
Ежеквартальный научный журнал «Ветеринария сегодня» основан в 2012 году и зарегистрирован в Федеральной службе по надзору в сфере связи, информационных технологий и массовых коммуникаций, свидетельство о регистрации № ФС77-49033 от 21 марта 2012 г. Журналу присвоен международный стандартный серийный номер ISSN 2304-196Х (Print), ISSN 2658-6959 (Online).
Миссией издания является представление информации об основных направлениях развития российской и мировой ветеринарной науки и практики и привлечение внимания научной общественности к актуальным проблемам и инновационным разработкам в области ветеринарии.
Основной целью деятельности журнала «Ветеринария сегодня» является знакомство научной общественности и широкого круга читателей с современными достижениями российской и мировой ветеринарной науки.
В журнале публикуются оригинальные завершенные фундаментальные и прикладные научные работы в области общей и ветеринарной вирусологии, бактериологии, иммунологии, микологии, микотоксикологии, эпизоотологии, обзорные статьи, рецензии и информационные сообщения о российских и международных научно-практических мероприятиях с целью внедрения в науку и практику достижений ветеринарной науки, которые будут способствовать снижению ущерба, наносимого инфекционными заболеваниями животных.
Журнал ориентирован на ученых, занимающихся фундаментальными и прикладными исследованиями в области общей и ветеринарной вирусологии, эпизоотологии, иммунологии, микологии, митоксикологии, бактериологии, практикующих ветеринарных врачей и врачей ветеринарных лабораторий и государственных ветеринарных служб, преподавателей ВУЗов ветеринарной, биологической, медицинской направленностей, аспирантов и студентов ВУЗов и колледжей.
Учредитель журнала «Ветеринария сегодня» - Федеральное государственное бюджетное учреждение «Федеральный центр охраны здоровья животных» (ФГБУ «ВНИИЗЖ»), г. Владимир, мкр. Юрьевец.
На основании Распоряжения № Р-154 от 21 сентября 2015 года Министерства образования и науки Российской Федерации научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в Перечень рецензируемых научных изданий, в которых должны быть опубликованы основные результаты диссертаций на соискание ученой степени кандидата наук и на соискание ученой степени доктора наук по специальностям:
- 1.5.10 – Вирусология (ветеринарные науки);
- 4.2.3 – Инфекционные болезни и иммунология животных (ветеринарные науки).
Научный журнал «Ветеринария сегодня» соответствует всем требованиям, предъявляемым к рецензируемым научным изданиям.
Журнал «Ветеринария сегодня» представлен в Научно-электронной библиотеке (НЭБ) – головном исполнителе проекта по созданию Российского индекса научного цитирования (РИНЦ). Электронные версии журнала размещаются в полнотекстовом формате на сайте Научной электронной библиотеки eLIBRARY.RU.
Научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в информационно-аналитическую систему-Российский индекс научного цитирования (РИНЦ). Электронные версии журнала размещаются в полнотекстовом формате на сайте Научной электронной библиотеки (НЭБ) e-LIBRARY.RU.
Научный журнал «Ветеринария сегодня» включен в список журналов, входящих в базу данных RSCI (Russian Science Citation Index).
С 2020 года журнал «Ветеринария сегодня» включен в международную базу данных на платформе EBSCOhost.
Журнал «Ветеринария сегодня» распространяется на территории России, а также в профильные научные центры других стран. Статьи публикуются на русском и английском языках.
