References

veterinary

Ветеринария сегодня

Veterinary Science Today

2304-196X2658-6959

"Veinard"

10.29326/2304-196X-2021-10-4-285-294

veterinary-589

Research Article

БОЛЕЗНИ СВИНЕЙ

PORCINE DISEASES

Методы отбора крови для выявления антител к вирусу африканской чумы свиней у диких кабанов и домашних свиней в полевых условиях

Techniques of blood sampling for detection of African swine fever virus in wild boar and domestic pigs in the field conditions

https://orcid.org/0000-0002-5099-3050

Першин

А. С.

Pershin

A. S.

Першин Андрей Сергеевич, кандидат ветеринарных наук, старший научный сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Andrey S. Pershin, Candidate of Science (Veterinary Medicine), Senior Researcher, Reference Laboratory for African Swine Feve

Vladimir

https://orcid.org/0000-0001-9884-1841

Шотин

А. Р.

Shotin

A. R.

Шотин Андрей Романович, аспирант, ведущий биолог референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Andrey R. Shotin, Post-Graduate Student, Leading Biologist, Reference Laboratory for African Swine Fever

Vladimir

https://orcid.org/0000-0002-0955-9586

Морозова

Е. О.

Morozova

E. O.

Морозова Елизавета Олеговна, аспирант, сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Elizaveta O. Morozova, Post-Graduate Student, Researcher, Reference Laboratory for African Swine Fever

Vladimir

https://orcid.org/0000-0002-5438-8026

Иголкин

А. С.

Igolkin

A. S.

Иголкин Алексей Сергеевич, кандидат ветеринарных наук, заведующий референтной лабораторией по африканской чуме свиней

г. Владимир

Alexey S. Igolkin, Candidate of Science (Veterinary Medicine), Head of Reference Laboratory for African Swine Fever

Vladimir

https://orcid.org/0000-0002-4616-5316

Мануйлова

О. А.

Manuylova

O. A.

Мануйлова Ольга Анатольевна, биолог референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Olga A. Manuylova, Biologist, Reference Laboratory for African Swine Fever

Vladimir

https://orcid.org/0000-0001-6482-7814

Шевченко

И. В.

Shevchenko

I. V.

Шевченко Иван Вячеславович, кандидат биологических наук, старший научный сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Ivan V. Shevchenko, Candidate of Science (Biology), Senior Researcher, Reference Laboratory for African Swine Fever

Vladimir

https://orcid.org/0000-0002-2555-6043

Шевцов

А. А.

Shevtsov

А. А.

Шевцов Александр Анатольевич, кандидат ветеринарных наук, ведущий научный сотрудник информационно- аналитического центра

г. Владимир

Alexander А. Shevtsov, Candidate of Science (Veterinary Medicine), Leading Researcher, Information and Analysis Centre

Vladimir

https://orcid.org/0000-0001-8707-7710

Власова

Н. Н.

Vlasova

N. N.

Власова Наталья Никифоровна, доктор биологических наук, главный научный сотрудник референтной лаборатории по африканской чуме свиней

г. Владимир

Natalia N. Vlasova, Doctor of Science (Biology), Chief Researcher, Reference Laboratory for African Swine Feve

Vladimir

ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»)РоссияFGBI “Federal Centre for Animal Health” (FGBI “ARRIAH”)Russian Federation

2021

17112021

104285294

2021

Першин А.С., Шотин А.Р., Морозова Е.О., Иголкин А.С., Мануйлова О.А., Шевченко И.В., Шевцов А.А., Власова Н.Н.

Pershin A.S., Shotin A.R., Morozova E.O., Igolkin A.S., Manuylova O.A., Shevchenko I.V., Shevtsov А.А., Vlasova N.N.

Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.

This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.

