся число вспышек IDV-инфекции у свиней и КРС в последнее время может быть связано не только с возрастающим вниманием к этому новому патогену, но и с повышением вирулентности возбудителя. IDV обладает потенциалом преодоления межвидового барьера и адаптации к человеку и, если произойдет резкое изменение патогенности вируса для человека, может стать серьезной проблемой здравоохранения.</p><p>Особенностью IDV является относительная стабильность в сравнении с остальными типами вируса гриппа, поэтому его эволюция идет медленно. В настоящее время средств специфической профилактики или методов лечения гриппа D не существует.</p><p>В России исследования по распространению IDV на территории страны и изучению его роли в комплексе респираторных заболеваний КРС не проводились. Международная торговля скотом влечет за собой риски завоза вируса на территорию нашей страны, что при отсутствии контроля будет способствовать распространению новой инфекции среди животных и представлять потенциальную угрозу здоровью людей. Поэтому изучение циркуляции IDV в разных регионах Российской Федерации представляет большой интерес в отношении благополучия животных и человека.</p></sec></body><back><ref-list><title>References</title><ref id="cit1"><label>1</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Grissett G. P., White B. J., Larson R. L. Structured literature review of responses of cattle to viral and bacterial pathogens causing bovine respiratory disease complex. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2015; 29 (3): 770–780. https://doi.org/10.1111/jvim.12597</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Grissett G. P., White B. J., Larson R. L. Structured literature review of responses of cattle to viral and bacterial pathogens causing bovine respiratory disease complex. Journal of Veterinary Internal Medicine. 2015; 29 (3): 770–780. https://doi.org/10.1111/jvim.12597</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit2"><label>2</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Rosignoli C., Faccini S., Merenda M., Chiapponi C., De Mattia A., Bufalo G., et al. Influenza D virus infection in cattle in Italy. Large Animal Review. 2017; 23 (4): 123–128.</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Rosignoli C., Faccini S., Merenda M., Chiapponi C., De Mattia A., Bufalo G., et al. Influenza D virus infection in cattle in Italy. Large Animal Review. 2017; 23 (4): 123–128.</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit3"><label>3</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Salem E., Hägglund S., Cassard H., Corre T., Näslund K., Foret C., et al. Pathogenesis, host innate immune response, and aerosol transmission of influenza D virus in cattle. Journal of Virology. 2019; 93 (7):e01853-18. https://doi.org/10.1128/JVI.01853-18</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Salem E., Hägglund S., Cassard H., Corre T., Näslund K., Foret C., et al. Pathogenesis, host innate immune response, and aerosol transmission of influenza D virus in cattle. Journal of Virology. 2019; 93 (7):e01853-18. https://doi.org/10.1128/JVI.01853-18</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit4"><label>4</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang X., Outlaw C., Olivier A. K., Woolums A., Epperson W., Wan X.-F. Pathogenesis of co-infections of influenza D virus and Mannheimia haemolytica in cattle. Veterinary Microbiology. 2019; 231: 246–253. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2019.03.027</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang X., Outlaw C., Olivier A. K., Woolums A., Epperson W., Wan X.-F. Pathogenesis of co-infections of influenza D virus and Mannheimia haemolytica in cattle. Veterinary Microbiology. 2019; 231: 246–253. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2019.03.027</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit5"><label>5</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nogales A., Aydillo T., Ávila-Pérez G., Escalera A., Chiem K., Cadagan R., et al. Functional characterization and direct comparison of influenza A, B, C, and D NS1 proteins in vitro and in vivo. Frontiers in Microbiology. 2019; 10:2862. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02862</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nogales A., Aydillo T., Ávila-Pérez G., Escalera A., Chiem K., Cadagan R., et al. Functional characterization and direct comparison of influenza A, B, C, and D NS1 proteins in vitro and in vivo. Frontiers in Microbiology. 2019; 10:2862. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02862</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit6"><label>6</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Medina R. A., García-Sastre A. Influenza A viruses: new research developments. Nature Reviews Microbiology. 