Текущий выпуск
ЯЩУР 
Ящур – высококонтагиозное вирусное заболевание парнокопытных животных, способное вызывать эпизоотии и наносить большой экономический ущерб. Болезнь остается огромной проблемой в развивающихся странах и представляет постоянную угрозу для развитых стран. Важным инструментом контроля заболевания является обнаружение антител к неструктурным белкам вируса ящура в крови восприимчивых животных. Это единственный способ, позволяющий достоверно дифференцировать вакцинированных животных от переболевших и вирусоносителей. Для выявления антител к неструктурным протеинам вируса ящура разработаны различные модификации твердофазного иммуноферментного анализа. В качестве антигена в них используются рекомбинантные неструктурные белки вируса ящура, чаще всего 3АВС или 3АВ. За короткий срок иммуноферментный анализ с использованием рекомбинантных антигенов вируса ящура прошел путь от внутрилабораторного метода до общедоступных коммерческих тест-систем, большинство из которых обладают высокой диагностической специфичностью и чувствительностью. Данный метод широко применяется в надзоре за ящуром. В странах или зонах, благополучных по ящуру без вакцинации, иммуноферментный анализ, основанный на обнаружении антител к неструктурным белкам вируса ящура, применяется как основной метод серологического мониторинга и ретроспективной диагностики заболевания. В благополучных по ящуру странах и зонах с вакцинацией этот метод используется для доказательства отсутствия вирусной инфекции в вакцинированных стадах. В Южной Америке при эрадикации заболевания иммуноферментный анализ, основанный на обнаружении антител к неструктурным белкам вируса ящура, применялся для выявления инфицированных животных, а в настоящее время этот метод используется для мониторинга циркуляции возбудителя в еще неблагополучных по заболеванию странах Азии и Африки, реализующих программу прогрессивного контроля за ящуром. В России, как стране с зонами вакцинации против ящура, данный метод является обязательным инструментом надзора за заболеванием. Обзор составлен на основе анализа 65 источников.
ОБЩИЕ ВОПРОСЫ 
В настоящее время в различных областях молекулярной биологии применяется основанная на флуоресцентной детекции количественная полимеразная цепная реакция в режиме реального времени, которая является передовой технологией генной диагностики. Практическая простота, а также сочетание высокой скорости, чувствительности и специфичности сделали возможным использование данного анализа для количественного определения нуклеиновых кислот. В статье представлены общие сведения и отражены рекомендуемые правила для разработки методик количественного ПЦР-анализа в режиме реального времени. Материалы публикации нацелены на предоставление исследователям и рецензентам необходимых требований, которых следует придерживаться, чтобы обеспечить высокую точность, надежность и прозрачность экспериментов, правильную интерпретацию и повторяемость результатов анализа. Представлены современные подходы, которые позволяют получать надежные и достоверные результаты, проводимые разными операторами, в разное время и в разных лабораториях. Приведены основные требования, предъявляемые к применяемым реагентам, перечням нуклеотидных последовательностей и методам проведения валидационного анализа. В целом в представленной публикации отражена информация для достижения трех конечных целей работы: предоставить авторам широкий арсенал инструментов и требований для разработки методик на основе количественной полимеразной цепной реакции в режиме реального времени; дать возможность рецензентам и редакторам оценивать качество представленных материалов статей и методических рекомендаций/указаний в соответствии с требуемыми критериями; получать однородные, сопоставимые и надежные результаты исследований, выполненных с помощью данного метода.
Одним из главных факторов, способных мотивировать работника к продуктивному труду, а также влиять на престиж профессии, является уровень заработной платы. В статье представлены результаты анализа заработной платы ветеринарных специалистов государственной ветеринарной службы в целом по стране, по федеральным округам, по 85 регионам страны, а также на различных уровнях организации ветеринарной службы в 2021 г. Приведена оценка заработной платы ветспециалистов в сравнении с зарплатой, сложившейся в целом по экономике субъектов Российской Федерации. Размер среднемесячной заработной платы ветеринарных специалистов в целом по госветслужбе варьируется в широком диапазоне: от 16,3 до 114,9 тыс. руб. На разных уровнях организации госветслужбы отличия между минимальной и максимальной заработной платой составляют 5–8 раз. Размер оплаты труда ветспециалистов не достигает размера оплаты труда, сложившегося по экономике своих субъектов, в целом по госветслужбе – в 69 регионах страны, в учреждениях лечебно-профилактического звена – в 71 субъекте, в организациях лабораторно-диагностического профиля – в 72 субъектах. Из всех федеральных округов наибольшее отставание в заработной плате отмечается в Северо-Кавказском федеральном округе как в абсолютном значении (около 21 тыс. руб.), так и по отношению к средней по экономике субъектов данного федерального округа (64%). В работе рассмотрены также значения модальной и медианной заработных плат ветеринарных специалистов, позволяющие с разных сторон оценить размер оплаты труда данной категории сотрудников госветслужбы.