https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/589

Считается, что вследствие высокой вирулентности вируса африканской чумы свиней его циркуляция на территории Российской Федерации сопровождается низкой серопревалентностью. Однако ввиду длительного неблагополучия, внедрения в популяцию дикого кабана и появления ослабленных вариантов вируса повышается значимость серологических исследований, направленных на выявление антител к возбудителю болезни. Для cбора полевых образцов биологического материала от животных с целью проведения молекулярно-генетических, вирусологических и серологических исследований можно использовать фильтровальную бумагу, а также зонд-тампоны. Специфичность и чувствительность твердофазного иммуноферментного анализа при исследовании образцов крови, нанесенной на фильтровальную бумагу, уступают результатам, получаемым при исследовании сыворотки крови, но тем не менее позволяют с успехом выявлять специфические антитела к вирусу африканской чумы свиней. Показана возможность использования фильтровальной бумаги, пропитанной кровью животных, для исследования методом иммуноблоттинга, однако оптимального результата удалось добиться при использовании иммунопероксидазного метода в сочетании с пробами, отобранными зонд-тампонами. При сравнении результатов твердофазного иммуноферментного анализа сывороток крови, полученных от домашних свиней (зараженных вирусом африканской чумы свиней изолятов Антоново 07/14 и Собинка 07/15), и крови, отобранной на фильтровальную бумагу при скарификации ушных вен, чувствительность составила 88,9%, специфичность – 90,6%. Однако использование иммунопероксидазного метода при исследовании образцов высушенной на зонд-тампоне крови показало 100%-е совпадение с иммуноферментным анализом, в то время как при исследовании сыворотки крови иммунопероксидазный метод превзошел иммуноферментный анализ по чувствительности. Следовательно, отбор крови с применением зонд-тампонов может быть рекомендован для проведения исследований после соответствующей валидации. Данный метод может быть особенно полезен для сбора информации об инфицированных диких кабанах, так как ее отсутствие делает невозможным применение эффективных стратегий эрадикации.

It is thought that due to the high virulence of the African swine fever virus its circulation in the Russian Federation is accompanied by a low seroprevalence. However taking into account a long-term ASF unfavourable situation, the introduction of the virus into the wild boar population, and the occurrence of attenuated viral variants, the significance of serological testing aimed at the detection of viral antibodies is increasing. To collect field samples of biological material from animals for molecular genetic, virological, and serological tests, filter paper, as well as swabs, can be used. The specificity and sensitivity of enzyme-linked immunosorbent assay when testing blood absorbed by filter paper are worse than those shown when testing sera, but they allow effective detection of African swine fever virus antibodies. It was demonstrated that blood absorbed on filter paper can be used for the immunoblot analysis, but the optimum performance could be achieved when the immunoperoxidase technique in combination with samples, taken by swabs was used. When comparing results of enzyme-linked immunosorbent assay performed on sera collected from domestic pigs (infected with ASFV isolates Antonovo 07/14 and Sobinka 07/15), and blood from ear veins absorbed on filter paper the sensitivity was 88.9%, specificity – 90.6%. However, the use of the immunoperoxidase technique for testing blood from swabs showed 100% coincidence with ELISA, while testing of sera with immunoperoxidase technique was superior to ELISA in sensitivity. This means blood sampling using swabs may be recommended for tests after proper validation. This technique can be especially useful for collecting data about infected wild boars because effective eradication strategies are impossible without such data.

африканская чума свинейсерологическая диагностикатвердофазный иммуноферментный анализиммунопероксидазный методиммуноблоттингфильтровальная бумагазонд-тампоны

African swine feverserological diagnosisenzyme-linked immunosorbent assayimmunoperoxidase techniqueimmunoblot analysisfilter paperswabs

Работа выполнена за счет средств ФГБУ «ВНИИЗЖ» в рамках тематики научно-исследовательских работ «Ветеринарное благополучие»

The study was funded by the FGBI “ARRIAH” within the framework of “Veterinary Welfare” research work

References1

Груздев К. Н., Иголкин А. С., Рахманов А. М., Шевцов А. А. Африканская чума свиней в России: распространение и клинико-анатомическое проявление. Ветеринария сегодня. 2014; (4): 10–24. Режим доступа: https://www.elibrary.ru/item.asp?id=22445544.

Gruzdev K. N., Igolkin A. S., Rakhmanov A. M., Shevtsov A. A. African swine fever in Russia: spread, clinical and anatomical manifestations. Veterinary Science Today. 2014; 4: 10–24. Available at: https://www.elibrary.ru/ item.asp?id=22445544.

Ремыга С. Г., Першин А. С., Шевченко И. В., Иголкин А. С., Шевцов А. А. Клинические и патологоанатомические изменения у диких европейских кабанов и домашних свиней при заражении вирусом африканской чумы свиней. Ветеринария сегодня. 2016; (3): 46–51. Режим доступа: https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/260.

Remyga S. G., Pershin A. S., Shevchenko I. V., Igolkin A. S., Shevtsov A. A. Clinical and post-mortem signs in European wild boars and domestic pigs infected with African swine fever virus. Veterinary Science Today. 2016; (3): 46–51. Available at: https://veterinary.arriah.ru/jour/article/view/260. (in Russ.)