2011; 9: 590–603. https://doi.org/10.1038/nrmicro2613</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Medina R. A., García-Sastre A. Influenza A viruses: new research developments. Nature Reviews Microbiology. 2011; 9: 590–603. https://doi.org/10.1038/nrmicro2613</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit7"><label>7</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">De Graaf M., Fouchier R. A. M. Role of receptor binding specificity in influenza A virus transmission and pathogenesis. The EMBO Journal. 2014; 33 (8): 823–841. https://doi.org/10.1002/embj.201387442</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">De Graaf M., Fouchier R. A. M. Role of receptor binding specificity in influenza A virus transmission and pathogenesis. The EMBO Journal. 2014; 33 (8): 823–841. https://doi.org/10.1002/embj.201387442</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit8"><label>8</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Tan J., Asthagiri Arunkumar G., Krammer F. Universal influenza virus vaccines and therapeutics: where do we stand with influenza B virus? Current Opinion in Immunology. 2018; 53: 45–50. https://doi.org/10.1016/j.coi.2018.04.002</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Tan J., Asthagiri Arunkumar G., Krammer F. Universal influenza virus vaccines and therapeutics: where do we stand with influenza B virus? Current Opinion in Immunology. 2018; 53: 45–50. https://doi.org/10.1016/j.coi.2018.04.002</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit9"><label>9</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Wang M., Veit M. Hemagglutinin-esterase-fusion (HEF) protein of influenza C virus. Protein &amp; Cell. 2016; 7 (1): 28–45. https://doi.org/10.1007/s13238-015-0193-x</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Wang M., Veit M. Hemagglutinin-esterase-fusion (HEF) protein of influenza C virus. Protein &amp; Cell. 2016; 7 (1): 28–45. https://doi.org/10.1007/s13238-015-0193-x</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit10"><label>10</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hause B. M., Ducatez M., Collin E. A., Ran Z., Liu R., Sheng Z., et al. Isolation of a novel swine influenza virus from Oklahoma in 2011 which is distantly related to human influenza C viruses. PLoS Pathogens. 2013; 9 (2):e1003176. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003176</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hause B. M., Ducatez M., Collin E. A., Ran Z., Liu R., Sheng Z., et al. Isolation of a novel swine influenza virus from Oklahoma in 2011 which is distantly related to human influenza C viruses. PLoS Pathogens. 2013; 9 (2):e1003176. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003176</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit11"><label>11</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hause B. M., Collin E. A., Liu R., Huang B., Sheng Z., Lu W., et al. Characterization of a novel influenza virus in cattle and swine: proposal for a new genus in the Orthomyxoviridae family. mBio. 2014; 5 (2):e00031–14. https://doi.org/10.1128/mBio.00031-14</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hause B. M., Collin E. A., Liu R., Huang B., Sheng Z., Lu W., et al. Characterization of a novel influenza virus in cattle and swine: proposal for a new genus in the Orthomyxoviridae family. mBio. 2014; 5 (2):e00031–14. https://doi.org/10.1128/mBio.00031-14</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit12"><label>12</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ferguson L., Eckard L., Epperson W. B., Long L.-P., Smith D., Huston C., et al. Influenza D virus infection in Mississippi beef cattle. Virology. 2015; 486: 28–34. https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.08.030</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ferguson L., Eckard L., Epperson W. B., Long L.-P., Smith D., Huston C., et al. Influenza D virus infection in Mississippi beef cattle. Virology. 2015; 486: 28–34. https://doi.org/10.1016/j.virol.2015.08.030</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit13"><label>13</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Quast M., Sreenivasan C., Sexton G., Nedland H., Singrey A., Fawcett L., et al. Serological evidence for the presence of influenza D virus in small ruminants. Veterinary Microbiology. 2015; 180 (3–4): 281–285. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.09.005</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Quast M., Sreenivasan C., Sexton G., Nedland H., Singrey A., Fawcett L., et al. Serological evidence for the presence of influenza D virus in small ruminants. Veterinary Microbiology. 