БОЛЕЗНИ ПТИЦ 
Инфекционная бурсальная болезнь вызывается небольшим безоболочечным вирусом, обладающим высокой устойчивостью во внешней среде. Вирус инфекционной бурсальной болезни воздействует на иммунную систему кур всесторонне и комплексно, разрушая В-лимфоциты, привлекая Т-клетки и активируя макрофаги. Как РНК-содержащий вирус, возбудитель характеризуется высокой частотой мутаций, что приводит к появлению штаммов с измененной антигенностью или повышенной вирулентностью. Молекулярная основа патогенности вируса и точная причина клинического заболевания и смерти до сих пор плохо изучены, так как это не имеет четкой связи с тяжестью поражений и степенью повреждения фабрициевой сумки. Однако последние исследования указали на роль усиления врожденного иммунного ответа на ранней стадии инфекции с повышенной продукцией промедиаторов, которые вызывают цитокиновый шторм. В случае инфекционной бурсальной болезни иммунодепрессия является как прямым следствием инфицирования специфических иммунных клеток-мишеней, так и косвенным следствием взаимодействий, происходящих в иммунной сети организма птицы. Инфицирование высоковирулентным штаммом и заражение цыплят в раннем возрасте после переболевания или субклинической инфекции приводит к иммуносупрессии с более серьезными последствиями. Хотя иммунодепрессия, вызванная возбудителем инфекционной бурсальной болезни, в основном направлена на B-лимфоциты, также было продемонстрировано влияние на клеточно-опосредованный иммунитет, что усиливает воздействие вируса на иммунокомпетентность цыплят. Недавний прогресс в области иммунологии птиц позволил лучше узнать иммунологические механизмы, участвующие в развитии заболевания. В данном обзоре основное внимание уделяется роли врожденного иммунитета в патогенезе инфекционной бурсальной болезни, так как он служит первой линией защиты на пути репликации вируса и может определить исход заболевания.
ВЕТЕРИНАРНАЯ МИКРОБИОЛОГИЯ 
Сибирская язва – особо опасная инфекционная болезнь животных и человека, вызываемая спорообразующей бактерией Bacillusanthracis. В настоящее время данное заболевание широко распространено во многих странах мира. Некоторыерегионы Российской Федерации являются эндемичными по сибирской язве. Большое число средств терапии, диагностики и профилактики сибиреязвенной инфекции разрабатываются на основе гипериммунных сывороток крови. Известные в настоящее время коммерческие сыворотки крови получают путемгипериммунизации лошадей, длящейся в течение 2 мес. и представляющей длительный и дорогостоящий процесс. Данный факт свидетельствует о необходимости разработки более быстрых и дешевых способов получения гипериммунных противосибиреязвенных сывороток крови, что и явилось целью работы. В опыте использовали живую культуру вакцинного штамма 55-ВНИИВВиМ Bacillusanthracis, который применяется в России для создания живых лекарственных препаратов против сибирской язвы животных. В качестве модели для получения сывороток крови были выбраны кролики. В результате проведенной работы подобран способ гипериммунизации кроликов, включающий внутривенное введение антигена в нарастающем объеме по схеме: I инъекция – 0,5 см3 ; II инъекция – 1 см3 ; III инъекция – 2 см3в дозе 100 млн м. к./гол. в1 см3с интервалом между введениями 4 сут. Указанная схема дала возможность получить сыворотку крови с высоким титром антител, равным 14log2 . Для долгосрочного хранения полученной сыворотки отработан режим ее лиофилизации, позволивший достичь остаточной влажности готового препарата в 2%. При изучении длительности хранения лиофилизированной сыворотки было установлено, что исходная активность и физико-химические свойства препарата сохраняются в течение 30 мес.