Шевченко И. В., Ремыга С. Г., Першин А. С., Иголкин А. С., Рахманов А. М. Клинико-анатомическое проявление африканской чумы свиней при заражении разными методами вирусом, выделенным от дикого кабана. Современные проблемы патологической анатомии, патогенеза и диагностики болезней животных: материалы 18-й Международной научно-методической конференции. М.: МГАВМиБ им. К. И. Скрябина; 2014; 82–84. eLIBRARY ID: 22496854.

Shevchenko I. V., Remyga S. G., Pershin A. S., Igolkin A. S., Rakhmanov A. M. Kliniko-anatomicheskoe proyavlenie afrikanskoi chumy svinei pri zarazhenii raznymi metodami virusom, vydelennym ot dikogo kabana = Clinical and anatomical manifestations of African swine fever when challenged with the wild boar virus using different routes. Sovremennye problemy patologicheskoi anatomii, patogeneza i diagnostiki boleznei zhivotnykh: materialy 18-i Mezhdunarodnoi nauchno-metodicheskoi konferentsii = Current challenges of animal disease pathological anatomy, pathogenesis and diagnostics: Proceedings of the 18th International Scientific and Practical Conference. Мoscow: Moscow SAVMB; 2014; 82–84. eLIBRARY ID: 22496854. (in Russ.)

Schoder M. E., Tignon M., Linden A., Vervaeke M., Cay A. B. Evaluation of seven commercial African swine fever virus detection kits and three Taq polymerases on 300 well-characterized field samples. J. Virol. Methods. 2020; 280:113874. DOI: 10.1016/j.jviromet.2020.113874.

Chenais E., Depner K., Guberti V., Dietze K., Viltrop A., Ståhl K. Epidemiological considerations on African swine fever in Europe 2014–2018. Porcine Health Manag. 2019; 5:6. DOI: 10.1186/s40813-018-0109-2.

Marcon A., Linden A., Satran P., Gervasi V., Licoppe A., Guberti V. R0 estimation for the African swine fever epidemics in wild boar of Czech Republic and Belgium. Vet. Sci. 2019; 7 (1):2. DOI: 10.3390/vetsci7010002.

Груздев К. Н., Закутский Н. И., Диев В. И. Африканская чума свиней: современное состояние, эпизоотология и меры борьбы (аналитический обзор). Ветеринарный врач. 2017; 5: 3–8. Режим доступа: http:// vetvrach-vnivi.ru/attachments/5ac1ea7624c56.pdf.

Gruzdev K. N., Zakutsky N. I., Diev V. I. African swine fever: current state and epizootological features and prospects of prevention and control (review). Veterinarian. 2017; 5: 3–8. Available at: http://vetvrach-vnivi.ru/ attachments/5ac1ea7624c56.pdf. (in Russ.)

Iglesias I., Montes F., Jesús Muñoz M., Arias M., Gogin A., Kolbasov D., de la Torre A. Role of wild boars and domestic pigs in the spread of African swine fever in the Russian Federation (2007–2013). 8th Annual EPIZONE Meeting, 23–25 September 2014 Copenhagen, Denmark. Режим доступа: https://www.epizone-eu.net/en/Home/Sitemap/Annual-meeting-1/Abstractbook-and-poster-abstracts.htm.

Iglesias I., Montes F., Jesús Muñoz M., Arias M., Gogin A., Kolbasov D., de la Torre A. Role of wild boars and domestic pigs in the spread of African swine fever in the Russian Federation (2007–2013). 8th Annual EPIZONE Meeting, 23–25 September 2014 Copenhagen, Denmark. Available at: https:// www.epizone-eu.net/en/Home/Sitemap/Annual-meeting-1/Abstractbook-and-poster-abstracts.htm.

Макаров В. В., Гусев А. А., Гусева Е. В., Сухарев О. И., Коломыцев А. А. Природная очаговость африканской чумы свиней. Ветеринарная патология. 2011; 3: 9–18. Режим доступа: https://fsvps.gov.ru/fsvps-docs/ru/news/asf/asf_makarov/public2.pdf.

Makarov V. V., Gusev A. A., Guseva E. V., Sukharev O. I., Kolomytsev A. A. Prirodnaya ochagovost’ afrikanskoi chumy svinei = Natural nidality of African swine disease. Veterinarnaya patologiya. 2011; 3: 9–18. Available at: https://fsvps.gov.ru/fsvps-docs/ru/news/asf/asf_makarov/public2.pdf. (in Russ.)