2015; 180 (3–4): 281–285. https://doi.org/10.1016/j.vetmic.2015.09.005</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit14"><label>14</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ferguson L., Luo K., Olivier A. K., Cunningham F. L., Blackmon S., Hanson-Dorr K., et al. Influenza D virus infection in feral swine populations, United States. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (6): 1020–1028. https://doi.org/10.3201/eid2406.172102</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ferguson L., Luo K., Olivier A. K., Cunningham F. L., Blackmon S., Hanson-Dorr K., et al. Influenza D virus infection in feral swine populations, United States. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (6): 1020–1028. https://doi.org/10.3201/eid2406.172102</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit15"><label>15</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Nedland H., Wollman J., Sreenivasan C., Quast M., Singrey A., Fawcett L., et al. Serological evidence for the co-circulation of two lineages of influenza D viruses in equine populations of the Midwest United States. Zoonoses and Public Health. 2018; 65 (1): e148–e154. https://doi.org/10.1111/zph.12423</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Nedland H., Wollman J., Sreenivasan C., Quast M., Singrey A., Fawcett L., et al. Serological evidence for the co-circulation of two lineages of influenza D viruses in equine populations of the Midwest United States. Zoonoses and Public Health. 2018; 65 (1): e148–e154. https://doi.org/10.1111/zph.12423</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit16"><label>16</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Trombetta C. M., Marchi S., Manini I., Kistner O., Li F., Piu P., et al. Influenza D virus: serological evidence in the Italian population from 2005 to 2017. Viruses. 2020; 12 (1):30. https://doi.org/10.3390/v12010030</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Trombetta C. M., Marchi S., Manini I., Kistner O., Li F., Piu P., et al. Influenza D virus: serological evidence in the Italian population from 2005 to 2017. Viruses. 2020; 12 (1):30. https://doi.org/10.3390/v12010030</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit17"><label>17</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yu J., Li F., Wang D. The first decade of research advances in influenza D virus. Journal of General Virology. 2021; 102 (1):001529. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001529</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yu J., Li F., Wang D. The first decade of research advances in influenza D virus. Journal of General Virology. 2021; 102 (1):001529. https://doi.org/10.1099/jgv.0.001529</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit18"><label>18</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ferguson L., Olivier A. K., Genova S., Epperson W. B., Smith D. R., Schneider L., et al. Pathogenesis of influenza D virus in cattle. Journal of Virology. 2016; 90 (12): 5636–5642. https://doi.org/10.1128/JVI.03122-15</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ferguson L., Olivier A. K., Genova S., Epperson W. B., Smith D. R., Schneider L., et al. Pathogenesis of influenza D virus in cattle. Journal of Virology. 2016; 90 (12): 5636–5642. https://doi.org/10.1128/JVI.03122-15</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit19"><label>19</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Asha K., Kumar B. Emerging influenza D virus threat: what we know so far! Journal of Clinical Medicine. 2019; 8 (2):192. https://doi.org/10.3390/jcm8020192</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Asha K., Kumar B. Emerging influenza D virus threat: what we know so far! Journal of Clinical Medicine. 2019; 8 (2):192. https://doi.org/10.3390/jcm8020192</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit20"><label>20</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Song H., Qi J., Khedri Z., Diaz S., Yu H., Chen X., et al. An open receptor-binding cavity of hemagglutinin-esterase-fusion glycoprotein from newly-identified influenza D virus: basis for its broad cell tropism. PLoS Pathogens. 2016; 12 (1):e1005411. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005411</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Song H., Qi J., Khedri Z., Diaz S., Yu H., Chen X., et al. An open receptor-binding cavity of hemagglutinin-esterase-fusion glycoprotein from newly-identified influenza D virus: basis for its broad cell tropism. PLoS Pathogens. 2016; 12 (1):e1005411. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1005411</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit21"><label>21</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Kumar B., Asha K., Khanna M., Ronsard L., Meseko C. A., Sanicas M. The emerging influenza virus threat: status and new prospects for its therapy and control. Archives of Virology. 2018; 163 (4): 831–844. https://doi.org/10.1007/s00705-018-3708-y</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Kumar B., Asha K., Khanna M., Ronsard L., Meseko C. A., Sanicas M. The emerging influenza virus threat: status and new prospects for its therapy and control. Archives of Virology. 2018; 163 (4): 831–844. https://doi.org/10.1007/s00705-018-3708-y</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit22"><label>22</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Paterson D., Fodor E. Emerging roles for the influenza A virus nuclear export protein (NEP). PLoS Pathogens. 2012; 8 (12):e1003019. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003019</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Paterson D., Fodor E. Emerging roles for the influenza A virus nuclear export protein (NEP). PLoS Pathogens. 2012; 8 (12):e1003019. https://doi.org/10.1371/journal.ppat.1003019</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit23"><label>23</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yu J., Hika B., Liu R., Sheng Z., Hause B. M., Li F., et al. The hemagglutinin-esterase fusion glycoprotein is a primary determinant of the exceptional thermal and acid stability of influenza D virus. mSphere. 2017; 2 (4):е00254-17. https://doi.org/10.1128/mSphere.00254-17</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yu J., Hika B., Liu R., Sheng Z., Hause B. M., Li F., et al. The hemagglutinin-esterase fusion glycoprotein is a primary determinant of the exceptional thermal and acid stability of influenza D virus. mSphere. 2017; 2 (4):е00254-17. https://doi.org/10.1128/mSphere.00254-17</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit24"><label>24</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Robinson E., Schulein C., Jacobson B. T., Jones K., Sago J., Huber V., et al. Pathophysiology of influenza D virus infection in specific-pathogen-free lambs with or without prior Mycoplasma ovipneumoniae exposure. Viruses. 2022; 14 (7):1422. https://doi.org/10.3390/v14071422</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Robinson E., Schulein C., Jacobson B. T., Jones K., Sago J., Huber V., et al. Pathophysiology of influenza D virus infection in specific-pathogen-free lambs with or without prior Mycoplasma ovipneumoniae exposure. Viruses. 2022; 14 (7):1422. https://doi.org/10.3390/v14071422</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit25"><label>25</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Murakami S., Endoh M., Kobayashi T., Takenaka-Uema A., Chambers J. K., Uchida K., et al. Influenza D virus infection in herd of cattle, Japan. Emerging Infectious Diseases. 2016; 22 (8): 1517–1519. https://doi.org/10.3201/eid2208.160362</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Murakami S., Endoh M., Kobayashi T., Takenaka-Uema A., Chambers J. K., Uchida K., et al. Influenza D virus infection in herd of cattle, Japan. Emerging Infectious Diseases. 2016; 22 (8): 1517–1519. https://doi.org/10.3201/eid2208.160362</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit26"><label>26</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Sreenivasan C., Thomas M., Sheng Z., Hause B. M., Collin E. A., Knudsen D. E. В., et al. Replication and transmission of the novel bovine influenza D virus in a guinea pig model. Journal of Virology. 2015; 89 (23): 11990–12001. https://doi.org/10.1128/JVI.01630-15</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Sreenivasan C., Thomas M., Sheng Z., Hause B. M., Collin E. A., Knudsen D. E. В., et al. Replication and transmission of the novel bovine influenza D virus in a guinea pig model. Journal of Virology. 2015; 89 (23): 11990–12001. https://doi.org/10.1128/JVI.01630-15</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit27"><label>27</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Oliva J., Mettier J., Sedano L., Delverdier M., Bourgès-Abella N., Hause B., et al. Murine model for the study of influenza D virus. Journal of Virology. 2020; 94 (4):e01662-19. https://doi.org/10.1128/JVI.01662-19</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Oliva J., Mettier J., Sedano L., Delverdier M., Bourgès-Abella N., Hause B., et al. Murine model for the study of influenza D virus. Journal of Virology. 