Проведена индикация специфических хламидийных антител в реакции связывания комплемента и генома хламидий методом полимеразной цепной реакции у сукрольных крольчих при экспериментальной инфекции, вызванной Chlamydiapsittaci. Развитие инфекционного процесса у зараженных кроликов сопровождалось повышением температуры тела и появлением респираторных симптомов и было подтверждено наличием в их крови специфических хламидийных антител и патологическими родами. При исследовании парных сывороток крови кроликов в реакции связывания комплемента выявили нарастание титров специфических хламидийных антител, которые на седьмые сутки после заражения варьировались в пределах 1:7,5; на четырнадцатые сутки средняя их концентрация была равна 1:40, и к тридцатым суткам средний титр увеличился до 1:60. Однако подтвердить хламидийную этиологию неблагополучных исходов окрола экспериментально зараженных кроликов при исследовании проб патологических материалов, полученных из урогенитального тракта исследуемых животных, методом полимеразной цепной реакции и микроскопией мазков-отпечатков не удалось. При этом молекулярно-генетические исследования проб внутренних органов (печень) мертворожденных крольчат позволили выявить геном хламидий, в результате чего была подтверждена хламидийная этиология патологического исхода окрола кроликов. Следовательно, при прижизненной постановке диагноза на хламидиоз такой ретроспективный метод, как реакция связывания комплемента с хламидийным антигеном, имеет диагностическую ценность.
Эффективное ведение молочного скотоводства неразрывно связано с получением молока высокого санитарного качества, одной из причин снижения производства которого являются маститы. Цель работы заключалась в исследовании микробиологического профиля молока, определении чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам и изучении метаболических особенностей при маститах у коров Амурской области. В животноводческих хозяйствах Амурской области в пробах молока от больных маститом коров в 34,69% случаев выявляли Staphylococcus epidermidis; в 32,65 и 30,61% проб обнаруживали ассоциации микроорганизмов: Streptococcus agalactiae + Escherichia coli и Staphylococcus saprophyticus + Streptococcus agalactiae + Escherichia coli соответственно; доля Staphylococcus haemolyticus составила 2,05%. Выделенные из молока от больных маститом коров Escherichia coli были чувствительны к цефотаксиму (28,00 ± 2,00 мм) и цефтриаксону (27,50 ± 0,35 мм); Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus haemolyticus, Staphylococcus saprophyticus – к цефотаксиму (35,50 ± 0,18 мм) и амоксициллину (35,1 ± 0,35 мм); Streptococcus agalactiae – к тетрациклину (27,60 ± 1,17 мм) и гентамицину (26,40 ± 0,99 мм). У больных маститом коров отмечали нарушения метаболизма. Был снижен альбумин-глобулиновый коэффициент (0,41), что характерно для воспалительных процессов различной локализации, а низкий уровень альбуминов (29,00 ± 0,89%) свидетельствовал о снижении протеинсинтетической функции гепатоцитов. Умеренное увеличение гамма-глобулинов (47,60 ± 1,05%) было связано с раздражением системы фагоцитирующих мононуклеаров. Нарушения водно-минерального обмена характеризовались низким уровнем кальция (1,80 ± 0,03 ммоль/л) и магния (0,70 ± 0,02 ммоль/л), что отмечается при многих патологических состояниях, а также при усиленной лактации. Соотношение кальция и фосфора было снижено (0,82). Гематологические показатели свидетельствовали о гипохромной анемии (уровень гемоглобина – 100,60 ± 1,28 г/л, цветового показателя – 0,60 ± 0,01). Лейкограмма указывала на лимфоцитопению (36,90 ± 2,60%) и нейтрофилию (палочкоядерных нейтрофилов – 1,80 ± 0,13%, сегментоядерных нейтрофилов – 51,80 ± 2,51%).
ЭПИЗООТОЛОГИЯ 
В настоящее время в Республике Казахстан проводится полноценный серологический мониторинг на предмет обнаружения циркуляции возбудителя инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Для проведения полноценного и показательного исследования соблюдались принципы обеспечения репрезентативности и математического расчета выборки. При формировании выборки среди общего количества эпизоотологических единиц большее внимание уделялось районам и населенным пунктам, в которых (или вблизи которых) ранее регистрировали случаи инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота. Выборка среди поголовья, вошедшего в область исследования, осуществлялась в соответствии с рекомендациями Всемирной организации здравоохранения животных. Таким образом, в область исследования в 2021 и 2022 гг. вошли 7 районов Карагандинской области из 13 возможных. Оставшиеся 6 районов и городов областного значения будут исследованы в 2023 г. В статье представлены результаты ретроспективного анализа по инфекционному ринотрахеиту крупного рогатого скота и собственных исследований, выполненных в 2021–2022 гг. С помощью программ Statistica, Excel, QGIS проведена статистическая и графическая обработка результатов исследования. При изучении эпизоотической обстановки установили, что Карагандинская область в 2021–2022 гг. была неблагополучна по заболеванию. Представленные Комитетом ветеринарного контроля и надзора Министерства сельского хозяйства Республики Казахстан данные и результаты серологических исследований подтверждают факт циркуляции возбудителя инфекционного ринотрахеита крупного рогатого скота в следующих районах Карагандинской области: Абайском, Актогайском, Бухар-Жырауском, Каркаралинском, Нуринском и Осакаровском.