Фертиков В. И., Егоров А. Н., Тихонов А. Н., Колбасов Д. В., Хрипунов Е. М., Куриннов В. В. и др. Классическая и африканская чума свиней: стратегия профилактики в охотничьих угодьях России. Сельскохозяйственная биология. 2010; 4: 7–12. Режим доступа: https://www.agriscience.ru/pdf/0131-6397/2010/4/7-12.pdf.

Fertikov V. I., Egorov A. N., Tikhonov A. N., Kolbasov D. V., Khripunov E. M., Kurinnov V. V., et al. Classical and African swine fever: about strategy for its prophylaxy on hunting territories in Russia. Agricultural Biology. 2010; 4: 7–12. Available at: https://www.agriscience.ru/pdf/01316397/2010/4/7-12.pdf. (in Russ.)

Першин А. С., Шевченко И. В., Иголкин А. С., Жуков И. Ю., Власова Н. Н., Мануйлова О. А. Динамика антителообразования при экспериментальном заражении вирусом африканской чумы свиней. Ветеринария Кубани. 2019; 4: 3–7. DOI: 10.33861/2071-8020-2019-4-3-7.

Pershin A. S., Shevchenko I. V., Igolkin А. S., Zhukov I. Yu., Vlasova N. N., Manuylova O. A. Dynamics of antibodies production after experimental challenge with ASF virus. Veterinaria Kubani. 2019; 4: 3–7. DOI: 10.33861/2071-8020-2019-4-3-7. (in Russ.)

Nurmoja I., Petrov A., Breidenstein C., Zani L., Forth J. H., Beer M., et al. Biological characterization of African swine fever virus genotype II strains from north-eastern Estonia in European wild boar. Transbound. Emerg. Dis. 2017; 64 (6): 2034–2041. DOI: 10.1111/tbed.12614.

Pershin A., Shevchenko I., Igolkin A., Zhukov I., Mazloum A., Aronova E., et al. Long-term study of the biological properties of ASF virus isolates originating from various regions of the Russian Federation in 2013–2018. Vet. Sci. 2019; 6 (4):99. DOI: 10.3390/vetsci6040099.

Cerbule A. R. Prevalence and age structure of African swine fever survivor animals in the wild boar population during the epidemic in Estonia: Final Thesis Curriculum in Veterinary Medicine. Tartu; 2020. Режим доступа: http://hdl.handle.net/10492/5775.

Mur L., Igolkin A., Varentsova A., Pershin A., Remyga S., Shevchenko I., et al. Detection of African swine fever antibodies in experimental and field samples from the Russian Federation: implications for control. Transbound. Emerg. Dis. 2016; 63 (5):e436–440. DOI: 10.1111/tbed.12304.

Rodríguez-Prieto V., Vicente-Rubiano M., Sánchez-Matamoros A., Rubio-Guerri C., Melero M., Martínez-López B., et al. Systematic review of surveillance systems and methods for early detection of exotic, new and re-emerging diseases in animal populations. Epidemiol. Infect. 2015; 143 (10): 2018–2042. DOI: 10.1017/S095026881400212X.

Цибезов В. В., Терехова Ю. О., Верховский О. А., Першин А. С., Власова Н. Н., Иголкин А. С. и др. Эффективность иммунохроматографической тест-системы для быстрого выявления вируса африканской чумы свиней. Ветеринария. 2015; 5: 58–64. eLIBRARY ID: 23527048.

Tsibezov V. V., Terekhova Yu. O., Verkhovsky O. A., Pershin A. S., Vlasova N. N., Igolkin A. S., et al. Efficacy of the immunochromato-graphic method for the rapid detection of African swine fever virus. Veterinariya. 2015; 5: 58–64. eLIBRARY ID: 23527048. (in Russ.)

Новиков А. А., Исаев Д. В., Павлов П. М., Дежкин А. В., Пантелеева О. А. Апробация экспресс-методов выявления возбудителей заболеваний охотничьих ресурсов в полевых условиях (АЧС). Состояние среды обитания и фауна охотничьих животных России и сопредельных территорий: материалы II Международной, VII Всероссийской научно-практической конференции (10–11 марта 2016 г.). Балашиха; 2016; 381–386.