2020; 94 (4):e01662-19. https://doi.org/10.1128/JVI.01662-19</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit28"><label>28</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Skelton R. M., Shepardson K. M., Hatton A., Wilson P. T., Sreenivasan C., Yu J., et al. Contribution of host immune responses against influenza D virus infection toward secondary bacterial infection in a mouse model. Viruses. 2019; 11 (11):994. https://doi.org/10.3390/v11110994</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Skelton R. M., Shepardson K. M., Hatton A., Wilson P. T., Sreenivasan C., Yu J., et al. Contribution of host immune responses against influenza D virus infection toward secondary bacterial infection in a mouse model. Viruses. 2019; 11 (11):994. https://doi.org/10.3390/v11110994</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit29"><label>29</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Luo J., Ferguson L., Smith D. R., Woolums A. R., Epperson W. B., Wan X.-F. Serological evidence for high prevalence of influenza D viruses in cattle, Nebraska, United States, 2003–2004. Virology. 2017; 501: 88–91. https://doi.org/10.1016/j.virol.2016.11.004</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Luo J., Ferguson L., Smith D. R., Woolums A. R., Epperson W. B., Wan X.-F. Serological evidence for high prevalence of influenza D viruses in cattle, Nebraska, United States, 2003–2004. Virology. 2017; 501: 88–91. https://doi.org/10.1016/j.virol.2016.11.004</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit30"><label>30</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Silveira S., Falkenberg S. M., Kaplan B. S., Crossley B., Ridpath J. F., Bauermann F., et al. Serosurvey for influenza D virus exposure in cattle, United States, 2014–2015. Emerging Infectious Diseases. 2019; 25 (11): 2074–2080. https://doi.org/10.3201/eid2511.190253</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Silveira S., Falkenberg S. M., Kaplan B. S., Crossley B., Ridpath J. F., Bauermann F., et al. Serosurvey for influenza D virus exposure in cattle, United States, 2014–2015. Emerging Infectious Diseases. 2019; 25 (11): 2074–2080. https://doi.org/10.3201/eid2511.190253</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit31"><label>31</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Alvarez I. J., Fort M., Pasucci J., Moreno F., Gimenez H., Näslund K., et al. Seroprevalence of influenza D virus in bulls in Argentina. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2020; 32 (4): 585–588. https://doi.org/10.1177/1040638720934056</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Alvarez I. J., Fort M., Pasucci J., Moreno F., Gimenez H., Näslund K., et al. Seroprevalence of influenza D virus in bulls in Argentina. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation. 2020; 32 (4): 585–588. https://doi.org/10.1177/1040638720934056</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit32"><label>32</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Da Silva M. S., Mosena A. C. S., Baumbach L., Demoline M., Gularte J. S., Pavarini S. P., et al. Cattle influenza D virus in Brazil is divergent from established lineages. Archives of Virology. 2022; 167 (4): 1181–1184. https://doi.org/10.1007/s00705-022-05416-8</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Da Silva M. S., Mosena A. C. S., Baumbach L., Demoline M., Gularte J. S., Pavarini S. P., et al. Cattle influenza D virus in Brazil is divergent from established lineages. Archives of Virology. 2022; 167 (4): 1181–1184. https://doi.org/10.1007/s00705-022-05416-8</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit33"><label>33</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Ducatez M. F., Pelletier C., Meyer G. Influenza D virus in cattle, France, 2011–2014. Emerging Infectious Diseases. 2015; 21 (2): 368–371. https://doi.org/10.3201/eid2102.141449</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Ducatez M. F., Pelletier C., Meyer G. Influenza D virus in cattle, France, 2011–2014. Emerging Infectious Diseases. 2015; 21 (2): 368–371. https://doi.org/10.3201/eid2102.141449</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit34"><label>34</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Oliva J., Eichenbaum A., Belin J., Gaudino M., Guillotin J., Alzieu J.-P., et al. Serological evidence of influenza D virus circulation among cattle and small ruminants in France. Viruses. 2019; 11 (6):516. https://doi.org/10.3390/v11060516</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Oliva J., Eichenbaum A., Belin J., Gaudino M., Guillotin J., Alzieu J.-P., et al. Serological evidence of influenza D virus circulation among cattle and small ruminants in France. Viruses. 2019; 11 (6):516. https://doi.org/10.3390/v11060516</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit35"><label>35</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Snoeck C. J., Oliva J., Pauly M., Losch S., Wildschutz F., Muller C. P., et al. Influenza D virus circulation in cattle and swine, Luxembourg, 2012–2016. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (7): 1388–1389. https://doi.org/10.3201/eid2407.171937</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Snoeck C. J., Oliva J., Pauly M., Losch S., Wildschutz F., Muller C. P., et al. Influenza D virus circulation in cattle and swine, Luxembourg, 2012–2016. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (7): 1388–1389. https://doi.org/10.3201/eid2407.171937</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit36"><label>36</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Flynn O., Gallagher C., Mooney J., Irvine C., Ducatez M., Hause B., et al. Influenza D virus in cattle, Ireland. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (2): 389–391. https://doi.org/10.3201/eid2402.170759</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Flynn O., Gallagher C., Mooney J., Irvine C., Ducatez M., Hause B., et al. Influenza D virus in cattle, Ireland. Emerging Infectious Diseases. 2018; 24 (2): 389–391. https://doi.org/10.3201/eid2402.170759</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit37"><label>37</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Dane H., Duffy C., Guelbenzu M., Hause B., Fee S., Forster F., et al. Detection of influenza D virus in bovine respiratory disease samples, UK. Transboundary and Emerging Diseases. 2019; 66 (5): 2184–2187. https://doi.org/10.1111/tbed.13273</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Dane H., Duffy C., Guelbenzu M., Hause B., Fee S., Forster F., et al. Detection of influenza D virus in bovine respiratory disease samples, UK. Transboundary and Emerging Diseases. 2019; 66 (5): 2184–2187. https://doi.org/10.1111/tbed.13273</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit38"><label>38</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Jiang W.-M., Wang S.-C., Peng C., Yu J.-M., Zhuang Q.-Y., Hou G.-Y., et al. Identification of a potential novel type of influenza virus in bovine in China. Virus Genes. 2014; 49 (3): 493–496. https://doi.org/10.1007/s11262-014-1107-3</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Jiang W.-M., Wang S.-C., Peng C., Yu J.-M., Zhuang Q.-Y., Hou G.-Y., et al. Identification of a potential novel type of influenza virus in bovine in China. Virus Genes. 2014; 49 (3): 493–496. https://doi.org/10.1007/s11262-014-1107-3</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit39"><label>39</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhai S.-L., Zhang H., Chen S.-N., Zhou X., Lin T., Liu R., et al. Influenza D virus in animal species in Guangdong Province, southern China. Emerging Infectious Diseases. 2017; 23 (8): 1392–1396. https://doi.org/10.3201/eid2308.170059</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhai S.-L., Zhang H., Chen S.-N., Zhou X., Lin T., Liu R., et al. Influenza D virus in animal species in Guangdong Province, southern China. Emerging Infectious Diseases. 2017; 23 (8): 1392–1396. https://doi.org/10.3201/eid2308.170059</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit40"><label>40</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Hayakawa J., Masuko T., Takehana T., Suzuki T. Genetic and antigenic characterization and retrospective surveillance of bovine influenza D viruses identified in Hokkaido, Japan from 2018 to 2020. Viruses. 2020; 12 (8):877. https://doi.org/10.3390/v12080877</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Hayakawa J., Masuko T., Takehana T., Suzuki T. Genetic and antigenic characterization and retrospective surveillance of bovine influenza D viruses identified in Hokkaido, Japan from 2018 to 2020. Viruses. 2020; 12 (8):877. https://doi.org/10.3390/v12080877</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit41"><label>41</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Salem E., Cook E. A. J., Lbacha H. A., Oliva J., Awoume F., Aplogan G. L., et al. Serologic evidence for influenza C and D virus among ruminants and camelids, Africa, 1991–2015. Emerging Infectious Diseases. 2017; 23 (9): 1556–1559. https://doi.org/10.3201/eid2309.170342</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Salem E., Cook E. A. J., Lbacha H. A., Oliva J., Awoume F., Aplogan G. L., et al. Serologic evidence for influenza C and D virus among ruminants and camelids, Africa, 1991–2015. Emerging Infectious Diseases. 2017; 23 (9): 1556–1559. https://doi.org/10.3201/eid2309.170342</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit42"><label>42</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Murakami S., Odagiri T., Melaku S. K., Bazartseren B., Ishida H., Takenaka-Uema A., et al. Influenza D virus infection in dromedary camels, Ethiopia. Emerging Infectious Diseases. 