Африканская чума свиней – вирусная болезнь свиней, обладающая высокой скоростью распространения, против которой не разработано средств специфической профилактики. Китайская Народная Республика является первой страной в Юго-Восточной Азии, где в 2018 г. была официально зарегистрирована вспышка данного заболевания, наносящего в настоящее время значительный экономический ущерб многим странам мира. Болезнь в дальнейшем распространилась на все провинции страны, где общее количество очагов среди домашних свиней составило 200, а в популяции диких кабанов – 10, при этом общее поголовье свиней в стране катастрофически сократилось – примерно на 180 млн голов. С момента выявления первого очага африканской чумы свиней Министерством сельского хозяйства и сельских дел Китая был принят «План действий в чрезвычайных ситуациях по борьбе с африканской чумой свиней и уровень реагирования на чрезвычайные ситуации», выполнение которого обеспечило ликвидацию эпизоотии, и уже к 2023 г. выявление новых очагов инфекции в стране прекратилось. Страна с одной из самых объемных свиноводческих отраслей животноводства в мире добилась, в сравнении с Европой, показателей довольно среднего распространения эпизоотии. При этом на территории Китая циркулировали штаммы вируса африканской чумы свиней с высоким генетическим разнообразием и с различным уровнем вирулентности, что обусловливало широкий спектр клинических симптомов у заболевших животных. Подобные особенности должны были только усложнить проведение ликвидационных мероприятий, однако разработанные меры доказали свою эффективность. Опыт осуществления противоэпизоотических мероприятий в Китае, безусловно, представляет интерес и для нашей страны, неблагополучной по африканской чуме свиней с 2008 г.
БОЛЕЗНИ КРС 
Представлены данные о влиянии сочетанного применения поливалентной сыворотки и иммуномодулирующих препаратов на заболеваемость, сохранность, резистентность в ранний постнатальный период выращивания телят. Задачами исследования было: изучение влияния комбинированного введения поливалентной сыворотки и иммуномодуляторов на динамику морфобиохимических, иммунологических показателей крови телят; определение оптимального сочетания, кратности введения поливалентной сыворотки и иммуномодуляторов для повышения общей резистентности организма, сохранности телят в ранний постнатальный период выращивания; расчет экономической эффективности применения поливалентной сыворотки и иммуномодуляторов. Научно-производственный опыт проведен на телятах симментальской породы. Для этого сформировали одну контрольную и пять опытных групп, содержащих не менее 5 особей в каждой. Телятам контрольной группы однократно подкожно в первый день жизни вводили поливалентную сыворотку в дозе 20,0 мл, животным опытных групп – сыворотку и иммуномодуляторы в дозах согласно наставлению по их применению. На основании полученных результатов сделан вывод, что оптимальными протоколами являются: однократное введение в первый день жизни «Риботана» в комбинации с сывороткой, а также двукратное введение через 7 дней поливалентной сыворотки с чередованием «Фоспренила» и «Иммунофана». Инъекции новорожденным телятам поливалентной сыворотки в комбинации с иммуномодулятором позволяют снизить заболеваемость телят на 70,0%, добиться 100,0%-й сохранности, улучшив данный показатель на 22,3% по сравнению с контролем. Экономическая эффективность ветеринарных мероприятий в результате использования указанных протоколов на 1 рубль затрат в среднем составила 25,29 рубля. Для повышения уровня неспецифической резистентности организма телят в ранний постнатальный период выращивания предпочтение необходимо отдавать препаратам, способным не только нормализовать работу иммунной системы, но и оказывать комплексное положительное воздействие на гомеостаз в целом, стимулировать рост и развитие молодняка на ранних этапах онтогенеза.
