Куникова Екатерина Дмитриевна, аспирант, технолог лаборатории профилактики болезней птиц
г. Владимир
Ekaterina D. Kunikova, Post-Graduate Student, Technologist, Laboratory for Avian Diseases Prevention
Vladimir
Мороз Наталья Владимировна, кандидат ветеринарных наук, заведующий лабораторией профилактики болезней птиц
г. Владимир
Natalia V. Moroz, Candidate of Science (Veterinary Medicine), Head of Laboratory for Avian Diseases Prevention
Vladimir
Долгова Мария Алексеевна, кандидат биологических наук, младший научный сотрудник лаборатории профилактики болезней птиц
г. Владимир
Maria A. Dolgova, Candidate of Science (Biology), Junior Researcher, Laboratory for Avian Diseases Prevention
Vladimir
Малахова Людмила Васильевна, кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры эпизоотологии, паразитологии и микробиологии
пос. Караваево, Костромская обл.
Lyudmila V. Malakhova, Candidate of Science (Veterinary Medicine), Associate Professor, Department of Epizootology, Parasitology and Microbiology
Кaravaevo, Kostroma Oblast
Комаров Илья Александрович, младший научный сотрудник лаборатории профилактики болезней птиц
г. Владимир
Ilya A. Komarov, Junior Researcher, Laboratory for Avian Diseases Prevention
Vladimir
Цель настоящих исследований состояла в подборе режимов инактивации вируса геморрагической болезни кроликов 1-го (RHDV1) и 2-го (RHDV2) типов для использования полученных антигенов в составе инактивированных вакцин и диагностикумов. Изучали инактивирующее действие аминоэтилэтиленимина и β-пропиолактона в различных концентрациях в зависимости от времени экспозиции и температуры. Оценку инактивирующего эффекта используемого соединения соответственно принятым условиям испытания (концентрация, температура и время экспозиции) проводили на группе кроликов. Каждому животному делали внутримышечную инъекцию пробы инактивируемого материала в объеме 1 см3. По истечении максимального интервала экспозиции аналогичным образом испытывали пробу контрольного образца вирусного материала, который содержали при тех же условиях без добавления инактиванта. В опытных и контрольных группах повреждающее действие оценивали с помощью показателя летальности: L = m/n, где m – число погибших животных; n – общее количество кроликов в группе для испытания данной пробы инактивируемого материала. Посмертный диагноз подтверждали исследованием гомогената ткани печени кроликов на наличие соответствующих антигенов при помощи иммуноферментного анализа. Установили, что аминоэтилэтиленимин и β-пропиолактон не одинаково воздействовали на исследуемые варианты вируса. В целях максимального со- хранения антигенных структур вируса считали, что оптимальными условиями инактивации будут следующие: для RHDV1 – аминоэтилэтиленимином в концентрации 0,3% при 37 °С и экспозиции 72 ч или β-пропиолактоном в концентрации 0,1–0,3% при 25–37 °С и экспозиции 24–48 ч; для RHDV2 – аминоэтилэтиленимином в концентрации 1,0% при 37 °С и экспозиции 72 ч или β-пропиолактон в концентрации 0,3% при 25 °С и экспозиции 24 ч.
The purpose of these studies was to optimize RHDV type 1 and 2 (RHDV1 and RHDV2) inactivation modes to use the obtained antigens in inactivated vaccines and diagnosticums. The inactivating effect of aminoethylethylenimine and β-propiolactone was studied in different concentrations in correlation with the exposure time and temperature. The correlation between the inactivating effect of the compound used and the accepted test conditions (concentration, temperature, and exposure time) was studied on a group of rabbits, each of which was injected intramuscularly with 1 cm3 of the inactivated material sample. At the end of the maximum exposure interval, a control sample of the viral material, kept under the same conditions without any inactivant added was similarly tested. Lethality was considered to evaluate the damaging action in the test and control groups: L = m/n, where m is the number of dead animals; n is the total number of rabbits in the group for testing of the inactivated material sample. The postmortem diagnosis was confirmed by testing the rabbit liver tissue homogenate for relative antigens using ELISA. It was found that aminoethylethylenimine and β-propiolactone did not have the same effect on the studied variants of the virus. In order to preserve at maximum the antigenic structures of the virus, the following inactivation modes were considered to be optimal: for RHDV1-aminoethylethylenimine at a concentration of 0.3% at 37 °C, exposure time – 72 hours, or β-propiolactone at a concentration of 0.1–0.3% at 25–37 °С, exposure time – 24–48 hours; for RHDV2 – aminoethylethylenimine at a concentration of 1% at 37 °C, exposure time – 72 hours, or β-propiolactone at a concentration 0.3% at 25 °С, exposure time – 24 hours.
The authors declare that there are no conflicts of interest present.