2019; 25 (6): 1224–1226. https://doi.org/10.3201/eid2506.181158</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Murakami S., Odagiri T., Melaku S. K., Bazartseren B., Ishida H., Takenaka-Uema A., et al. Influenza D virus infection in dromedary camels, Ethiopia. Emerging Infectious Diseases. 2019; 25 (6): 1224–1226. https://doi.org/10.3201/eid2506.181158</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit43"><label>43</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Mitra N., Cernicchiaro N., Torres S., Li F., Hause B. M. Metagenomic characterization of the virome associated with bovine respiratory disease in feedlot cattle identified novel viruses and suggests an etiologic role for influenza D virus. Journal of General Virology. 2016; 97 (8): 1771–1784. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000492</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Mitra N., Cernicchiaro N., Torres S., Li F., Hause B. M. Metagenomic characterization of the virome associated with bovine respiratory disease in feedlot cattle identified novel viruses and suggests an etiologic role for influenza D virus. Journal of General Virology. 2016; 97 (8): 1771–1784. https://doi.org/10.1099/jgv.0.000492</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit44"><label>44</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Zhang M., Hill J. E., Fernando C., Alexander T. W., Timsit E., van der Meer F., Huang Y. Respiratory viruses identified in western Canadian beef cattle by metagenomic sequencing and their association with bovine respiratory disease. Transboundary and Emerging Diseases. 2019; 66 (3): 1379–1386. https://doi.org/10.1111/tbed.13172</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Zhang M., Hill J. E., Fernando C., Alexander T. W., Timsit E., van der Meer F., Huang Y. Respiratory viruses identified in western Canadian beef cattle by metagenomic sequencing and their association with bovine respiratory disease. Transboundary and Emerging Diseases. 2019; 66 (3): 1379–1386. https://doi.org/10.1111/tbed.13172</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit45"><label>45</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yilmaz A., Umar S., Turan N., Aydin O., Tali H. E., Oguzoglu T. C., et al. First report of influenza D virus infection in Turkish cattle with respiratory disease. Research in Veterinary Science. 2020; 130: 98–102. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2020.02.017</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yilmaz A., Umar S., Turan N., Aydin O., Tali H. E., Oguzoglu T. C., et al. First report of influenza D virus infection in Turkish cattle with respiratory disease. Research in Veterinary Science. 2020; 130: 98–102. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2020.02.017</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit46"><label>46</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bailey E. S., Fieldhouse J. K., Alarja N. A., Chen D. D., Kovalik M. E., Zemke J. N., et al. First sequence of influenza D virus identified in poultry farm bioaerosols in Sarawak, Malaysia. Tropical Diseases, Travel Medicine and Vaccines. 2020; 6:5. https://doi.org/10.1186/s40794-020-0105-9</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bailey E. S., Fieldhouse J. K., Alarja N. A., Chen D. D., Kovalik M. E., Zemke J. N., et al. First sequence of influenza D virus identified in poultry farm bioaerosols in Sarawak, Malaysia. Tropical Diseases, Travel Medicine and Vaccines. 2020; 6:5. https://doi.org/10.1186/s40794-020-0105-9</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit47"><label>47</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Holwerda M., Kelly J., Laloli L., Stürmer I., Portmann J., Stalder H., Dijkman R. Determining the replication kinetics and cellular tropism of influenza D virus on primary well-differentiated human airway epithelial cells. Viruses. 2019; 11 (4):377. https://doi.org/10.3390/v11040377</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Holwerda M., Kelly J., Laloli L., Stürmer I., Portmann J., Stalder H., Dijkman R. Determining the replication kinetics and cellular tropism of influenza D virus on primary well-differentiated human airway epithelial cells. Viruses. 2019; 11 (4):377. https://doi.org/10.3390/v11040377</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit48"><label>48</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">White S. K., Ma W., McDaniel C. J., Gray G. C., Lednicky J. A. Serologic evidence of exposure to influenza D virus among persons with occupational contact with cattle. Journal of Clinical Virology. 