Несмотря на многочисленные исследования, проблема эшерихиоза новорожденных телят по-прежнему остается одной из актуальных в связи с широким распространением заболевания и высокой смертностью молодняка. В данной статье приводятся результаты экспериментальных исследований, выполненных в ФГБНУ «Всероссийский научно-исследовательский ветеринарный институт патологии, фармакологии и терапии». Целью работы было проведение с помощью современных методов комплексных морфологических исследований для более глубокого понимания вопросов этиологии и патогенеза эшерихиозов. Для этого от 28 телят в возрасте 1–10 сут с установленным диагнозом «колибактериоз» был отобран патологический материал в начальной стадии заболевания, при наличии выраженных клинических признаков и в терминальной стадии болезни. Контролем служил материал от 6 клинически здоровых телят аналогичного возраста. Установлено, что в начальной стадии развития эшерихиоза у новорожденных телят ранние структурные изменения обнаруживались в ультраструктуре клеток слизистой оболочки сычуга и тонкого кишечника, а также в паренхиме печени и слабые – в экзокринной части поджелудочной железы. Наиболее глубокие морфофункциональные изменения наблюдались в органах пищеварения при выраженных клинических признаках заболевания. В этот период развития болезни диапазон патологических процессов расширялся с охватом структурной организации сычуга, тонкого и толстого кишечника, печени и поджелудочной железы. В терминальной стадии эшерихиоза глубокие воспалительные процессы развивались не только в органах пищеварения, но и в других системах организма больных телят. Изменения структуры в органах пищеварения в начальной стадии носили альтеративный характер, тогда как при клинически выраженных признаках болезни они проявлялись в виде катарально-некротического воспаления со множественными кровоизлияниями в желудочно-кишечном тракте и паренхиматозных органах. В формировании клинико-морфологической картины в начальной стадии развития эшерихиоза у телят ведущее место принадлежало патологии органов пищеварения. В период становления болезни в организме телят развивались изменения на молекулярном и субклеточном уровнях, которые выявлялись гистохимическими и ультраструктурными исследованиями.
БОЛЕЗНИ МЕЛКИХ ДОМАШНИХ ЖИВОТНЫХ 
Дерматофитозы – широко распространенные во всем мире заболевания кожи и ее производных, чаще всего вызываемые грибами родов Microsporum и Trichophyton. Идентификация вида возбудителя имеет большое эпидемиологическое значение, а также необходима для проведения эффективной терапии. Цель исследований – идентификация и филогенетический анализ дерматофитов, выделенных от собак и кошек на территории Республики Казахстан и Российской Федерации, с помощью молекулярных методов. Видовая принадлежность изолятов грибов была подтверждена секвенированием по двум парам праймеров внутреннего транскрибируемого спейсерного участка (internal transcribedspacer, ITS) рДНК, что позволило депонировать их в базу данных GenBank. На основании результатов секвенирования были идентифицированы Microsporum canis (12 штаммов) и Trichophytonbenhamiae (2 штамма). Проведен анализ нуклеотидных последовательностей и построены филогенетические деревья с учетом результатов идентификации дерматофитов по двум парам праймеров. Построение филогенетического дерева, основанное на отражении родственных связей дерматофитов, показало, что, независимо от использования разных пар праймеров, возбудители рода Microsporum и Trichophyton во всех случаях достоверно распределены по разным кладам. Анализ структур фрагментов последовательности ITS4F/ITS5R позволил выявить генетическое родство штаммов Trichophytonbenhamiae, впервые выделенных от кошек на территории России, с российским штаммом, изолированным от морской свинки. Сравнительный анализ геномов грибов рода Microsporum и Trichophyton с референтными штаммами показал относительно невысокий уровень внутривидового полиморфизма и точечных мутаций последовательностей. В результате анализа данных был определен высокий процент гомологии нуклеотидных последовательностей, что позволяет использовать праймеры для проведения полимеразной цепной реакции в качестве диагностического теста при дерматофитозах кошек и собак.
ISSN 2658-6959 (Online)