Novikov A. A., Isaev D. V., Pavlov P. M., Dezhkin V. A., Panteleeva O. A. Approbation of express-methods for detection of pathogens of hunting resources in the field (ASF). Sostoyanie sredy obitaniya i fauna okhotnich’ikh zhivotnykh Rossii i sopredel’nykh territorii: materialy II Mezhdunarodnoi, VII Vserossiiskoi nauchno-prakticheskoi konferentsii (10–11 marta 2016 g.) = Conditions of game habitat and fauna in Russia and neighboring regions: Proceedings of II International, VII All-Russian Scientific and Practical Conference (March 10–11, 2016). Balashikha; 2016; 381–386. (in Russ.)

Середа А. Д., Дубровская О. А., Иматдинов А. Р., Стрижакова О. М., Васильев А. П., Синдрякова И. П., Луницин А. В. Лабораторная диагностика хронической и бессимптомной форм африканской чумы свиней. Сельскохозяйственная биология. 2016; 51 (4): 459–466. DOI: 10.15389/ agrobiology.2016.4.459rus.

Sereda A. D., Dubrovskaya O. A., Imatdinov A. R., Strizhakova O. M., Vasil’ev A. P., Sindryakova I. P., Lunitsin A. V. Laboratory diagnostics of chronic and asymptomatic forms of African swine fever. Agricultural Biology. 2016; 51 (4): 459–466. DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.459eng.

Куриннов В. В., Белянин С. А., Васильев А. П., Стрижакова О. М., Лыска В. М., Ногина И. В. и др. Экспериментальные и полевые исследования специфических антител в тканях органов у инфицированных вирусом АЧС домашних свиней и кабанов с острым течением болезни. Ветеринария Кубани. 2012; 4: 9–11. Режим доступа: http://vetkuban.com/num4_20124.html.

Kurinnov V. V., Belyanin S. A., Vasllyev A. P., Strizhakova O. M., Lyska V. M., Nogina I. V., et al. Experimental and field researches of specific antibodies in tissues of the house pigs infected with virus ASF and wild boars with a sharp clinical course. Veterinaria Kubani. 2012; 4: 9–11. Available at: http://vetkuban.com/num4_20124.html. (in Russ.)

Pendergraph G. E., Pendergraph C. B. Handbook of Phlebotomy and Patient Service Techniques. 4th ed. Baltimore: Williams&Wilkins; 1998; 245 p.

Pendergraph G. E., Pendergraph C. B. Handbook of Phlebotomy and Patient Service Techniques. 4th ed. Baltimore: Williams&Wilkins; 1998; 245.

Власов Г. С., Пономарева А. М., Полынцев Д. Г., Головаченко В. А., Фадин Д. В. Системы забора крови и интерференция в иммуноанализе. Клиническая лабораторная диагностика. 2007; 4: 24–29.

Vlasov G. S., Ponomareva A. M., Polyntsev D. G., Golovachenko V. A., Fadin D. V. Sistemy zabora krovi i interferentsiya v immunoanalize = Blood sampling tools and interference during the immunoassay. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 2007; 4: 24–29. (in Russ.)

Vergne T., Guinat C., Petkova P., Gogin A., Kolbasov D., Blome S., et al. Attitudes and beliefs of pig farmers and wild boar hunters towards reporting of African swine fever in Bulgaria, Germany and the Western Part of the Russian Federation. Transbound. Emerg. Dis. 2016; 63 (2):e194–204. DOI: 10.1111/tbed.12254.

Blome S., Goller K. V., Petrov A., Dräger C., Pietschmann J., Beer M. Alternative sampling strategies for passive classical and African swine fever surveillance in wild boar – extension towards African swine fever virus antibody detection. Vet. Microbiol. 2014; 174 (3–4): 607–608. DOI: 10.1016/j.vetmic.2014.09.018.

Помелова В. Г., Быченкова Т. А., Бекман Н. И., Козлова Е. Г., Воробьева Н. Н., Фризен В. И. Тестирование антител к вирусу клещевого энцефалита с применением высушенной на фильтровальной бумаге крови. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2008; 1: 50–55. eLIBRARY ID: 9943075.

Pomelova V. G., Bychenkova T. A., Bekman N. I., Kozlova E. G., Vorobyeva N. N., Frizcn V. I. Testing for antibodies to tick-borne encephalitis virus using blood dried on filter paper. Journal of Microbiology, Epidemiology and Immunobiology. 2008; 1: 50–55. eLIBRARY ID: 9943075. (in Russ.)

