Козлов Дмитрий Александрович, ветеринарный врач лаборатории профилактики болезней птиц
мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901
Dmitry A. Kozlov, Veterinarian, Laboratory for Avian Diseases Prevention
Yur’evets, Vladimir 600901
Волков Михаил Сергеевич, д-р вет. наук, доцент, заведующий лабораторией эпизоотологии и мониторинга
мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901
Mikhail S. Volkov, Dr. Sci. (Veterinary Medicine), Associate Professor, Head of Laboratory for Epizootology and Monitoring
Yur’evets, Vladimir 600901
Чупина Ольга Андреевна, канд. биол. наук, заместитель руководителя центра доклинических исследований
мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901
Olga A. Chupina, Cand. Sci. (Biology), Deputy Head of the Centre for Preclinical Tests
Yur’evets, Vladimir 600901
Мороз Наталья Владимировна, канд. вет. наук, заведующий лабораторией профилактики болезней птиц
мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901
Natalia V. Moroz, Cand. Sci. (Veterinary Medicine), Head of Laboratory for Avian Diseases Prevention
Yur’evets, Vladimir 600901
Ирза Виктор Николаевич, д-р вет. наук, доцент, главный научный сотрудник информационно-аналитического центра
мкр. Юрьевец, г. Владимир, 600901
Viktor N. Irza, Dr. Sci. (Veterinary Medicine), Associate Professor, Chief Researcher, Information and Analysis Centre
Yur’evets, Vladimir 600901
Пронин Валерий Васильевич, д-р биол. наук, профессор, заместитель директора
ул. Академика Бакулова, стр. 1, пос. Вольгинский, 601125, Петушинский р-н, Владимирская обл.
Valery V. Pronin, Dr. Sci. (Biology), Professor, Deputy Director
bldg. 1, Akademika Bakulova str., Volginsky 601125, Petushinsky District, Vladimir Oblast
Введение. Респираторный микоплазмоз и инфекционный синовит птиц являются экономически значимыми и нотифицируемыми болезнями, поэтому вопрос борьбы с Mycoplasma gallisepticum и Mycoplasma synoviae на птицеводческих предприятиях является актуальным. Применение вакцин – один из способов специфической профилактики, однако при разработке препаратов особое внимание уделяется оценке их протективных свойств. Контрольное заражение не всегда приводит к проявлению болезни ввиду ее преимущественно хронического течения и факторности.
Цель исследования. Воссоздание факторов, способствующих проявлению болезни в лабораторных условиях, и выявление патологических изменений в организме зараженных и иммунизированных птиц на гистологическом уровне.
Материалы и методы. В качестве подопытных животных были отобраны серонегативные и вакцинированные куры кросса Хайсекс белый в возрасте 67 сут. В ходе опыта использовали штамм S6 Mycoplasma gallisepticum, штамм WVU 1853 Mycoplasma synoviae и штамм А/chicken/Amursky/03/12/Н9N2 вируса низкопатогенного гриппа птиц.
Результаты. Ассоциированное течение микоплазмозов с низкопатогенным гриппом птиц проявляется заболеванием и патогистологическими изменениями, среди которых легкие респираторные расстройства и суставной синдром. При гистологическом исследовании у зараженных невакцинированных птиц выявили нарушение целостности реснитчатого эпителия трахеи с очагами десквамации. У вакцинированной против микоплазмоза и экспериментально инфицированной птицы признаков отслаивания эпителия не наблюдалось, однако выявляли локальный отек подслизистого слоя трахеи. В железе третьего века у невакцинированных птиц, зараженных вирусом низкопатогенного гриппа птиц Н9N2, Mycoplasma gallisepticum и Mycoplasma synoviae, отмечали дистрофические изменения и инфильтрацию лимфоцитами, что свидетельствовало о наличии воспаления. В группе как вакцинированных, так и невакцинированных экспериментально инфицированных птиц в тканях легких выявляли лимфоцитарную инфильтрацию. Во всех группах птиц, кроме контрольной, наблюдали картину депопуляции лимфоцитов в корковом веществе фабрициевой сумки.
Заключение. Результатом данного исследования является создание метода проведения контрольного заражения птиц Mycoplasma gallisepticum и Mycoplasma synoviae, а также выявление условий для клинического проявления микоплазмозов, установление патологических изменений на клеточном уровне вследствие инфицирования.
Introduction. Respiratory mycoplasmosis and infectious synovitis are economically significant and notifiable avian diseases, therefore, the issue of Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae control on poultry farms is of great importance. Vaccination is one of the ways to ensure specific prevention, however, when a vaccine is developed, its protective properties are assessed with special focus. Challenge does not always lead to the disease manifestation due to its predominantly chronic and factor-dependant nature.
Objective. Laboratory simulation of the factors that contribute to the disease manifestation and a histological analysis of pathological changes in the infected and vaccinated poultry.
Materials and methods. Seronegative and vaccinated 67-day-old Haysex white cross chickens were selected for the experimental purposes. We used S6 strain of Mycoplasma gallisepticum, WVU 1853 strain of Mycoplasma synoviae and A/chicken/Amursky/03/12/H9N2 strain of low-pathogenicity avian influenza virus.
Results.The associated infection of mycoplasmoses and low-pathogenicity avian influenza is manifested as a disease with pathohistological changes that include mild respiratory and joint disorders. Histological tests of the infected non-vaccinated poultry revealed damaged tracheal ciliated epithelium with desquamation. The poultry vaccinated against mycoplasmosis and experimentally infected showed no signs of epithelial separation, however, local submucosal edema was observed in the trachea. Non-vaccinated poultry infected with low-pathogenicity avian influenza virus H9N2, Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae demonstrated dystrophic changes and lymphocyte infiltration in the third eyelid gland which suggested an inflammation. Lymphocytic lung tissue infiltration was detected both in the vaccinated and non-vaccinated experimentally infected poultry. All groups of chickens, except for the control one, demonstrated lymphocyte depopulation in the cortical substance of the fabricium sac.
Conclusion. The study resulted in developing a challenge procedure for poultry using Mycoplasma gallisepticum and Mycoplasma synoviae agents, in defining conditions for clinical manifestation of mycoplasmoses, in detecting infection-caused pathological changes at the cellular level.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.