2016; 81: 31–33. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2016.05.017</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">White S. K., Ma W., McDaniel C. J., Gray G. C., Lednicky J. A. Serologic evidence of exposure to influenza D virus among persons with occupational contact with cattle. Journal of Clinical Virology. 2016; 81: 31–33. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2016.05.017</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit49"><label>49</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Borkenhagen L. K., Mallinson K. A., Tsao R. W., Ha S.-J., Lim W.-H., Toh T.-H., et al. Surveillance for respiratory and diarrheal pathogens at the human-pig interface in Sarawak, Malaysia. PLoS One. 2018; 13 (7):e0201295. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0201295</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Borkenhagen L. K., Mallinson K. A., Tsao R. W., Ha S.-J., Lim W.-H., Toh T.-H., et al. Surveillance for respiratory and diarrheal pathogens at the human-pig interface in Sarawak, Malaysia. PLoS One. 2018; 13 (7):e0201295. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0201295</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit50"><label>50</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Choi J. Y., Zemke J., Philo S. E., Bailey E. S., Yondon M., Gray G. C. Aerosol sampling in a hospital emergency room setting: a complementary surveillance method for the detection of respiratory viruses. Frontiers in Public Health. 2018; 6:174. https://doi.org/10.3389/fpubh.2018.00174</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Choi J. Y., Zemke J., Philo S. E., Bailey E. S., Yondon M., Gray G. C. Aerosol sampling in a hospital emergency room setting: a complementary surveillance method for the detection of respiratory viruses. Frontiers in Public Health. 2018; 6:174. https://doi.org/10.3389/fpubh.2018.00174</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit51"><label>51</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Bailey E. S., Choi J. Y., Zemke J., Yondon M., Gray G. C. Molecular surveillance of respiratory viruses with bioaerosol sampling in an airport. Tropical Diseases, Travel Medicine and Vaccines. 2018; 4:11. https://doi.org/10.1186/s40794-018-0071-7</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Bailey E. S., Choi J. Y., Zemke J., Yondon M., Gray G. C. Molecular surveillance of respiratory viruses with bioaerosol sampling in an airport. Tropical Diseases, Travel Medicine and Vaccines. 2018; 4:11. https://doi.org/10.1186/s40794-018-0071-7</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit52"><label>52</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yu J., Li T., Wen Z., Wu S., Wang Z., Zheng J., et al. Identification of D/Yama2019 lineage-like influenza D virus in Chinese cattle. Frontiers in Veterinary Science. 2022; 9:939456. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.939456</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yu J., Li T., Wen Z., Wu S., Wang Z., Zheng J., et al. Identification of D/Yama2019 lineage-like influenza D virus in Chinese cattle. Frontiers in Veterinary Science. 2022; 9:939456. https://doi.org/10.3389/fvets.2022.939456</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit53"><label>53</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Yesilbag K., Toker E. B., Ates O. Recent strains of influenza D virus create a new genetic cluster for European strains. Microbial Pathogenesis. 2022; 172:105769. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2022.105769</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Yesilbag K., Toker E. B., Ates O. Recent strains of influenza D virus create a new genetic cluster for European strains. Microbial Pathogenesis. 2022; 172:105769. https://doi.org/10.1016/j.micpath.2022.105769</mixed-citation></citation-alternatives></ref><ref id="cit54"><label>54</label><citation-alternatives><mixed-citation xml:lang="ru">Molini U., Curini V., Jacobs E., Tongo E., Berjaoui S., Hemberger M. Y., et al. First influenza D virus full-genome sequence retrieved from livestock in Namibia, Africa. Acta Tropica. 2022; 232:106482. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2022.106482</mixed-citation><mixed-citation xml:lang="en">Molini U., Curini V., Jacobs E., Tongo E., Berjaoui S., Hemberger M. Y., et al. First influenza D virus full-genome sequence retrieved from livestock in Namibia, Africa. Acta Tropica. 2022; 232:106482. https://doi.org/10.1016/j.actatropica.2022.106482</mixed-citation></citation-alternatives></ref></ref-list><fn-group><fn fn-type="conflict"><p>The authors declare that there are no conflicts of interest present.</p></fn></fn-group></back></article>