Carlson J., Zani L., Schwaiger T., Nurmoja I., Viltrop A., Vilem A., et al. Simplifying sampling for African swine fever surveillance: Assessment of antibody and pathogen detection from blood swabs. Transbound. Emerg. Dis. 2018; 65 (1):e165–e172. DOI: 10.1111/tbed.12706.

Bang I. Mikromethoden zur Blutuntersuchung. In: Mikromethoden zur Blutuntersuchung. ed. by G. Blix. Munich: J. F. Bergmann-Verlag; 1922; 9–54. DOI: 10.1007/978-3-662-34421-7_1.

Curry P. S., Ribble C., Sears W. C., Orsel K., Hutchins W., Godson D., et al. Blood collected on filter paper for wildlife serology: evaluating storage and temperature challenges of field collections. J. Wildl. Dis. 2014; 50 (2): 308–321. DOI: 10.7589/2012-06-150.

Duncombe L., Commander N. J., Erdenlig S., McGiven J. A., Stack J. Investigating the use of protein saver cards for storage and subsequent detection of bovine anti-Brucella abortus smooth lipopolysaccharide antibodies and gamma interferon. Clin. Vaccine Immunol. 2013; 20 (11): 1669–1674. DOI: 10.1128/CVI.00033-13.

Wasniewski M., Barrat J., Combes B., Guiot A. L., Cliquet F. Use of filter paper blood samples for rabies antibody detection in foxes and raccoon dogs. J. Virol. Methods. 2014; 204: 11–16. DOI: 10.1016/j.jviromet.2014.04.005.

Randriamparany T., Kouakou K. V., Michaud V., Fernández-Pinero J., Gallardo C., Le Potier M. F., et al. African swine fever diagnosis adapted to tropical conditions by the use of dried-blood filter papers. Transbound. Emerg. Dis. 2016; 63 (4): 379–388. DOI: 10.1111/tbed.12295.

Каторкин С. А., Газаев И. Х., Кудряшов Д. А., Аронова Е. В., Бурдинская О. Н., Луницин А. В. и др. Использование «сухих пятен крови» для выявления ДНК вируса африканской чумы свиней с помощью полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Молекулярная диагностика – 2014: материалы VIII Всероссийской научно-практической конференции с международным участием (18–20 марта 2014 г.). Т. 2. М.: МБА; 452–453. eLIBRARY ID: 21410394.

Katorkin S. A., Gazaev I. Kh., Kudryashov D. A., Aronova E. V., Burdinskaya O. N., Lunitsin A. V., et al. Ispol’zovanie «sukhikh pyaten krovi» dlya vyyavleniya DNK virusa afrikanskoi chumy svinei s pomoshch’yu polimeraznoi tsepnoi reaktsii v rezhime real’nogo vremeni = Use of “dry blood dots” for ASFV DNA detection using real-time polymerase reaction. Molekulyarnaya diagnostika – 2014: materialy VIII Vserossiiskoi nauchnoprakticheskoi konferentsii s mezhdunarodnym uchastiem (18–20 marta 2014 g.) = Molecular Diagnostics – 2014: Proceedings of VIII All-Russian Scientific and Practical Conference with international participation (March 18–20, 2014). Vol. 2. Мoscow: MVA; 452–453. eLIBRARY ID: 21410394. (in Russ.)

Arya S. C. Stability of human immunodeficiency virus type 1 antibodies in whole blood-impregnated filter papers under various tropical conditions. J. Clin. Microbiol. 1993; 31 (3): 765–766. DOI: 10.1128/jcm.31.3.765-766.1993.

World Health Organization. Monitoring vaccine wastage at country level: guidelines for programme managers. WHO; 2005. Режим доступа: https://apps.who.int/iris/handle/10665/68463.

World Health Organization. Monitoring vaccine wastage at country level: guidelines for programme managers. WHO; 2005. Available at: https://apps.who.int/iris/handle/10665/68463.

CEIV Farma. How to become CEIV Pharma Certified. Режим доступа: https://www.iata.org/contentassets/494bc14afd-934b0193735e9a47091d72/iata_ceiv-pharma_how20to20become20ceiv20pharma20certified.pdf.

CEIV Farma. How to become CEIV Pharma Certified. Available at: https://www.iata.org/contentassets/494bc14afd934b0193735e9a47091d72/iata_ceiv-pharma_how20to20become20ceiv20pharma20certified.pdf.

GAVI Alliance. Report to the Programme and Policy Committee: GAVI’s supply chain strategy framework, 9–10 October 2013.

The authors declare that there are no conflicts of interest present.